当前位置:主页 > 医学论文 > 基础医学论文 >

RTA调控KSHV复制与免疫逃逸机制的研究进展

发布时间:2020-11-02 12:15
   卡波西氏肉瘤相关疱疹病毒(Kaposi’s sarcoma-associated herpesvirus,KSHV)属于γ疱疹病毒亚科,与多种人类恶性肿瘤等疾病密切相关。KSHV存在潜伏和裂解两种复制周期,并能够编码在γ疱疹病毒中保守的复制转录激活因子(Replication and transcription activator,RTA)来控制自身的激活。但是,RTA发挥功能的机制尚不完全明确。近年来,人们发现KSHV的RTA具有泛素连接酶的活性,能够利用人体细胞内的泛素-蛋白酶体系统(Ubiquitin-proteasome system,UPS)降解多种细胞蛋白和病毒蛋白。本文对RTA操纵宿主细胞UPS调控KSHV复制与免疫逃逸机制的最新研究进展进行了综述。
【部分图文】:

示意图,疱疹,肉瘤,病毒


自RTA发现以来,其功能机制研究多集中于前两种方式。但是随着RTA泛素连接酶功能的发现,研究人员在RTA调控裂解复制阻遏蛋白的机制研究方面不断取得突破,人们对其发挥功能的方式了解地也越发深入。2 RTA与泛素-蛋白酶体系统(UPS)

免疫反应,蛋白酶,基因,人体


组蛋白修饰可以调节转录因子与DNA之间的联系。部分阻遏蛋白是通过调控组蛋白修饰来抑制KSHV的激活。据研究,KSHV的IE基因和E基因区域存在H3K4me3和H3K27me3两种二价组蛋白修饰,其中H3K4me3标记有利于基因转录,而H3K27me3标记则会起到抑制作用[52]。2017年,Lyu等[51]发现RTA能够操纵UPS降解锌指蛋白ZIC2,以此来调节IE基因启动子区域的组蛋白修饰,激活病毒裂解复制。ZIC2是ZIC家族中的五种蛋白质之一[51]。在KSHV潜伏期,ZIC2通过与PRC2复合体(Polycomb repressive complex 2,PRC2)直接相互作用,帮助PRC2定位到KSHV的IE基因区域,然后在PRC2的作用下,IE基因启动子区域发生H3K27me3组蛋白修饰,导致IE基因的转录被抑制[53]。在RTA存在时,RTA对ZIC2的泛素化降解作用,使得PRC2无法定位到KSHV的IE基因区域,促进转录的H3K4me3组蛋白修饰则会取代H3K27me3,激活KSHV裂解复制(图3A)。

泛素化,疱疹,肉瘤,病毒


小泛素样修饰蛋白(Small ubiquitin-like modifier,SUMO)是类泛素蛋白超家族的一员,能够与多种蛋白质共价结合,影响它们的活性、亚细胞定位以及相互作用[57]。许多细胞蛋白的功能需要类泛素化来调节。与泛素化过程相似,类泛素化过程需要SUMO激活酶、SUMO结合酶、SUMO连接酶的参与[58]。同时类泛素化蛋白又可以在SUMO靶向泛素连接酶(SUMO-targeted ubiquitin ligase,STUbL)的作用下被UPS降解[59]。因此,一些病毒会编码具有STUbL活性的病毒蛋白操纵宿主的类泛素化机器来调节自身的复制。研究表明,KSHV的RTA就是一种STUbL。RTA中含既有SUMO结合模体(SUMO-interacting motif,SIM),能够与SUMO和类泛素化蛋白结合;又含有具有泛素连接酶功能的Cys/His富集区,能够使类泛素化蛋白泛素化并被蛋白酶体识别后降解[60]。早幼粒细胞白血病蛋白(Promyelocytic leukemia protein,PML)是受RTA影响的重要蛋白质之一。PML经类泛素化修饰后能够与SP100、转录调节因子ATRX、死亡结构域相关蛋白(Death domain associate protein,DAXX)等组成PML核体(Promyelocytic leukemia nuclear bodys,PML-NBs),被认为是类泛素化蛋白的储存库[61]。PML-NBs对病毒感染具有双重影响。一方面,PML-NBs作为阻遏因子,可以沉默KSHV的裂解基因;另一方面,PML-NBs参与IFN-Ⅰ途径,能够辅助激活宿主的先天免疫反应[62],消灭KSHV(图4)。早期研究表明,KSHV会利用自身的ORF75和病毒干扰素调节因子3(Virus interferon regulatory factor 3,vIRF3)分别影响DAXX和PML的再分配来抵御PML-NBs对其复制的阻遏[63-65]。而RTA对PML-NBs的调控则是一种完全不同的方式:RTA首先与类泛素化的PML相互作用并泛素化,然后具有泛素标记的PML被蛋白酶体识别后降解。由于PML是PML-NBs组装形成的必须成分,PML的降解可以有效地使PML-NBs解体,从而解除PML-NBs对KSHV复制转录激活的抑制,同时帮助KSHV逃过宿主的免疫反应(图4)。
【相似文献】

相关期刊论文 前10条

1 杨丽莎;;疱疹病毒gH蛋白功能研究进展[J];中国畜牧兽医文摘;2018年04期

2 路立婷;程安春;汪铭书;;疱疹病毒VP11/12蛋白的研究进展[J];中国人兽共患病学报;2010年06期

3 姜龙;刘会娟;程安春;汪铭书;陈正礼;贾仁勇;朱德康;陈孝跃;;疱疹病毒gB基因及其编码蛋白研究进展[J];病毒学报;2010年05期

4 张继一;刘宝山;赵玉军;;猫疱疹病毒1型gD基因的表达[J];黑龙江畜牧兽医;2009年11期

5 虎俊隆;疱疹病毒与神经节[J];固原师专学报;2004年06期

6 王福忠,那立新,杨明久;免疫核糖核酸转移抗疱疹病毒免疫活性的研究[J];中国免疫学杂志;1988年04期

7 雷兆寿,王永坤,周阳生;丹顶鹤疱疹病毒在细胞内的复制及形态学特性[J];病毒学报;1989年02期

8 郭培宣;疱疹病毒α-亚科部份成员gC等同膜糖蛋白的同源性及进化[J];病毒学报;1989年04期

9 ;疱疹病毒在艾滋病发病机理中的作用[J];国外医学(内科学分册);1989年Z1期

10 谭宇鑫;伊淑帅;郭衍冰;牛江婷;李登亮;胡桂学;;疱疹病毒致病机制的研究进展[J];中国兽医学报;2019年04期


相关博士学位论文 前1条

1 齐眉;人疱疹病毒8型重组蛋白的制备和应用及其感染的流行病学调查[D];山东大学;2006年


相关硕士学位论文 前6条

1 刘晓晓;猫疱疹病毒HR-1毒株的分离鉴定及其间接ELISA方法的建立[D];中国农业科学院;2019年

2 于婉琪;CRISPR/Cas9敲除技术在重组动物疱疹病毒构建中的初步应用[D];西北农林科技大学;2019年

3 白银荣;利用CRISPR/Cas9技术构建表达EGFP的两株重组火鸡疱疹病毒rHVT-US2/US10-EGFP[D];内蒙古农业大学;2018年

4 李航;猫疱疹病毒Ⅰ型gI基因序列分析及PCR检测方法的建立[D];内蒙古农业大学;2017年

5 郭颖;鸽疱疹病毒全基因克隆及DNA疫苗的制备[D];东北林业大学;2017年

6 黄燕琳;逆行性牙髓炎与人疱疹病毒的相关性研究[D];广西医科大学;2013年



本文编号:2867033

资料下载
论文发表

本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/jichuyixue/2867033.html


Copyright(c)文论论文网All Rights Reserved | 网站地图 |

版权申明:资料由用户fa319***提供,本站仅收录摘要或目录,作者需要删除请E-mail邮箱bigeng88@qq.com