DiO标记对人骨髓间充质干细胞生物学功能的影响
发布时间:2020-07-08 01:04
【摘要】:目的用细胞膜绿色荧光探针Di O标记人骨髓间充质干细胞(h BMMSCs),探讨其对h BMMSCs生物学功能的影响。方法采用Ficoll密度梯度离心法分离、培养h BMMSCs;流式细胞术检测Di O对h BMMSCs的标记效率;通过Transwell迁移实验、平板克隆实验、生长曲线分析、成脂及成骨诱导实验分别检测Di O对h BMMSCs迁移、增殖和多向分化能力的影响。结果Di O对h BMMSC的标记效率可达(99.5±0.4)%;Transwell迁移实验、平板克隆实验、生长曲线分析、成脂及成骨诱导实验结果表明,与未标记h BMMSCs相比,标记后的h BMMSCs迁移、增殖及成脂、成骨分化能力未见明显改变,差异均无统计学意义(P均0.05)。结论经Di O处理未见明显影响h BMMSCs的生物学功能,可做为安全、有效的h BMMSCs体外标记绿色荧光染料。
【图文】:
注:A,未标记hBMMSCs白光图;B,DiO标记的hBMMSCs白光图;C,DiO标记的hBMMSCs荧光图。图1DiO标记后hBMMSCs荧光图(×100)2.2hBMMSCs的标记效率荧光显微镜下可观察到经DiO标记24h后的hBMMSCs呈现绿色荧光,见图1。流式细胞术检测结果显示,标记DiO的hBMMSCs阳性率可达到(99.5±0.4)%,未标记的hBMMSCs阳性率仅为(0.5±0.4)%,差异有统计学意义(t=568.4,P<0.05)。2.3DiO标记对hBMMSCs迁移能力的影响Transwell迁移实验结果显示,DiO标记的hBMMSCs迁移数目约为(88.0±3.1)个,与未标记hBMMSCs(87.3±1.5)个相比,差异无统计学意义(t=0.05,P>0.05)。2.4DiO标记对hBMMSCs增殖能力的影响克隆形成试验结果显示,2周后DiO标记的hBMMSCs形成的克隆数目约为(203.7±17.9)个,与未标记hBMMSCs(196.7±12.0)个相比,差异无统计学意义(t=0.32,P>0.05)。细胞增殖实验显示,DiO标记后hBMMSCs与未标记hBMMSCs的生长曲线变化基本一致,(F=0.005,P>0.05),见图2。图2DiO标记后hBMMSCs生长曲线2.5DiO标记对hBMMSCs分化能力的影响分别对DiO标记与未标记的hBMMSCs进行成脂和成骨诱导,成脂诱导6d后两组细胞在光学显微镜下均可观察到折光性很强的小空泡出现,提示脂滴形成,诱导2周后,细胞用油红O染色,两组细胞胞浆中均可见大量桔红色的小脂滴(图3A)。细胞经成骨诱导3周后,用茜素红染色,光镜下可看见大量阳性的胞质染成红棕色的多边形细胞(图3B)。表明DiO标记对hBMMSCs向成脂细胞和成骨细胞分化的能力无明显影响。注:A,油红O染色;B,茜素红S染色。图3DiO标记后hBMMSCs成脂诱导和成骨诱导(×100)·54·临床检验杂志2016年1月第34卷第1期ChinJClinLabSci,Jan.2016,Vol.34,No.1
注:A,未标记hBMMSCs白光图;B,DiO标记的hBMMSCs白光图;C,DiO标记的hBMMSCs荧光图。图1DiO标记后hBMMSCs荧光图(×100)2.2hBMMSCs的标记效率荧光显微镜下可观察到经DiO标记24h后的hBMMSCs呈现绿色荧光,见图1。流式细胞术检测结果显示,标记DiO的hBMMSCs阳性率可达到(99.5±0.4)%,未标记的hBMMSCs阳性率仅为(0.5±0.4)%,差异有统计学意义(t=568.4,P<0.05)。2.3DiO标记对hBMMSCs迁移能力的影响Transwell迁移实验结果显示,DiO标记的hBMMSCs迁移数目约为(88.0±3.1)个,与未标记hBMMSCs(87.3±1.5)个相比,差异无统计学意义(t=0.05,P>0.05)。2.4DiO标记对hBMMSCs增殖能力的影响克隆形成试验结果显示,2周后DiO标记的hBMMSCs形成的克隆数目约为(203.7±17.9)个,与未标记hBMMSCs(196.7±12.0)个相比,差异无统计学意义(t=0.32,P>0.05)。细胞增殖实验显示,DiO标记后hBMMSCs与未标记hBMMSCs的生长曲线变化基本一致,(F=0.005,P>0.05),见图2。图2DiO标记后hBMMSCs生长曲线2.5DiO标记对hBMMSCs分化能力的影响分别对DiO标记与未标记的hBMMSCs进行成脂和成骨诱导,成脂诱导6d后两组细胞在光学显微镜下均可观察到折光性很强的小空泡出现,提示脂滴形成,诱导2周后,细胞用油红O染色,两组细胞胞浆中均可见大量桔红色的小脂滴(图3A)。细胞经成骨诱导3周后,用茜素红染色,光镜下可看见大量阳性的胞质染成红棕色的多边形细胞(图3B)。表明DiO标记对hBMMSCs向成脂细胞和成骨细胞分化的能力无明显影响。注:A,油红O染色;B,茜素红S染色。图3DiO标记后hBMMSCs成脂诱导和成骨诱导(×100)·54·临床检验杂志2016年1月第34卷第1期ChinJClinLabSci,Jan.2016,Vol.34,No.1
注:A,未标记hBMMSCs白光图;B,DiO标记的hBMMSCs白光图;C,DiO标记的hBMMSCs荧光图。图1DiO标记后hBMMSCs荧光图(×100)2.2hBMMSCs的标记效率荧光显微镜下可观察到经DiO标记24h后的hBMMSCs呈现绿色荧光,见图1。流式细胞术检测结果显示,标记DiO的hBMMSCs阳性率可达到(99.5±0.4)%,未标记的hBMMSCs阳性率仅为(0.5±0.4)%,差异有统计学意义(t=568.4,P<0.05)。2.3DiO标记对hBMMSCs迁移能力的影响Transwell迁移实验结果显示,DiO标记的hBMMSCs迁移数目约为(88.0±3.1)个,与未标记hBMMSCs(87.3±1.5)个相比,差异无统计学意义(t=0.05,P>0.05)。2.4DiO标记对hBMMSCs增殖能力的影响克隆形成试验结果显示,2周后DiO标记的hBMMSCs形成的克隆数目约为(203.7±17.9)个,与未标记hBMMSCs(196.7±12.0)个相比,差异无统计学意义(t=0.32,P>0.05)。细胞增殖实验显示,DiO标记后hBMMSCs与未标记hBMMSCs的生长曲线变化基本一致,(F=0.005,P>0.05),见图2。图2DiO标记后hBMMSCs生长曲线2.5DiO标记对hBMMSCs分化能力的影响分别对DiO标记与未标记的hBMMSCs进行成脂和成骨诱导,成脂诱导6d后两组细胞在光学显微镜下均可观察到折光性很强的小空泡出现,提示脂滴形成,诱导2周后,细胞用油红O染色,两组细胞胞浆中均可见大量桔红色的小脂滴(图3A)。细胞经成骨诱导3周后,用茜素红染色,光镜下可看见大量阳性的胞质染成红棕色的多边形细胞(图3B)。表明DiO标记对hBMMSCs向成脂细胞和成骨细胞分化的能力无明显影响。注:A,油红O染色;B,茜素红S染色。图3DiO标记后hBMMSCs成脂诱导和成骨诱导(×100)·54·临床检验杂志2016年1月第34卷第1期ChinJClinLabSci,Jan.2016,Vol.34,No.1
本文编号:2745870
【图文】:
注:A,未标记hBMMSCs白光图;B,DiO标记的hBMMSCs白光图;C,DiO标记的hBMMSCs荧光图。图1DiO标记后hBMMSCs荧光图(×100)2.2hBMMSCs的标记效率荧光显微镜下可观察到经DiO标记24h后的hBMMSCs呈现绿色荧光,见图1。流式细胞术检测结果显示,标记DiO的hBMMSCs阳性率可达到(99.5±0.4)%,未标记的hBMMSCs阳性率仅为(0.5±0.4)%,差异有统计学意义(t=568.4,P<0.05)。2.3DiO标记对hBMMSCs迁移能力的影响Transwell迁移实验结果显示,DiO标记的hBMMSCs迁移数目约为(88.0±3.1)个,与未标记hBMMSCs(87.3±1.5)个相比,差异无统计学意义(t=0.05,P>0.05)。2.4DiO标记对hBMMSCs增殖能力的影响克隆形成试验结果显示,2周后DiO标记的hBMMSCs形成的克隆数目约为(203.7±17.9)个,与未标记hBMMSCs(196.7±12.0)个相比,差异无统计学意义(t=0.32,P>0.05)。细胞增殖实验显示,DiO标记后hBMMSCs与未标记hBMMSCs的生长曲线变化基本一致,(F=0.005,P>0.05),见图2。图2DiO标记后hBMMSCs生长曲线2.5DiO标记对hBMMSCs分化能力的影响分别对DiO标记与未标记的hBMMSCs进行成脂和成骨诱导,成脂诱导6d后两组细胞在光学显微镜下均可观察到折光性很强的小空泡出现,提示脂滴形成,诱导2周后,细胞用油红O染色,两组细胞胞浆中均可见大量桔红色的小脂滴(图3A)。细胞经成骨诱导3周后,用茜素红染色,光镜下可看见大量阳性的胞质染成红棕色的多边形细胞(图3B)。表明DiO标记对hBMMSCs向成脂细胞和成骨细胞分化的能力无明显影响。注:A,油红O染色;B,茜素红S染色。图3DiO标记后hBMMSCs成脂诱导和成骨诱导(×100)·54·临床检验杂志2016年1月第34卷第1期ChinJClinLabSci,Jan.2016,Vol.34,No.1
注:A,未标记hBMMSCs白光图;B,DiO标记的hBMMSCs白光图;C,DiO标记的hBMMSCs荧光图。图1DiO标记后hBMMSCs荧光图(×100)2.2hBMMSCs的标记效率荧光显微镜下可观察到经DiO标记24h后的hBMMSCs呈现绿色荧光,见图1。流式细胞术检测结果显示,标记DiO的hBMMSCs阳性率可达到(99.5±0.4)%,未标记的hBMMSCs阳性率仅为(0.5±0.4)%,差异有统计学意义(t=568.4,P<0.05)。2.3DiO标记对hBMMSCs迁移能力的影响Transwell迁移实验结果显示,DiO标记的hBMMSCs迁移数目约为(88.0±3.1)个,与未标记hBMMSCs(87.3±1.5)个相比,差异无统计学意义(t=0.05,P>0.05)。2.4DiO标记对hBMMSCs增殖能力的影响克隆形成试验结果显示,2周后DiO标记的hBMMSCs形成的克隆数目约为(203.7±17.9)个,与未标记hBMMSCs(196.7±12.0)个相比,差异无统计学意义(t=0.32,P>0.05)。细胞增殖实验显示,DiO标记后hBMMSCs与未标记hBMMSCs的生长曲线变化基本一致,(F=0.005,P>0.05),见图2。图2DiO标记后hBMMSCs生长曲线2.5DiO标记对hBMMSCs分化能力的影响分别对DiO标记与未标记的hBMMSCs进行成脂和成骨诱导,成脂诱导6d后两组细胞在光学显微镜下均可观察到折光性很强的小空泡出现,提示脂滴形成,诱导2周后,细胞用油红O染色,两组细胞胞浆中均可见大量桔红色的小脂滴(图3A)。细胞经成骨诱导3周后,用茜素红染色,光镜下可看见大量阳性的胞质染成红棕色的多边形细胞(图3B)。表明DiO标记对hBMMSCs向成脂细胞和成骨细胞分化的能力无明显影响。注:A,油红O染色;B,茜素红S染色。图3DiO标记后hBMMSCs成脂诱导和成骨诱导(×100)·54·临床检验杂志2016年1月第34卷第1期ChinJClinLabSci,Jan.2016,Vol.34,No.1
注:A,未标记hBMMSCs白光图;B,DiO标记的hBMMSCs白光图;C,DiO标记的hBMMSCs荧光图。图1DiO标记后hBMMSCs荧光图(×100)2.2hBMMSCs的标记效率荧光显微镜下可观察到经DiO标记24h后的hBMMSCs呈现绿色荧光,见图1。流式细胞术检测结果显示,标记DiO的hBMMSCs阳性率可达到(99.5±0.4)%,未标记的hBMMSCs阳性率仅为(0.5±0.4)%,差异有统计学意义(t=568.4,P<0.05)。2.3DiO标记对hBMMSCs迁移能力的影响Transwell迁移实验结果显示,DiO标记的hBMMSCs迁移数目约为(88.0±3.1)个,与未标记hBMMSCs(87.3±1.5)个相比,差异无统计学意义(t=0.05,P>0.05)。2.4DiO标记对hBMMSCs增殖能力的影响克隆形成试验结果显示,2周后DiO标记的hBMMSCs形成的克隆数目约为(203.7±17.9)个,与未标记hBMMSCs(196.7±12.0)个相比,差异无统计学意义(t=0.32,P>0.05)。细胞增殖实验显示,DiO标记后hBMMSCs与未标记hBMMSCs的生长曲线变化基本一致,(F=0.005,P>0.05),见图2。图2DiO标记后hBMMSCs生长曲线2.5DiO标记对hBMMSCs分化能力的影响分别对DiO标记与未标记的hBMMSCs进行成脂和成骨诱导,成脂诱导6d后两组细胞在光学显微镜下均可观察到折光性很强的小空泡出现,提示脂滴形成,诱导2周后,细胞用油红O染色,两组细胞胞浆中均可见大量桔红色的小脂滴(图3A)。细胞经成骨诱导3周后,用茜素红染色,光镜下可看见大量阳性的胞质染成红棕色的多边形细胞(图3B)。表明DiO标记对hBMMSCs向成脂细胞和成骨细胞分化的能力无明显影响。注:A,油红O染色;B,茜素红S染色。图3DiO标记后hBMMSCs成脂诱导和成骨诱导(×100)·54·临床检验杂志2016年1月第34卷第1期ChinJClinLabSci,Jan.2016,Vol.34,No.1
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