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高致病性猪繁殖与呼吸综合征病理学研究及其病毒的序列分析

发布时间:2016-10-27 17:50

  本文关键词:高致病性猪繁殖与呼吸综合征病理学研究及其病毒的序列分析,,由笔耕文化传播整理发布。


《内蒙古农业大学》 2010年

高致病性猪繁殖与呼吸综合征病理学研究及其病毒的序列分析

刘永宏  

【摘要】: 猪繁殖与呼吸综合征(Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome, PRRS)是由猪繁殖与呼吸综合征病毒(Porcine Reproductive and Respiratory Syndrome Virus, PRRSV)引起猪的一种传染病,表现为母猪生殖衰竭和仔猪、成年猪呼吸困难,是影响养猪业最大的传染病之一。PRRSV属于动脉炎病毒科成员,基因组长度约为15kb~15.5kb,至少含有9个开放阅读框架,编码20种以上成熟的蛋白质。根据基因型和抗原性的差异将PRRSV分为北美洲型和欧洲型两种,各自代表株分别为VR-2332株和LV株。2006年在中国暴发了空前规模巨大的猪高热症,感染猪达200万头以上,至少40万头死亡,这给中国经济带来巨大的损失,也严重威胁了全球养猪业和世界公共卫生。 本研究为了分析猪高热症的真正原因,通过对北京各郊区县和周边地区15个猪养殖场(户)55个病例进行发病情况、流行病学调查和临床症状观察,以及通过对发病猪和病死猪剖检、病理组织学观察、免疫组化染色和电镜观察,同时对冰冻病料和血清做了核酸和抗体检测。研究结果表明:PRRSV核酸阳性率为60%,猪圆环病毒2型(Porcine Circovirus Type 2, PCV-2)核酸阳性率为32.7%,PRRSV和PCV-2混合感染率为18.2%;此次猪高热症的主要病原是PRRSV,发病特点不同于以往典型的PRRS,同时有PCV-2的混合感染;PRRS病理组织学病变群主要为间质性肺炎、非化脓性脑炎、出血性坏死性淋巴结炎、急性炎性脾肿、变质性心肌炎、急性间质性肾炎伴随肾病和出血、坏死性扁桃体炎、母猪子宫内膜炎、变质性肝炎和肝细胞可见胞浆内嗜酸性包涵体;PRRSV阳性脏器为肺脏、脾脏、淋巴结、扁桃体、脑、肝脏、肾脏、肾上腺、胃肠和心脏;PRRSV阳性细胞为单核-巨噬细胞、黏膜上皮细胞、淋巴细胞、血管内皮细胞、腺上皮细胞(肺上皮细胞、肝细胞、肾小管上皮细胞等)、杯状细胞、纤维细胞、成纤维细胞、心肌细胞、神经细胞、胶质细胞和软骨细胞。 为了分析此次疫情高发病率和高死亡率的原因,本研究将4份没有接种PRRS疫苗RT-PCR鉴定为单一PRRSV阳性的病料,接种MARC-145细胞进行病毒分离,经RT-PCR、IFA和电镜鉴定,表明分离到4株病毒且均为PRRSV,其TCID50均为10-6.5/0.1mL,命名为BJSY-1、BJPG、BJSD和BJBLZ株。进一步设计了相互重叠的16段引物,RT-PCR产物直接纯化、测序和拼接,得到4株PRRSV的全基因序列,运用分子生物学软件进行比对和遗传演化分析,结果显示:本研究分离的BJSY-1、BJPG、BJSD和BJBLZ株基因全长分别为15319nt、15315nt、15345nt和15316nt,通过美国国立生物技术信息中心(NCBI)的审核,GenBank登录号分别为FJ950744、FJ950746、FJ950747和FJ950745;本研究的4株与北美洲型毒株核苷酸同源性在83.3%~99.4%之间,与欧洲型毒株核苷酸同源性只有58.3%左右,均属于北美洲型亚群Ⅱ,且属于HP-PRRSV;ORF6基因与北美洲株同源性和欧洲株同源性均最高,其次是ORF2基因,再次是ORF7、ORF4和ORF5基因,同源性最低的是ORF3基因。 本研究选择了HP-PRRSV BJSY-1株变异性最小的ORF6基因,设计合成了一对特异性引物,扩增ORF6基因片段克隆入原核表达载体pET-32a(+),重组质粒pET-ORF6转化BL21宿主菌后,鉴定构建成功后摸索合适条件诱导表达M蛋白,纯化回收得到了可溶性的具有免疫学反应活性的融合蛋白HIS-M,分子量约为39kDa。本研究得到了一种稳定的、免疫原性好的抗原,为制备单抗或作为检测抗原奠定了基础。 考虑到PRRSV抗体和抗原双阴性猪不易获得,试图寻找一种标准的且对PRRSV易感的实验动物代替猪来研究PRRSV,同时为了验证致病力增强的HP-PRRSV BJSY-1毒株是否可以感染其它动物。本研究对BALB/c小白鼠和日本大耳白兔进行了不同剂量的人工感染实验,攻毒后观察体温、体重等变化,按照实验设计定期剖检取材进行PRRSV核酸检测和病理学检查。结果显示:小白鼠和兔体温、体重等无异常变化,PRRSV核酸检测阴性,没有出现PRRSV特异的病理组织学变化。本研究证实了HP-PRRSV不感染BALB/c小白鼠和日本大耳白兔。

【关键词】:
【学位授予单位】:内蒙古农业大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2010
【分类号】:S858.28
【目录】:

  • 摘要3-5
  • Abstract5-14
  • 1 文献综述14-46
  • 1.1 国内外研究现状14-15
  • 1.2 病原学15-28
  • 1.2.1 PRRSV 的基本特征15
  • 1.2.2 PRRSV 的起源学说15-17
  • 1.2.3 抗体依赖增强作用(Antibody dependent enhancement, ADE)17
  • 1.2.4 细胞培养和 PRRSV 的分离17-18
  • 1.2.5 PRRSV 基因结构及遗传变异18-26
  • 1.2.6 PRRSV 蛋白的体外表达与应用26-27
  • 1.2.7 PRRSV 在猪体内的分布27-28
  • 1.3 PRRSV 免疫学与致病机制的研究进展28-30
  • 1.4 流行病学研究进展30-35
  • 1.4.1 传染源30
  • 1.4.2 易感动物30-31
  • 1.4.3 传播途径31-32
  • 1.4.4 流行规律32-33
  • 1.4.5 影响 PRRS 流行或疾病严重程度的因素33-35
  • 1.4.6 猪繁殖与呼吸综合征病毒在中国的发生于流行35
  • 1.5 临床症状及病理学特征35-41
  • 1.5.1 临床症状35-37
  • 1.5.2 病理学变化37-41
  • 1.6 PRRS 的诊断41-43
  • 1.6.1 病原鉴定42
  • 1.6.2 血清学实验42-43
  • 1.7 预防、控制与扑灭43-45
  • 1.7.1 预防43-45
  • 1.7.2 控制与扑灭45
  • 1.8 研究的目的和意义45-46
  • 2 HP-PRRS 的病理学研究46-90
  • 2.1 材料与方法46-53
  • 2.1.1 材料46-47
  • 2.1.2 方法47-53
  • 2.2 结果53-83
  • 2.2.1 自然病例发病情况和流行病学调查53-56
  • 2.2.2 自然病例临床症状56
  • 2.2.3 自然病例血清学检查56-57
  • 2.2.4 自然病例核酸检测57-58
  • 2.2.5 自然病例病理学检查58-78
  • 2.2.6 人工感染 HP-PRRSV 病例78-83
  • 2.3 讨论83-89
  • 2.3.1 高热病病因分析83-84
  • 2.3.2 发病特点分析84-85
  • 2.3.3 病理学分析85-87
  • 2.3.4 抗原定位分析87-88
  • 2.3.5 发病机理分析88-89
  • 2.4 结论89-90
  • 3 4 株 HP-PRRSV 的分离和鉴定90-98
  • 3.1 材料与方法90-93
  • 3.1.1 材料90-91
  • 3.1.2 方法91-93
  • 3.2 结果93-95
  • 3.2.1 病毒增殖93
  • 3.2.2 RT-PCR 结果93-94
  • 3.2.3 间接免疫荧光抗体鉴定94
  • 3.2.4 透射电镜观察94
  • 3.2.5 TCID50的测定94-95
  • 3.2.6 病毒血凝性实验95
  • 3.3 讨论95-97
  • 3.3.1 PRRSV 的分离95-96
  • 3.3.2 PRRSV 的鉴定96-97
  • 3.4 结论97-98
  • 4 4 株 HP-PRRSV 的遗传演化分析98-135
  • 4.1 材料与方法98-101
  • 4.1.1 材料98-100
  • 4.1.2 方法100-101
  • 4.2 结果101-129
  • 4.2.1 PCR 结果101-102
  • 4.2.2 4 株 PRRSV 基因序列分析102-110
  • 4.2.3 BJSY-1 株各蛋白生物学信息剖析110-129
  • 4.3 讨论129-134
  • 4.3.1 关于5′UTR、ORF1 和3′UTR 的分析129-130
  • 4.3.2 关于ORF2~ORF7 的分析130-133
  • 4.3.3 关于BJSY-1 株的详细分析133-134
  • 4.4 结论134-135
  • 5 HP-PRRSV ORF6 基因克隆、原核表达及其纯化135-149
  • 5.1 材料与方法135-142
  • 5.1.1 材料135-136
  • 5.1.2 方法136-142
  • 5.2 结果142-147
  • 5.2.1 ORF6 基因片段的扩增142
  • 5.2.2 重组质粒双酶切及 PCR 鉴定142-143
  • 5.2.3 重组质粒的测序与序列分析143-145
  • 5.2.4 最佳诱导表达条件的确定145
  • 5.2.5 ORF6 表达产物的SDS-PAGE 检测和Western-blot 分析145-146
  • 5.2.6 融合表达产物的可溶性鉴定146
  • 5.2.7 M 蛋白纯化效果分析146-147
  • 5.3 讨论147-148
  • 5.4 结论148-149
  • 6 HP-PRRSV 对实验动物致病性的研究149-157
  • 6.1 材料和方法149-151
  • 6.1.1 材料149
  • 6.1.2 方法149-151
  • 6.2 结果151-154
  • 6.2.1 PRRSV 对试验小白鼠的感染性结果151-153
  • 6.2.2 PRRSV 对试验兔的感染性结果153-154
  • 6.3 讨论154-156
  • 6.3.1 PRRSV 不感染小白鼠和兔154-155
  • 6.3.2 不感染小白鼠和兔的原因分析155-156
  • 6.4 结论156-157
  • 7 论文结论和创新点157-159
  • 7.1 论文结论157
  • 7.2 创新点157-159
  • 致谢159-160
  • 附录160-170
  • 参考文献170-188
  • 作者简介188
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