单增李斯特菌在群体感应抑制剂作用下的生物学特性研究及其快速检测技术的开发
本文关键词:单增李斯特菌在群体感应抑制剂作用下的生物学特性研究及其快速检测技术的开发
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【摘要】:单核细胞增生性李斯特菌(Listeria monocytogenes,LM),简称单增李斯特菌,是一种常见的食源性致病菌,极易在食品或加工环境中残留,从而引起各种动物源性冷藏食品安全问题。因此,为了有效预防控制LM的感染,提高LM检测效率,本文初步探究了群体感应抑制剂对LM菌落生长、生物膜形成以及LM侵染细胞的影响,并建立一种快速高效检测LM方法。主要实验内容如下:(1)通过测定菌落生长曲线、细菌总蛋白含量、胞外多糖含量变化规律,并通过结晶紫染色法及扫描电镜观察生物膜形态,研究群体感应抑制剂3,4-二溴-2(5H)-呋喃酮和6-氨青霉素烷酸对LM生物学特性的影响等。结果表明,3,4-二溴-2(5H)-呋喃酮对LM的最小抑菌浓度(MIC)为25μg/mL,最低致死剂量(MBC)为400μg/mL;6-氨青霉素烷酸对LM的MIC为3.12μg/mL,MBC为100μg/mL。两种群体感应抑制剂在一定的工作浓度下,对LM的菌落的生长及生物膜形成均有着一定的调控作用,且随着抑制剂浓度的增加,调控作用逐渐增强。(2)通过MTT检测、乳酸脱氢酶含量检测、细菌黏附率检测等实验,研究3,4-二溴-2(5H)-呋喃酮和6-氨青霉素烷酸分别在MIC,5MIC,10MIC浓度下,对LM侵染细胞的影响。当3,4-二溴-2(5H)-呋喃酮浓度分别为MIC,5MIC,10MIC时,其对LM侵染Caco-2细胞产生了一定的影响,黏附率抑制率分别为44.41%,67.68%和85.28;而在6-氨青霉素烷酸作用下,最终的黏附抑制率分别为12.17%,59.60%和76.51%。结果表明:LM与Caco-2细胞共同培养时,两种抑制剂均对LM黏附Caco-2细胞有着明显的抑制作用,且随着抑制剂浓度的增加,抑制作用也逐渐增强。(3)将LM毒力基因iap经过原核克隆与表达,得到的表达产物p60蛋白作为免疫原免疫动物制备多克隆抗体,通过抗体与磁珠的偶联获得抗LM免疫磁珠,建立一种免疫磁珠分离技术结合酶联免疫快速检测LM方法。结果表明:建立的免疫磁珠-酶联免疫法,灵敏性为1.2×10~5 cfu/mL,最低检测限为31cfu/mL,其板内变异系数平均为3.14%,板间变异系数为2.69%,与荧光假单胞菌、大肠杆菌、粪肠球菌交叉反应率均小于0.1%,对样品的平均加标回收率为96.4%。满足LM的检测需要。
【关键词】:单增李斯特菌 群体感应抑制剂 3 4-二溴-2(5H)-呋喃酮 6-氨青霉素烷酸 p60蛋白 免疫磁珠-酶联免疫
【学位授予单位】:中国计量大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2016
【分类号】:R378
【目录】:
- 致谢5-6
- 摘要6-8
- Abstract8-15
- 1 绪论15-25
- 1.1 概述15
- 1.2 LM的生物学特性15
- 1.3 LM的危害15-16
- 1.4 LM的致病机理16-20
- 1.4.1 毒力因子16-18
- 1.4.2 生物膜18-19
- 1.4.3 群体感应19-20
- 1.4.4 侵染细胞的能力20
- 1.5 LM的检测技术20-24
- 1.5.1 传统分离检测技术20-21
- 1.5.2 PCR检测技术21-22
- 1.5.3 环介导等温扩增检测技术22
- 1.5.4 胶体金免疫层析检测技术22
- 1.5.5 酶联免疫吸附检测技术22-24
- 1.6 主要研究内容及研究意义24-25
- 2 群体感应抑制剂对单增李斯特菌菌落生长及生物膜形成的影响25-43
- 2.1 实验材料26
- 2.1.1 实验菌株26
- 2.1.2 实验试剂26
- 2.1.3 实验仪器26
- 2.2 实验方法26-30
- 2.2.1 测定QSI最小抑菌浓度及最低致死剂量26-27
- 2.2.2 QSI对LM菌落生长的影响27
- 2.2.3 QSI对LM总蛋白及胞外多糖含量的影响27-28
- 2.2.4 QSI与抗生素抑菌效果的比较28
- 2.2.5 QSI对LM生物膜形成的影响28-30
- 2.3 结果与讨论30-41
- 2.3.1 MIC和MBC的确定30
- 2.3.2 LM生长曲线的测定30-31
- 2.3.3 LM总蛋白及多糖含量变化曲线的测定31-34
- 2.3.4 QSI与抗生素抑菌效果的比较34-36
- 2.3.5 QSI作用下LM生物膜形成的研究36-41
- 2.4 本章小结41-43
- 3 群体感应抑制剂对单增李斯特菌侵染细胞的影响43-50
- 3.1 实验材料43-44
- 3.1.1 实验菌株和细胞43
- 3.1.2 实验试剂及主要耗材43-44
- 3.1.3 实验仪器44
- 3.2 实验方法44-46
- 3.2.1 单增李斯特菌的增菌培养44
- 3.2.2 Caco-2细胞的培养44-45
- 3.2.3 细胞增殖实验45
- 3.2.4 乳酸脱氢酶活性测定45-46
- 3.2.5 细菌黏附性测定46
- 3.3 结果与讨论46-49
- 3.3.1 MTT检测细胞增殖毒性46-47
- 3.3.2 乳酸脱氢酶活性测定47-48
- 3.3.3 QSI作用下LM黏附率的测定48-49
- 3.4 本章小结49-50
- 4 单增李斯特菌多克隆抗体的制备及快速检测方法的建立50-69
- 4.1 实验材料50-51
- 4.1.1 主要菌种和实验动物50
- 4.1.2 主要试剂50-51
- 4.1.3 主要实验仪器51
- 4.2 实验方法51-60
- 4.2.1 主要缓冲液的配制51-54
- 4.2.2 感受态细胞的制备54
- 4.2.3 iap基因的扩增54-55
- 4.2.4 表达载体的构建与鉴定55
- 4.2.5 重组蛋白p60的诱导表达及鉴定55-57
- 4.2.6 多克隆抗体的制备57
- 4.2.7 抗血清效价的测定57-58
- 4.2.8 多克隆抗体的纯化及其与磁珠的偶联58
- 4.2.9 最佳工作浓度的确定58-59
- 4.2.10 标准曲线的建立59
- 4.2.11 ELISA方法的特异性检测59-60
- 4.2.12 ELISA方法的重复性检测60
- 4.2.13 加标回收率的测定60
- 4.3 结果与讨论60-68
- 4.3.1 iap基因的扩增60-62
- 4.3.2 表达载体的构建与鉴定62-63
- 4.3.3 重组蛋白的诱导表达及表达产物的特异性鉴定63-64
- 4.3.4 抗血清效价的测定64
- 4.3.5 最佳工作浓度的确定64-65
- 4.3.6 ELISA标准曲线的建立65-66
- 4.3.7 ELISA方法的特异性检测66
- 4.3.8 ELISA方法的重复性检测66-67
- 4.3.9 加标回收率的测定67-68
- 4.4 本章小结68-69
- 5 结论与展望69-71
- 5.1 主要结论69
- 5.2 展望69-71
- 参考文献71-78
- 作者简历78
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