重组人胰岛素原在大肠杆菌中的可溶性表达及分离纯化研究
[Abstract]:Diabetes mellitus is a metabolic disorder caused by relative or absolute insufficiency of insulin secretion. Exogenous insulin was mainly extracted from animal pancreas before, but the difference of amino acid composition between animal insulin and human insulin caused great side effects, which caused great pain to patients. With the rapid development of molecular biology and genetic engineering technology, the production of human insulin and its analogues by bioengineering technology has become a hot topic. However, in the process of using E. coli and other microorganisms to express and produce insulin, the expression products often form inclusion bodies, and the active human insulin can only be obtained through denaturation and renaturation, which brings great inconvenience to the subsequent separation and purification. It also affects the final yield of the target protein. The aim of this study was to make proinsulin gene expressed in soluble form by reasonable design, selection of expression system and optimization of fermentation conditions, and to establish a convenient and effective purification process. In this experiment, pET32-a vector and BL21 Escherichia coli expression system were selected. According to the codon bias of Escherichia coli, the enterokinase site was designed at the N-terminal of proinsulin gene, and the oligonucleotide fragment of human proinsulin gene was synthesized. The proinsulin gene was obtained by ligation and PCR amplification. The proinsulin gene was first ligated to pMD 18-T vector by subcloning. After sequencing, the correctly sequenced human proinsulin gene was integrated into the pET32-a vector, and the expression vector was constructed. The recombinant plasmid was transformed into BL21, by sequencing the correct recombinant plasmid. The recombinant bacteria were constructed to express proinsulin gene and thioredoxin with 6XHis tag. The expressed target protein could be separated and purified by affinity chromatography. In the experiment, the culture temperature and IPTG induction concentration of engineering bacteria were optimized. The engineering bacteria were cultured at 300C and induced under the final concentration of 0.6mM IPTG. The expression product was expressed in the supernatant after breaking the bacteria. It is proved that the target protein is expressed in soluble form. SDS-PAGE and Westen blotting analysis showed that the molecular weight of the expressed protein was consistent with the theoretical molecular weight and had the immunogenicity of insulin, which proved that the proinsulin gene was correctly expressed. The separation and purification of recombinant human proinsulin were studied. The bacteria were collected by centrifugation, the supernatant was separated by metal chelate chromatography column, and the target protein was purified by ion exchange column. After dialysis, the samples were digested with enterokinase and carboxypeptidase, the affinity column was used to remove the fusion protein, the 6XHis label was removed, and the insulin and conjugated peptides were separated by gel chromatography, and the insulin sample solution was collected. The activity of lmL samples was 102 渭 IU, which showed that the samples had human insulin activity.
【学位授予单位】:四川师范大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2007
【分类号】:R587.1;R341
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,本文编号:2294977
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