抗人肿瘤坏死因子-α人源单克隆抗体在CHO细胞中的表达及鉴定
【图文】:
中国生物制品学杂志2014年12月第27卷第12期ChinJBiologicalsDecember2014,Vol.27No.12本实验应用二氢叶酸还原酶(dihydrofolatereductase,DHFR)筛选系统构建稳定表达抗hTNF-α人源单抗的CHO细胞株,并对抗体纯化后进行初步鉴定。1材料与方法1.1细胞及质粒CHO-DG44细胞购自美国Invitrogen公司;L929细胞和含编码抗hTNF-α人源单克隆抗体轻、重链可变区及恒定区基因的真核表达质粒pHL(图1)为北京生物制品研究所有限责任公司第三研究室保存。图1质粒pHL图谱Fig1.MapofplasmidpHL1.2主要试剂及仪器CDFORTICHOMedium、HTmediasupplement和LipofectamineTM2000均购自美国Invitrogen公司;PvuⅠ内切酶购自美国NEB公司;甲氨蝶呤(methotrexate,MTX)、放线菌素D和MTT均购自美国Sigma公司;重组TNF-α购自北京义翘神州生物技术有限公司;MabSelectSuRe和Captoadhere层析柱、HBS-EP、乙醇胺、CM5传感芯片和BIAcore3000系统均购自美国GEHealthcare公司;HPLC系统购自日本岛津公司;色谱柱Protein-Pak300SW购自美国WATERS公司。1.3抗hTNF-α人源单抗CHO表达细胞株的构建将CHO-DG44细胞按3×105个/ml的密度接种于125ml三角瓶中,将经内切酶PvuⅠ线性化的质粒pHL(30μg)与脂质体LipofectamineTM2000混合,加入细胞培养液中,用含HTmediasupplement的CDFORTICHO培养基,于37℃,8%CO2,130r/min悬浮培养48h;再用CDFORTICHO培养基(不含HT)进行选择性培养,MTX加压筛选,有限稀释法挑选单克隆,获得分泌表达抗hTNF-α人源单抗的CHO细胞株。1.4抗hTNF-α人源单抗的表达和纯化将抗hTNF-α人源单抗稳定表达细胞株按3×105个/ml的密度接种于1L三角瓶中,,用CDFORTICHO培养基,于37℃,8%CO2,130r/
第27卷第12期ChinJBiologicalsDecember2014,Vol.27No.12和Captoadhere层析两步纯化抗体,获得较纯的抗hTNF-α人源单抗,见图3~5。2.2抗hTNF-α人源单抗的纯度2.2.1SDS-PAGE分析纯化的抗hTNF-α人源单抗经12%SDS-PAGE分析,可见纯度较好的抗体重链、轻链和完整抗体条带,见图6。图2表达抗hTNF-α人源单抗的CHO细胞株的生长曲线Fig2.GrowthcurveofCHOcellsexpressinghumanmono-clonalantibodyagainsthTNF-α图3MabSelectSuRe层析结果Fig3.MabSelectSuRechromatogramofhumanmonoclonalantibodyagainsthTNF-α图4Captoadhere层析结果Fig4.CaptoadherechromatogramofhumanmonoclonalantibodyagainsthTNF-αM:蛋白质marker;1:培养上清;2:亲和流穿;3,4:亲和洗脱;5:adhere流穿。图5纯化各步样品的还原SDS-PAGE分析Fig5.ReducedSDS-PAGEprofileofsamplesatvariousstepsofpurificationM:蛋白质marker;1:还原;2:非还原。图6纯化的抗hTNF-α人源单抗的SDS-PAGE分析Fig6.SDS-PAGEprofileofpurifiedhumanmonoclonalantibodyagainsthTNF-α2.2.2SEC-HPLC分析经测定,抗hTNF-α人源单抗的SEC-HPLC纯度为98.79%,见图7。图7纯化的抗hTNF-α人源单抗的SEC-HPLC分析Fig7.SEC-HPLCprofileofpurifiedhumanmonoclonalantibodyagainsthTNF-α2.3抗hTNF-α人源单抗的N-末端氨基酸序列测序结果显示,抗hTNF-α人源单抗的轻链N-末端序列为DIQMTQSPSSLSASV,重链N-末端序列为EVQLVESGGGLVQPG,与预期轻、重链N-末端氨基酸序列一致。表明抗体完全表达,且信号肽剪切正确。02468101214时间(d)020406080100120细胞活率(%)活细胞数(×106)01234567
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