骨桥蛋白对骨髓间充质干细胞定向迁移的影响及其分子机理
本文选题:骨髓间充质干细胞 + 骨桥蛋白 ; 参考:《重庆大学》2011年硕士论文
【摘要】:骨髓间充质干细胞(mesenchymal stem cells, MSCs)具有多向分化潜能。在不同培养条件下,MSCs能分化成为多种细胞。越来越多的证据表明,MSCs具有广阔的临床应用前景。除了易于分离获取、体外增殖潜力巨大和不涉及伦理问题这些优势外,MSCs还具有趋化特性。趋向受损部位的定向迁移已经成为MSCs临床应用研究的关键问题。 骨桥蛋白(osteopontin, OPN)是一种细胞外基质蛋白,在不同的组织细胞中均有所发现。当机体各部位受到损伤时,损伤部位的OPN表达升高。OPN表达的升高不仅能增加多种细胞的迁移能力,同时也能介导细胞定向迁移。 迄今为止,OPN在MSCs定向迁移过程中的作用还未引起研究者的足够重视,相关的研究还鲜见报道,其分子机理更不明了。因此,本文试图揭示外源OPN在大鼠MSCs(rat MSCs, rMSCs)定向迁移过程中的作用及其分子机理。该研究工作的主要内容及结果如下: 1. rMSCs的原代分离培养及鉴定 利用1.073 g/ml的Percoll密度梯度离心法和rMSCs贴壁特性,体外分离培养rMSCs。结果表明,原代细胞14天左右达到85%融合。传代后的细胞贴壁时间约为半小时。细胞24 h内即可完全伸展,呈纤维状。传代细胞增殖能力强,4~6天达到80%~90%融合,并形成漩涡样单层,细胞形态趋于一致。流式细胞仪检测发现,分离得到的细胞表达CD44和CD90,但不表达CD34,符合MSCs表面标记抗原的一般规律。 2. OPN促rMSCs定向迁移 Transwell迁移实验检测OPN是否能够诱导rMSCs定向迁移。结果表明,OPN具有促rMSCs定向迁移的能力,并且OPN促rMSCs定向迁移的能力与OPN的浓度呈现一定的剂量相关性。 3. Integrinβ1介导OPN促rMSCs迁移 为检测在迁移过程中,OPN是否能改变细胞CD44v6或integrinβ1 mRNA的表达,RT-PCR检测OPN(1μg/ml)作用rMSCs后,mRNA的表达变化情况。结果表明,OPN能使integrinβ1 mRNA的表达水平增加(1.5倍,p0.01)。但CD44v6 mRNA的表达情况却没有明显改变。另外,western蛋白印迹表明,OPN作用2.0 h以后,integrinβ1的蛋白表达开始上升;4.0 h,达到峰值(1.3倍,p0.05);6.0 h以后,integrinβ1的蛋白表达开始下调,但依旧高于对照组。阻断integrinβ1受体后,OPN促rMSCs定向迁移的能力受到抑制。提示,OPN能够增加rMSCs中integrinβ1的表达,同时通过结合细胞表面integrinβ1受体,促进rMSCs定向迁移。 4.黏着斑激酶(focal adhesion kinase, FAK)/胞外信号调节激酶(extracellular signal regulated kinase, ERK)信号通路介导OPN促rMSCs定向迁移Western蛋白印迹检测OPN(1μg/ml)作用rMSCs后,磷酸化FAK (phospho-FAK, pFAK)和磷酸化ERK1/2(phospho-ERK1/2, pERK1/2)的表达变化情况。结果表明,OPN作用条件下0.5 h, pFAK的表达量升高(1.3倍,p0.05),FAK信号通路被激活;pERK1/2在OPN作用0.5 h时,表达升高(1.7倍,p0.05),1.0 h,达到峰值(2.8倍,p0.01),2.0 h有所回落(1.3倍,p0.05),4.0 h后与对照组相比没差异。抑制剂阻断OPN激活ERK和FAK信号通路以后,OPN促rMSCs定向迁移的能力受到抑制。另外,integrinβ1抗体可有效抑制OPN升高pFAK和pERK1/2表达的作用,阻断FAK/ERK信号通路的激活。提示,OPN结合integrinβ1受体以后,通过激活FAK/ERK信号通路,促进rMSCs定向迁移。 5. OPN改变rMSCs的力学性质 原子力显微镜(atomic force microscope, AFM)检测OPN(1μg/ml)作用后,rMSCs杨氏模量的变化。结果发现,OPN可以显著降低rMSCs的杨氏模量(p0.05)。另外,阻断integrinβ1受体,抑或阻断FAK/ERK信号分子的激活均能抑制OPN降低细胞杨氏模量的作用。结果表明,rMSCs的迁移能力与其细胞硬度密切相关。 本文的研究结果表明,OPN可以通过上调integrinβ1的表达,激活FAK/ERK信号通路,降低rMSCs的细胞硬度,从而促进rMSCs定向迁移。结果提示,机体受损后,可能通过上调OPN的表达,诱导rMSCs定向迁移至受损部位,参与受损组织修复。
[Abstract]:Mesenchymal stem cells (MSCs) has multipotential differentiation potential. Under different culture conditions, MSCs can be differentiated into a variety of cells. More and more evidence shows that MSCs has a broad prospect for clinical application. Besides the advantages of easy separation and acquisition, great proliferation potential in vitro and no ethical problems, MSCs is also found. With the chemotaxis characteristics, directional migration towards damaged parts has become a key issue in the clinical application of MSCs.
Osteopontin (OPN) is an extracellular matrix protein found in various tissue cells. When the parts of the body are damaged, the increase of the expression of OPN in the injured part of the body can not only increase the migration ability of many cells, but also mediate the directed migration of cells.
So far, the role of OPN in the directional migration of MSCs has not aroused enough attention. The related research is rarely reported, and its molecular mechanism is more unknown. Therefore, this paper attempts to reveal the application and molecular mechanism of exogenous OPN in the directional migration of MSCs (rat MSCs, rMSCs) in rats. The fruit is as follows:
Primary culture and identification of 1. rMSCs
Using 1.073 g/ml Percoll density gradient centrifugation and rMSCs adherence, the results of isolation and culture of rMSCs. in vitro showed that the primary cells reached 85% fusion for about 14 days. The cell adhesion time after the passage was about half an hour. The cells could be fully extended and fibrous in the cell 24 h. The cell proliferation ability was strong, and 4~6 days reached 80%~90% fusion and formed the formation and formation of the cells. The cell morphology of the whirlpool like monolayer tends to be consistent. Flow cytometry shows that the isolated cells express CD44 and CD90, but do not express CD34, which conforms to the general rule of the MSCs surface labeled antigen.
2. OPN oriented rMSCs oriented migration
The Transwell migration test detected whether OPN could induce rMSCs oriented migration. The results showed that OPN had the ability to promote rMSCs oriented migration, and the ability of OPN to promote rMSCs oriented migration was related to the dose of OPN.
3. Integrin beta 1 mediated rMSCs migration mediated by OPN
In order to detect whether OPN could change the expression of CD44v6 or integrin beta 1 mRNA in the process of migration, the expression of mRNA was changed by OPN (1 g/ml) by RT-PCR. The results showed that OPN could increase the expression level of integrin beta 1 mRNA, but there was no obvious change in the expression of rMSCs. The blot showed that after the action of OPN 2 h, the protein expression of integrin beta 1 began to rise; 4 h, reaching the peak (1.3 times, P0.05); after 6 h, the protein expression of integrin beta 1 began to be down, but still higher than the control group. After blocking integrin beta 1, the ability of OPN promoting rMSCs to orientate migration was inhibited. It also promotes rMSCs directional migration by binding to the cell surface integrin beta 1 receptor.
4. focal adhesion kinase (FAK) / extracellular signal regulated kinase (extracellular signal)
Regulated kinase, ERK) signaling pathway mediated OPN rMSCs directed migration Western blot to detect OPN (1 u g/ml) acting rMSCs, and the expression changes of phosphorylated FAK (phospho-FAK, pFAK) and phosphorylation. The road was activated; pERK1/2 increased (1.7 times, P0.05), 1 h, reached peak value (2.8 times, P0.01), 2 h fell (1.3 times, P0.05), and 4 h compared with the control group. The inhibitor blocked OPN activation ERK and FAK signal pathways. Inhibition of OPN increases the expression of pFAK and pERK1/2 and blocks the activation of the FAK/ERK signaling pathway. It suggests that OPN promotes rMSCs directed migration by activating the FAK/ERK signaling pathway after the binding of integrin beta 1.
5. OPN changes the mechanical properties of rMSCs
Atomic force microscope (AFM) was used to detect the change of Young's modulus of rMSCs after the action of OPN (1 u g/ml). The results showed that OPN could significantly reduce the young's modulus of rMSCs (P0.05). In addition, blocking integrin beta 1 receptor, or blocking the activation of the FAK/ERK signal molecules could inhibit the reduction of Young's modulus of cells. The mobility of MSCs is closely related to its cell hardness.
The results of this study show that OPN can activate the FAK/ERK signaling pathway by up regulation of the expression of integrin beta 1 and reduce the cell hardness of rMSCs, thus promoting the directional migration of rMSCs. The results suggest that after the organism is damaged, the expression of OPN may be raised to induce the migration of rMSCs to the damaged site and participate in the repair of damaged tissues.
【学位授予单位】:重庆大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2011
【分类号】:R329
【相似文献】
相关期刊论文 前10条
1 李龙,陈运芬,陈艳;类风湿关节炎患者外周血OPN水平及外周血单个核细胞OPN表达[J];贵州医药;2002年07期
2 常连胜,冯陶!100034,郭应禄!100034,窦长琪!100034,魏今!100034,黄有媛!100034;结石病人尿骨桥蛋白测定的临床意义[J];中华泌尿外科杂志;2000年12期
3 常连胜,冯陶,窦长琪,魏今,郭应禄,李菊香;结石模型大鼠肾脏骨桥蛋白的表达调控(英文)[J];Chinese Medical Journal;2001年08期
4 常连胜;骨桥蛋白与肾结石[J];国外医学.泌尿系统分册;2002年03期
5 曹惠芳,满晓波,蒋虹,徐志飞,唐亮,邱秀华,谈冶雄,吴孟超,王红阳;spp1基因在肺癌组织中表达的定量检测及其意义[J];中国肿瘤生物治疗杂志;2003年02期
6 徐辉,张静敏,张秀云,李广生;氟化钠对肾小管上皮细胞骨桥蛋白与bax、bcl-2基因表达的影响[J];中华预防医学杂志;2005年02期
7 茅文斌;邵增务;;骨桥蛋白与骨质疏松症研究进展[J];中国骨质疏松杂志;2007年03期
8 卢小迪;莫立根;;骨桥蛋白与头颈部肿瘤的研究[J];医学综述;2007年19期
9 王晓峰;倪毓辉;王玢;张敏;郭锡熔;;骨桥蛋白在结肠癌中的表达[J];江苏医药;2008年02期
10 孙婕;刘宁;尹国友;;骨桥蛋白与生物矿化[J];中国骨质疏松杂志;2008年05期
相关会议论文 前10条
1 朱静;林森森;孙立;袁胜涛;;骨桥蛋白(OPN)启动子区的构建及OPN抑制剂筛选[A];2011医学科学前沿论坛第十二届全国肿瘤药理与化疗学术会议论文集[C];2011年
2 王燕燕;马欣然;柳融皎;朱巍;姜晓华;宁光;王曙;;初发Graves病患者血清中骨桥蛋白的表达和意义[A];中华医学会第十次全国内分泌学学术会议论文汇编[C];2011年
3 梁杰;师如意;罗中华;郭欣政;李莉;张守全;;Osteopontin在公猪生殖细胞上的分布及OPN抗体对体外受精的影响[A];中国畜牧兽医学会动物繁殖学分会第十五届学术研讨会论文集(下册)[C];2010年
4 刘天舒;崔越宏;陈世耀;王吉耀;;不同的胃癌细胞株中骨桥蛋白的表达比较[A];中华医学会第七次全国消化病学术会议论文汇编(下册)[C];2007年
5 周闯;周海军;钦伦秀;;血清OPN在肝癌术后的动态变化及其对肝癌复发监测的意义[A];第九届全国肿瘤转移学术大会暨2011年黑龙江省医学会肿瘤学年会摘要集[C];2011年
6 薛裕华;张晓飞;董琼珠;付丽云;孙健贾;户亮;钦伦秀;;HCC凝血酶的表达与骨桥蛋白阳性患者的总体生存和复发相关[A];第十二届全国肝癌学术会议论文汇编[C];2009年
7 周海中;朱亚林;于明明;;血OPN在肺癌中的临床价值[A];中华医学会第九次全国核医学学术会议论文摘要汇编[C];2011年
8 胡涛;贾国良;贾林涛;张荣庆;王海昌;李寰;王晓燕;;内皮素对大鼠主动脉平滑肌细胞骨桥蛋白基因表达的影响[A];中华医学会心血管病分会第八次全国心血管病学术会议汇编[C];2004年
9 王莹;;骨桥蛋白及其受体在结石动物模型及细胞模型中的表达[A];第十五届全国泌尿外科学术会议论文集[C];2008年
10 陈宏;闫秋虹;;大疱性类天疱疮患者血清OPN、IL-18的表达与临床相关性研究(摘要)[A];第五届全国中西医结合变态反应学术会议论文集[C];2011年
相关重要报纸文章 前10条
1 胡德荣;“骨桥蛋白”是导致类风湿性关节炎顽凶[N];健康报;2005年
2 记者 谢军;类风湿性关节炎研究获重大突破[N];光明日报;2005年
3 胡德荣;类风湿性关节炎研究获重大突破[N];中国医药报;2005年
4 龙岩;新技术让你的皮肤“刀过不留痕”[N];北京科技报;2008年
5 黎彬;肝癌研究重要进展——预测肝癌转移成为可能[N];中国医药报;2004年
6 李卫;肝癌细胞靶环境能促进其生长和转移[N];中国医药报;2006年
7 丁;影响肾功能的一些因素[N];健康报;2005年
8 北京顺义蜂疗所 王孟林;骨关节病治疗的新途径[N];健康报;2009年
9 王雪飞;肝癌乳癌复发转移基因被“捕获”[N];健康报;2004年
10 胡德荣;抑制乳腺癌生长转移受体被发现[N];健康报;2006年
相关博士学位论文 前10条
1 杨桂文;骨桥蛋白(OPN)在Toll样受体介导的肿瘤细胞浸润转移过程中作用机制的研究[D];山东师范大学;2011年
2 陈剑秋;TIP30通过OPN调控喉鳞状细胞癌增殖及转移的研究[D];第二军医大学;2011年
3 刘桂香;OPN调节的CEACAM1在口腔扁平苔藓免疫病理机制中的作用研究[D];山东大学;2011年
4 禹化龙;骨桥蛋白表达对人结肠癌细胞生物学行为影响的实验研究[D];山东大学;2012年
5 张帆;骨桥蛋白与癌胚抗原相关粘附分子5在舌癌组织中的表达及相关性研究[D];山东大学;2012年
6 林帆;骨桥蛋白过量表达和肝细胞癌侵袭潜能的关系及RNA干扰对其影响的基础和临床研究[D];广州医学院;2011年
7 徐松涛;靶向OPN基因的RNA干扰对膀胱癌T24细胞生物学行为的影响[D];苏州大学;2010年
8 薛裕华;凝血酶是治疗转移性骨桥蛋白阳性肝细胞肝癌的靶点[D];复旦大学;2010年
9 刘文武;延迟性给予骨桥蛋白促进缺血缺氧性脑损伤后血管新生和神经元再生[D];第二军医大学;2010年
10 王改平;大鼠再生肝的陷窝细胞基因表达谱分析及其opn的作用研究[D];河南师范大学;2011年
相关硕士学位论文 前10条
1 邹呈雨;骨桥蛋白对骨髓间充质干细胞定向迁移的影响及其分子机理[D];重庆大学;2011年
2 王鸿涵;骨桥蛋白在鼻咽癌组织中的表达及临床意义[D];中南大学;2010年
3 武新峰;骨桥蛋白在强直性脊柱炎中的研究[D];华中科技大学;2011年
4 史杰;利用抑制晶体生长活性再鉴定牛乳骨桥蛋白及其二级结构的研究[D];东北农业大学;2010年
5 李娜;骨桥蛋白(OPN)在人卵巢癌细胞转移侵袭过程中的作用研究[D];山东师范大学;2012年
6 冯昕;脑胶质瘤患者血清OPN水平的测定及其临床意义[D];山东大学;2010年
7 金婷;骨桥蛋白在先天性心脏病心肌中的表达及相关研究[D];中南大学;2010年
8 李辉;OPN反义核苷酸抑制大鼠血管平滑肌细胞增殖机制的研究[D];中国医科大学;2010年
9 杨松;骨桥蛋白与高血压血管重构的关系及他汀的干预影响[D];重庆医科大学;2010年
10 朱白鹭;OPN与乳腺癌细胞体外形成血管生成拟态关系的研究[D];南昌大学;2012年
,本文编号:1822566
本文链接:https://www.wllwen.com/xiyixuelunwen/1822566.html