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大西洋三文鱼和虹鳟鱼双重PCR检测方法的建立及应用

发布时间:2021-09-03 03:59
  为了实现大西洋三文鱼和虹鳟鱼的物种掺假快速检测,本研究建立了一种基于双重PCR(普通和荧光)的物种鉴定方法。通过序列分析,分别基于线粒体COⅠ和Cyt b基因设计大西洋三文鱼和虹鳟鱼特异性引物,验证引物的特异性并对双重PCR反应体系进行优化,建立大西洋三文鱼和虹鳟鱼的双重PCR快速鉴定方法。利用本研究设计的引物,仅大西洋三文鱼和虹鳟鱼可以分别扩增出108 bp和207 bp的特异性条带,而其他23种非目标物种均未有扩增条带。经验证,在双重PCR反应体系中,大西洋三文鱼和虹鳟鱼引物的最佳添加量分别为0.1和0.4μmol/L,熔解温度分别约为81.5℃和85℃。利用该方法从29份市售"三文鱼"样品中检测到6份大西洋三文鱼和3份虹鳟鱼,且与DNA条形码比对结果一致。本研究建立的大西洋三文鱼和虹鳟鱼双重PCR(普通和荧光)鉴定方法具有良好的特异性和适用性,为大西洋三文鱼和虹鳟鱼物种鉴定提供了可靠的技术手段。 

【文章来源】:现代食品科技. 2020,36(12)北大核心

【文章页数】:9 页

【部分图文】:

大西洋三文鱼和虹鳟鱼双重PCR检测方法的建立及应用


线粒体COⅠ和Cyt b基因中双重PCR引物的相对位置

序列,引物,物种,三文鱼


一般而言,线粒体基因组和核基因组均可以作为物种鉴定的目的基因。然而,与核基因组相比,线粒体基因组具有结构简单、序列和组成比较保守、母系遗传、无重组、单拷贝等特点[20],已经被广泛用于水产类物种鉴定,包括鲈形目[15]、鳕形目[16]等多个不同族群的鱼类品种。本研究通过大量的序列比对分析,分别基于COⅠ和Cyt b基因设计了大西洋三文鱼和虹鳟鱼物种特异性引物(表1)。引物配对和熔解温度(Tm)是多重PCR体系建立的关键[21]。特异性引物需与目标物种的碱基位点充分配对,而与非目标物种存在一定数量的碱基位点错配,以减少非特异性扩增[22]。各组引物Tm值相近则有利于多对引物在同一个反应体系下扩增对应的目标序列[23]。本研究设计的2对引物,均与目标物种序列完全配对。并且,大西洋三文鱼特异性引物Salmo F-1和Salmo R-1与虹鳟鱼分别有5个和4个错配碱基;虹鳟鱼特异性引物Omyk F-12和Omyk R-3与大西洋三文鱼均有2个错配碱基(图1)。两对引物Tm值均约为55.0℃(表1),表明两对引物在双重PCR体系中的最适退火温度相同,有助于引物仅与目标物种DNA结合,不与非目标物种DNA进行退火[24]。

熔解曲线,体系,虹鳟鱼,三文鱼


2.2 双重PCR反应体系建立为建立最佳双重PCR反应体系,对引物反应体系终浓度配比进行优化。设置(I)、(II)、(III)、(IV)四组实验进行优化对比。其中(I)组大西洋三文鱼引物(10μmol/L)和虹鳟鱼引物(10μmol/L)各加0.5μL;(II)组各加0.4μL和0.6μL;(III)组各加0.3μL和0.7μL;(IV)各加0.2μL和0.8μL。在普通PCR中,(I)、(II)和(III)扩增的虹鳟鱼特异性条带均较浅,而(IV)扩增的大西洋三文鱼和虹鳟鱼特异性条带均较清晰(图3)。在荧光PCR中,由(I)、(II)和(III)中虹鳟鱼的熔解曲线可知,虹鳟鱼的扩增效率较低,而(IV)中大西洋三文鱼和虹鳟鱼的扩增效率均较高(图4)。因此本研究确定(IV)为最佳引物浓度配比。

【参考文献】:
期刊论文
[1]三文鱼水产品掺假情况调查[J]. 丁清龙,曾晓琮,周露,李娟.  食品安全质量检测学报. 2019(13)
[2]狐狸和貉子动物源性成分双重PCR鉴别[J]. 杜利强,章晶晶,张涛,齐艳玲,李顺才,李岩,周巍,张岩.  食品科学. 2017(08)
[3]鲻鱼营养成分的研究[J]. 李来好,陈培基,杨贤庆,李刘冬,吴燕燕,刁石强.  营养学报. 2001(01)



本文编号:3380358

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