小鼠脂肪间充质干细胞的分离培养及其在肝内归巢
【图文】:
;每毫升细胞悬液中加入1μlCFSE,,5%CO2培养箱37℃孵育15min,期间注意混匀,全培洗涤2遍。用高糖DMEM将细胞重悬成1×107/ml;由尾静脉注射100μl到正常BALB/c小鼠体内(n=3)。7d后制取肝脏冰冻切片,DAPI染色后荧光显微镜下观察。以正常BALB/c小鼠的肝脏做对照。2结果2.1小鼠ADSCs的形态学观察小鼠ADSCs接种于培养皿24h后,可见细胞已经贴壁,48hr后换液去除非贴壁细胞,可见细胞已经生长出触角,呈梭形或三角形;开始几天细胞生长缓慢,生长1周左右,细胞60%~70%融合,成纤维样生长,细胞形态一致(图1),之后细胞增殖速度明显加快,很快能够达到90%以上融合状态,呈螺旋状生长。2.2小鼠ADSCs表面标志物的表达细胞传代纯化后取第3代ADSCs进行流式检测CD29、CD90(间充质干细胞标志物),CD34(造血干细胞标志物),CD45(白细胞标志物),CD14(单核细胞标志物),CD11b(巨噬细胞标志物)等表达,如图2A,B所示,分离培养的ADSCs高表达CD29(99.8%)和CD44(93.7%);CD34、CD45、CD11b和CD14的峰与ISOTYPE(同型对照)峰完全重叠,阳性率为0,说明ADSCs不表达CD34、CD45、CD11b和CD14。ADSCs具有低免疫原性,因此我们检测了其表面免疫相关分子的表达。流式细胞仪结果显示,小鼠ADSCs不表达CD40,CD86,PDL-1,MHCI以及MHCII,这些免疫分子的峰与阴性对照峰完全重叠;CD80的峰较同型对照峰稍右移,表现为低表达CD80(图2C);而在IFN-γ刺激下,CD80、CD86、PDL-1的峰较同型对照峰右移,表现出轻度上调(图3),其它免疫相关分子无明显变化。2.3小鼠脂肪间充干细胞的细胞周期检测原代ADSCs长满后,收集细胞进行细胞周期分析:G0/G1、S、G2/M的细胞所占的比例分别为80.1%、7.9%、12%。分离培养的细胞大部
其它无明显的变化。而且有学者发现ADSCs在体外不能刺激细胞毒性T细胞反应[12],这些都为ADSCs的同种异体移植时逃逸宿主免疫监控提供了理论上的可能。间充质干细胞具有向肝细胞分化的潜能,最早在2005年报道细胞因子cocktail法可以诱导ADSCs向肝样细胞诱导[13],ADSC能够分泌细胞因子和肝再生生长ventsE10010110210393.7%ISOTYPECD442560AventsE10010110210399.8%ISOTYPECD292560BventsE100101102103ISOTYPECD802560C图2小鼠ADSCs表面标志物和免疫分子的表达Fig.2Surfaceandimmune-relatedmarkersexpressions(red)onmouseADSCs.A:CD44;B:CD29;C:CD80.ISOTYPE:Negativecontrol(Black).ventsE100101102103ISOTYPECD402560AventsE100101102103ISOTYPECD802560BventsE100101102103ISOTYPEPDL-12560C图3IFN-γ对小鼠ADSCs表面免疫分子表达的影响Fig.3EffectofIFN-γontheexpressionofimmune-relatedmarkersonADSCs.A:CD40;B:CD80;C:PDL-1.图4小鼠ADSCs的肝内归巢Fig.4CellhomingtotheliverofmouseADSCs.A:DAPI;B:CFSE;C:DAPIandCFSEoverlay.ABCOverlayCFSEDAPIhttp://www.j-smu.comJSouthMedUniv,2013,33(8):1151-1154··1153
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本文编号:2562007
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