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CHO细胞表达重组人绒毛膜促性腺激素性腺激素的调控机理研究

发布时间:2017-10-24 06:14

  本文关键词:CHO细胞表达重组人绒毛膜促性腺激素性腺激素的调控机理研究


  更多相关文章: 细胞培养 人绒毛促性腺激素(hCG) 表达调控机理


【摘要】:人绒毛膜促性腺激素(Human chorionic gonadotropin, hCG)是由胎盘滋养细胞合成和分泌的一种双亚基糖蛋白激素,在治疗女性不孕、诱导排卵以及某些疾病的检测中起到重要的作用。传统hCG的生产方法是从孕妇尿中提取,但这种方法存在许多缺点,比如来源不受控制,纯化困难,批次间差异较大等,限制了hCG的临床使用。目前已有商品化的重组hCG (rhCG)上市,但由于对蛋白表达的调控机理缺乏了解,蛋白表达水平偏低。本文通过FLP-In定点整合系统筛选出了不同rhCG表达水平的稳定细胞株,并通过对不同表达水平细胞株的转录水平、翻译水平、组装折叠水平以及分泌水平的研究,揭示了rhCG蛋白表达的限制因素。 通过考察不同表达水平细胞株的mRNA丰度以及mRNA的稳定性和转录速率,以及通过ELISA检测方法检测不同表达水平细胞株的胞内胞外α亚基多肽、β亚基多肽以及完整hCG蛋白浓度,本文揭示了rhCG蛋白表达过程的各种限制因素:第一,不同表达水平细胞株β亚基的mRNA水平相对较高,这可能是rhCG蛋白表达所必需的,过量的β亚基合成可能能够促进rhCG的合成。进一步通过验证mRNA的稳定性和转录速率,证实了转录水平的差异并不是由于各亚基mRNA的稳定性差异引起的而是由于转录速率的差异引起的;第二,相比于β亚基的mRNA丰度,高表达细胞株中α亚基的转录水平存在明显限制;第三,在高表达细胞株中,无论是α亚基还是β亚基其从mRNA到多肽的合成步骤均存在明显限制,β亚基的限制尤其显著。这可能与β亚基的结构复杂性有关,β亚基比α亚基多一个链内二硫键和四个O糖链,细胞O糖链修饰能力的缺乏可能是导致这种限制发生的主要原因;第四,在本研究的rhCG蛋白表达水平下,蛋白在组装和分泌水平均不存在明显限制。 本文提出了一种双亚基蛋白表达调控机理研究的方法,揭示了rhCG蛋白表达过程的限制因素,对于构建高表达的rhCG工程细胞株具有重要的指导意义。
【关键词】:细胞培养 人绒毛促性腺激素(hCG) 表达调控机理
【学位授予单位】:华东理工大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2015
【分类号】:R329.2
【目录】:
  • 摘要5-6
  • Abstract6-10
  • 第1章 文献综述10-23
  • 1.1 人绒毛膜促性腺激素10-12
  • 1.1.1 人绒毛膜促性腺激素的简介10-11
  • 1.1.2 人绒毛膜促性腺激素的临床作用11
  • 1.1.3 人绒毛膜促性腺激素的生产方法简介11-12
  • 1.2 哺乳动物细胞表达系统生产重组蛋白药物12-14
  • 1.2.1 国内外重组蛋白药物的发展进程12
  • 1.2.2 中国仓鼠卵巢细胞(CHO)表达系统12-14
  • 1.3 定点整合系统筛选稳定表达细胞株14-17
  • 1.3.1 FLP-In定点整合系统的简介14-17
  • 1.3.2 FLP-In定点整合系统的优点17
  • 1.4 实时荧光定量PCR17-19
  • 1.4.1 实时荧光定量PCR的简介17-18
  • 1.4.2 实时荧光定量PCR的相对定量18-19
  • 1.4.3 实时荧光定量PCR的绝对定量19
  • 1.4.4 实时荧光定量PCR技术的应用19
  • 1.5 外源基因在哺乳动物细胞表达过程中限制因素的研究19-21
  • 1.5.1 载体设计、质粒整合和染色体环境20
  • 1.5.2 mRNA的稳定性和加工处理20-21
  • 1.5.3 蛋白质的翻译和分泌21
  • 1.6 研究内容与研究意义21-23
  • 第2章 人绒毛膜促性腺激素表达载体的构建23-40
  • 2.1 前言23
  • 2.2 实验材料23-24
  • 2.2.1 菌株和质粒23
  • 2.2.2 培养基和溶液23-24
  • 2.2.3 主要试剂、试剂盒、仪器设备及分析软件24
  • 2.3 实验方法24-31
  • 2.3.1 菌种培养和保藏24
  • 2.3.2 质粒抽提步骤24-25
  • 2.3.3 琼脂糖凝胶回收步骤25
  • 2.3.4 DH5α大肠杆菌感受态细胞的制备步骤25-26
  • 2.3.5 DH5α感受态细胞的转化26
  • 2.3.6 包含两个PCMV-BGHpA表达框的pcDNA5/FRT载体构建26-28
  • 2.3.7 含有α亚基的pcDNA5/FRT(2)-α载体的构建28-30
  • 2.3.8 含有α亚基和β亚基的pcDNA5/FRT-hCGαβ载体的构建30-31
  • 2.4 实验结果31-39
  • 2.4.1 包含两个PCMV-BGHpA表达框的pcDNA5/FRT载体构建31-35
  • 2.4.2 含有α亚基的pcDNA5/FRT(2)-α载体构建35-37
  • 2.4.3 含有β亚基的pcDNA5/FRT-hCGαβ载体构建37-39
  • 2.5 小结39-40
  • 第3章 FLP-In定点整合系统和流式细胞仪细胞分选技术的建立40-47
  • 3.1 前言40
  • 3.2 实验材料40-42
  • 3.2.1 细胞株、质粒40-41
  • 3.2.2 培养基和溶液41
  • 3.2.3 实验试剂和仪器41-42
  • 3.3 实验方法42-43
  • 3.3.1 细胞培养42
  • 3.3.2 质粒转染42
  • 3.3.3 流式细胞仪检测细胞的转染效率42
  • 3.3.4 FLP-In定点整合系统宿主细胞株的筛选42-43
  • 3.3.5 FLP-In定点整合系统表达细胞株的筛选43
  • 3.4 实验结果43-45
  • 3.4.1 FLP-In定点整合系统宿主细胞系筛选转染效率的测定43-44
  • 3.4.2 流式细胞仪分选细胞44-45
  • 3.5 小结45-47
  • 第4章 CHO细胞表达rhCG蛋白的表达调控机理研究47-59
  • 4.1 前言47
  • 4.2 实验材料47-48
  • 4.2.1 细胞株、培养基47
  • 4.2.2 实验试剂和仪器47-48
  • 4.3 实验方法48-52
  • 4.3.1 总RNA抽提和hCG mRNA的测定48-49
  • 4.3.2 hCG各亚基mRNA稳定性分析49
  • 4.3.3 实时荧光定量PCR绝对定量标准品的制备49-50
  • 4.3.4 转录速率分析50-51
  • 4.3.5 ELISA方法检测hCG各亚基和完整hCG蛋白的浓度51-52
  • 4.4 实验结果52-57
  • 4.4.1 不同表达水平细胞株各亚基mRNA水平的比较52-53
  • 4.4.2 不同表达水平细胞株各亚基mRNA稳定性的比较53-54
  • 4.4.3 不同表达水平细胞株转录速率的比较54-55
  • 4.4.4 不同表达水平细胞株胞内胞外α亚基多肽和β亚基多肽水平的比较55-56
  • 4.4.5 不同表达水平细胞株胞内胞外完整rhCG蛋白浓度的比较56-57
  • 4.5 小结57-59
  • 第5章 总结与展望59-61
  • 5.1 总结59
  • 5.2 主要创新点59-60
  • 5.3 展望60-61
  • 参考文献61-68
  • 致谢68

【共引文献】

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9 田,

本文编号:1087422


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