恶性疟原虫抗原PfMAg-1功能研究
发布时间:2021-01-26 13:44
恶性疟原虫PfMAg-1蛋白表达于恶性疟原虫裂殖子表面,该蛋白不存在于感染人类的其它4类疟原虫中。本实验室前期分别表达PfMAg-1对N、C和中段抗原蛋白后免疫新西兰兔,取抗血清进行体外培养条件下的疟原虫生长抑制实验,均证实抗PfMAg-1部分片段的特异性抗体对恶性疟原虫生长有抑制作用。为进一步观察PfMAg-1全蛋白的功能,本研究采用规律成簇间隔短回文重复及相关失活蛋白(Clustered regulatory interspaced short palindromic repeats/dead CRISPR-associated protein 9,CRISPR/dCas9)技术,构建恶性疟原虫PfMAg-1低表达及过表达质粒,转染恶性疟原虫后分别筛选出恶性疟原虫低表达株(MAg1-KD)虫株及过表达虫株(MAg1-OE)。经PCR、实时荧光定量聚合酶链式反应(qRT-PCR)实验检测PfMAg-1的表达水平。并在体外培养条件下观察MAg1-KD虫株与MAg1-OE虫株生长趋势及裂殖子入侵效率。研究结果表明,1)恶性疟原虫MAg1-KD虫株较对照虫株的体外生长率显著降低,进一步实验...
【文章来源】:北京协和医学院北京市 211工程院校 985工程院校
【文章页数】:94 页
【学位级别】:硕士
【部分图文】:
图1?CR!SPR/dCas9技术调控恶性疟原虫基因原理示意图[30]??CRISPR/Cas9介导的敲除技术已经在恶性疟原虫中得到很好的确立,但是在该??
图2条件性降解目的蛋白原理示意图[26]??
特异条带在琼脂糖凝胶电泳1500bp/11400bp位置,与理论长度一致,进一??步测序结果表明,sgRNA连入载体正确位置,说明MAgl-KD质粒构建成??功(图3)。??10000j??3000^^^^?/?參:爲??1500H??1Q〇〇i—M?'??SOD??图3敲低质粒MAgl-KD双酶切鉴定??M?Thermo?Fisher?Scientific?DNA?Marker?1?MAgl-KD?质粒双酶切??*转染虫株和鉴定??利用PCR检测转染虫株内的药物筛选基因BSD,包括Control-KD虫株与??MAgl-KD虫株。结果显示,在PCR成功扩增到BSD基因,其特异条带在琼脂糖??凝胶电泳399bp位置,与理论长度一致,进一步测序结果表明,序列与BSD编码??序列完全相符,说明Control-KD质粒和MAgl-KD质粒成功转入恶性疟原虫3D7??虫株内(图4A)。为了检测;?>叹-7基因mRNA表达是否受到调控,通过qRT-PCR??检测;^flg-i基因的转录水平。与Control虫株相比,MAgl-KD虫株转录水平降低??了?65.32%,表达水平具有统计学差异
【参考文献】:
博士论文
[1]恶性疟原虫候选抗原PfMAg-1的免疫保护效果评价[D]. 高宇辉.中国协和医科大学 2007
本文编号:3001217
【文章来源】:北京协和医学院北京市 211工程院校 985工程院校
【文章页数】:94 页
【学位级别】:硕士
【部分图文】:
图1?CR!SPR/dCas9技术调控恶性疟原虫基因原理示意图[30]??CRISPR/Cas9介导的敲除技术已经在恶性疟原虫中得到很好的确立,但是在该??
图2条件性降解目的蛋白原理示意图[26]??
特异条带在琼脂糖凝胶电泳1500bp/11400bp位置,与理论长度一致,进一??步测序结果表明,sgRNA连入载体正确位置,说明MAgl-KD质粒构建成??功(图3)。??10000j??3000^^^^?/?參:爲??1500H??1Q〇〇i—M?'??SOD??图3敲低质粒MAgl-KD双酶切鉴定??M?Thermo?Fisher?Scientific?DNA?Marker?1?MAgl-KD?质粒双酶切??*转染虫株和鉴定??利用PCR检测转染虫株内的药物筛选基因BSD,包括Control-KD虫株与??MAgl-KD虫株。结果显示,在PCR成功扩增到BSD基因,其特异条带在琼脂糖??凝胶电泳399bp位置,与理论长度一致,进一步测序结果表明,序列与BSD编码??序列完全相符,说明Control-KD质粒和MAgl-KD质粒成功转入恶性疟原虫3D7??虫株内(图4A)。为了检测;?>叹-7基因mRNA表达是否受到调控,通过qRT-PCR??检测;^flg-i基因的转录水平。与Control虫株相比,MAgl-KD虫株转录水平降低??了?65.32%,表达水平具有统计学差异
【参考文献】:
博士论文
[1]恶性疟原虫候选抗原PfMAg-1的免疫保护效果评价[D]. 高宇辉.中国协和医科大学 2007
本文编号:3001217
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