悬浮驯化CHO细胞并用于抗前列腺特异性膜抗原的抗体表达
[Abstract]:Objective to acclimate the adherent Chinese hamster ovarian (CHO) cells into suspension CHO cells (CHO-S) cultured in serum-free medium and verify the feasibility of using the suspension cells for antibody expression. Methods after adjusting the adherent CHO-S cells to suspension culture, they were acclimated into CHO-S cells suspended on serum-free medium by gradually decreasing the serum content. According to the gene sequence of anti-prostate specific membrane antigen (PSMA) single-chain antibody screened from phage antibody library, the heavy chain and light chain genes were designed and synthesized and cloned into eukaryotic expression vector pc DNA3.1, respectively. The resulting vectors were named pc DNA3.1-HC and pc DNA3.1-LC. The constructed two vectors were transiently transfected into CHO-S cells by Free Style MAX transfection reagent at a light and heavy chain ratio of 3:1. The supernatants were collected after 7 days of transfection, and the antibody expression was detected by SDS-PAGE and Western blot methods. The binding activity of PSMA positive cells was detected by flow cytometry. Results the adherent CHO cells were successfully acclimated into suspension CHO-S cells, and the eukaryotic expression vectors expressing the heavy and light chain genes of human antibody against PSMA were successfully constructed, and the secreted expression of antibodies was realized in CHO-S cells. Flow cytometry confirmed that it could specifically bind to PSMA positive prostate cancer cells. Conclusion suspension CHO-S cells were successfully acclimated, and CHO-S cells after acclimation could be used for eukaryotic expression of antibodies, which provided a tool for the subsequent purification and functional study of antibodies.
【作者单位】: 第四军医大学免疫学教研室;第四军医大学西京医院泌尿外科;唐都医院泌尿外科;
【基金】:国家重点基础研究发展计划(973计划)(2013CB530500) 国家自然科学基金(81172146)
【分类号】:R392-33
【相似文献】
相关期刊论文 前10条
1 梅柱中,岳军明,张茂林,乔贵林,殷震;人促红细胞生成素在CHO细胞上的表达[J];药物生物技术;2000年03期
2 郑立恒;魏会平;许松梅;孙伟华;李保国;胡火珍;刘全胜;;增强型绿色荧光蛋白基因转染CHO细胞研究[J];河北北方学院学报;2006年01期
3 谭昌耀,蒋丽明,蓝崧,王静,张雪梅;人肝细胞生长因子在CHO细胞中的高效表达[J];预防医学情报杂志;2002年02期
4 徐上坡;注射重组乙型肝炎疫苗(CHO细胞)引起过敏性紫癜1例报告[J];中国计划免疫;2005年04期
5 刘新琼;颜华;王德彬;;表达含前S的乙肝病毒表面抗原重组CHO细胞株的建立和特性检测[J];华中农业大学学报;2009年04期
6 梅建国;沈志强;庄金秋;;30L生物反应器培养重组CHO细胞生产重组人组织型纤溶酶原激活剂[J];中国生物制品学杂志;2010年04期
7 杨栋;牛红军;陆刚;史嘉林;孙浩明;李晖;;悬浮培养CHO细胞生产重组人促红细胞生成素条件的优化[J];现代生物医学进展;2012年26期
8 孙俊业;徐冬冬;李德娟;王立成;陶航;陈胤忠;金立杰;;重组乙型肝炎疫苗(CHO细胞)免疫效果的观察[J];中国生物制品学杂志;2006年03期
9 候继锋,程雅琴;重组人红细胞生成素制品中CHO细胞蛋白残留量的测定[J];中国生物制品学杂志;1998年04期
10 江智红,杨宇虹,徐来根,杨新颖,夏其昌,李伯良,王德宝;大鼠甘氨肽酰化单氧酶在CHO细胞中的活性表达及在体外酰胺化修饰中的应用[J];生物工程学报;1998年02期
相关会议论文 前10条
1 吴蔚;陶然;乔会菊;尚世强;;甘露糖结合凝集素在CHO细胞中的表达研究[A];浙江省医学会医学微生物与免疫学及医学病毒学学术年会论文汇编[C];2009年
2 邱少辉;方鑫;何鹏;梁争论;张红霞;张卫婷;赵坤福;李德桂;周根喜;郭玉芬;钟熙;胡忠玉;;重组乙型肝炎疫苗(CHO细胞)冻干参考品的研制[A];2011中国生物制品年会暨第十一次全国生物制品学术研讨会论文集[C];2011年
3 杨保胜;张继红;王天云;王文峰;;人血管内皮生长因子基因的克隆及在CHO细胞中重组表达[A];中国的遗传学研究——遗传学进步推动中国西部经济与社会发展——2011年中国遗传学会大会论文摘要汇编[C];2011年
4 丁庭波;吴满平;;鞘磷脂合酶基因高表达促进了CHO细胞的凋亡[A];华东六省一市生物化学与分子生物学学会2006年学术交流会论文集[C];2006年
5 邱瑜;崔永耀;吴兴军;冯菊妹;刘慧中;陆阳;胡雅儿;陈红专;;M受体重组的CHO细胞筛选M_1选择性激动剂[A];中国药理学会第八次全国代表大会暨全国药理学术会议论文摘要汇编[C];2002年
6 邱瑜;崔永耀;吴兴军;冯菊妹;刘慧中;陆阳;胡雅儿;陈红专;;M受体重组的CHO细胞筛选M_1选择性激动剂[A];中国药理学会第八次全国代表大会论文摘要集(第二部分)[C];2002年
7 宋国华;刘佳;司艳红;姚树桐;秦树存;;SR-BI抑制ABCG1介导的胆固醇由CHO细胞溢出至HDL3[A];中国病理生理学会第九届全国代表大会及学术会议论文摘要[C];2010年
8 曾丽华;郭国祯;任东青;郭鹞;;电磁脉冲对CHO细胞细胞膜和超微结构的影响及姜黄素的防护作用[A];第六届全国生物医学体视学学术会议暨第九届全军军事病理学学术会议、第五届全军定量病理学学术会议论文汇编[C];2005年
9 毕婷婷;孙健;赵晓红;;绿原酸与阿魏酸对CHO细胞线粒体功能影响的差别[A];2014线粒体毒性与基于毒性通路的安全性评价新策略学术研讨会暨中国毒理学会毒理学替代法与转化毒理学专业委员会成立大会论文集[C];2014年
10 赵晓红;孙健;刘涛;郭辰;栾娜;;四种植物活性单体毒性剂量下对CHO细胞线粒体功能的影响[A];中国毒理学会第六届全国毒理学大会论文摘要[C];2013年
相关重要报纸文章 前1条
1 ;采用新技术抑制烟草诱导CHO细胞转化的研究[N];科技日报;2001年
相关硕士学位论文 前7条
1 董历子;重组乙型肝炎疫苗(CHO细胞)效力、鉴别实验的方法研究[D];吉林大学;2008年
2 焦平;人分泌型KL蛋白在CHO细胞中的稳定表达[D];吉林大学;2005年
3 钟辉;重组人膜型Klotho蛋白在CHO细胞中的稳定表达[D];吉林大学;2007年
4 胡善心(HO THIEN TAM);铜离子对CHO细胞乳酸代谢影响[D];华东理工大学;2015年
5 张维燕;谷氨酰胺和天冬酰胺对CHO细胞生长、代谢及抗体表达的影响[D];华东理工大学;2014年
6 陈欣欣;真核表达质粒pcDNA3.1(+)-CLEC2的构建及其在CHO细胞中的表达[D];昆明医学院;2009年
7 黄芬;过表达热休克蛋白70提高CHO细胞表达抗体的能力[D];陕西师范大学;2011年
,本文编号:2352432
本文链接:https://www.wllwen.com/xiyixuelunwen/2352432.html