当前位置:主页 > 医学论文 > 基础医学论文 >

膜联蛋白A2在登革病毒Ⅱ型入胞过程中作用的初步研究

发布时间:2020-11-03 04:38
   目的探讨膜联蛋白A2(annexin A2, ANXA2)在登革病毒Ⅱ型(dengue virus typeⅡ, DENV-2)入胞过程中的作用。方法通过敲低ANXA2和S100钙结合蛋白A10(S100A10)表达以及抗体阻断实验验证ANXA2在DENV-2复制周期中的作用,并进一步通过激光共聚焦显微镜观察、免疫共沉淀分析明确ANXA2与DENV-2 E蛋白的相互作用。结果 DENV-2感染ANXA2和S100A10敲低的细胞中,DENV-2 RNA水平显著降低;ANXA2抗体和DENV-2 E蛋白抗体可有效抑制DENV-2的入胞效率,细胞内病毒RNA水平显著低于对照组;此外,ANXA2在DENV-2感染细胞中由细胞质募集到细胞膜上,与DENV-2 E蛋白有相互作用。结论 ANXA2是DENV-2入胞过程中重要的宿主分子,有望为抗DENV-2研究提供新的靶点。
【部分图文】:

病毒,蛋白,阶段,巨细胞病毒


ANXA2是一种重要的钙离子依赖性磷脂结合蛋白,分子量约为38 kDa,参与细胞的多种生理生化活动,如胞膜运动、囊泡运输、胞吞和胞吐作用等。在细胞受到刺激后,ANXA2从细胞质转移到细胞膜,与S100A10形成异源四聚体[10]。本研究通过激光共聚焦显微镜观察到DENV-2吸附至Huh-7细胞的过程中,可诱导细胞质内分布的ANXA2募集到细胞膜上,并且与DENV-2 E蛋白共定位,而S100A10是否在此过程中起作用还需继续研究;免疫共沉淀实验进一步明确了DENV-2 E蛋白与ANXA2和S100A10的相互作用。在之前的研究报道中,ANXA2参与了HPV-16和巨细胞病毒的内吞过程,并且可增强病毒感染[13-14]。HPV-16在人角质形成细胞中诱导ANXA2转移到细胞膜外,从而作为受体分子结合HPV-16并介导病毒内吞;在人巨细胞病毒感染过程中,病毒与ANXA2结合并增强了人巨细胞病毒的感染[15]。此外,还有研究发现,在感染HBV后的细胞中,细胞膜上ANXA2水平逐渐下降,可有效防止HBV的过度感染[16]。另有研究观察到ANXA2在人胚横纹肌瘤细胞表面的表达增强了EV71型的感染[17]。图4 ANXA2、S100A10与DENV-2 E蛋白在细胞内的相互作用

蛋白,细胞,相互作用,病毒


图3 ANXA2与DENV-2 E蛋白在病毒入胞阶段的共定位分析本研究中,低表达S100A10和ANXA2的细胞中,DENV-2 RNA的复制水平降低,提示S100A10和ANXA2对DENV-2的复制周期有显著影响。抗体阻断实验中,以DENV-2 E蛋白抗体作为阳性对照、鼠IgG抗体作为阴性对照,ANXA2抗体可显著抑制进入细胞的DENV-2,表明ANXA2在DENV-2入胞阶段参与DENV-2的复制周期,是DENV-2感染起始过程中的重要宿主因子之一。因此,ANXA2在多种病毒包括DENV-2感染细胞的入胞过程中均起到重要的促进作用。除了参与病毒的入胞阶段,ANXA2在HCV致病机制中也起着重要作用,可将病毒NS3/NS4A募集到脂筏微结构域,从而在Huh7.5细胞中启动病毒复制复合物[18]。DENV-2与HCV具有相似的复制机制,ANXA2是否在DENV-2入胞后的复制阶段调控病毒的翻译和转录尚未见报道。此外,ANXA2促进DENV-2入胞是以单体形式还是与S100A10形成四聚体形式发挥功能还须深入研究。

细胞,效果,抗体,基因


基因敲低实验结果显示,3对针对ANXA2的shRNA中,与对照组相比,1号shRNA可抑制63.6%ANXA2 mRNA表达(t=6.222,P=0.003),2号shRNA可抑制77.8%ANXA2 mRNA表达(t=7.671,P=0.002),3号sh RNA无抑制效果(t=0.037,P=0.972)(见图1A);3对针对S100A10的shRNA中,与对照组相比,1号shRNA无抑制效果(t=2.096,P=0.104),2号sh RNA可抑制85.1%S100A10m RNA表达(t=6.382,P=0.003),3号shRNA可抑制41.4%S100A10 mRNA表达(t=2.842,P=0.047)(见图1 B);ANXA2敲低的细胞中,DENV-2 RNA水平为对照组的14.2%(t=14.860,P=0.000),S100A10敲低的细胞中,DENV-2RNA水平为对照组的44.7%(t=6.881,P=0.002)(见图1 C)。2.2 ANXA2抗体可有效阻断DENV-2感染Huh-7细胞
【相似文献】

相关期刊论文 前10条

1 姚海军,曹虹,郭辉玉;用DIA测定登革病毒Ⅱ型NS1McAb的亲和力[J];细胞与分子免疫学杂志;1996年03期

2 周兰兰;魏泉德;张丽荣;林毅雄;李红霞;郑予柯;沈韧;;珠海市2013年手足口病患儿柯萨奇病毒A2型分离株基因特征分析[J];中国病毒病杂志;2015年02期

3 王书奎,黄宇烽,夏欣一,李保仝,王自正,刘猛六;抗人精浆磷脂酶A2单克隆抗体细胞株的建立与鉴定[J];中华男科学;2002年03期

4 李志军,王家泰,吴胜群,宗育杉,王玮,王今达,崔乃杰;血栓素A2与微循环障碍在实验性应激性溃疡中的作用及其防治[J];微循环学杂志;1996年02期

5 杨慧芳;;如何正确使用ⅡA2生物安全柜[J];中国卫生检验杂志;2006年11期

6 程洪强,张琛,胡红雨,许根俊;不同因素对人Ⅹ型磷脂酶A2包涵体重折叠的影响[J];生物化学与生物物理进展;2005年02期

7 陈江涛;王光祥;吉艳红;尚佑军;刘艳红;刘湘涛;;猪膜联蛋白A2多克隆抗体的制备、亲和纯化与鉴定[J];畜牧兽医学报;2010年11期

8 杨春雨,陈元,晏辉钧,方丹云,薛耀华,江丽芳;登革病毒Ⅱ型NS1基因在小鼠体内诱导的DNA免疫[J];中华实验和临床病毒学杂志;2005年01期

9 刘成;司振书;李玉保;;膜联蛋白A2参与流感病毒感染的研究进展[J];黑龙江畜牧兽医;2020年09期

10 许金廉,刘志民,曲莉,贾宁阳;长时间失血性休克大鼠肝胞液糖皮质激素受体与磷酯酶A2变化的研究[J];中国应用生理学杂志;1996年03期


相关硕士学位论文 前9条

1 伊扬磊;杀灭铜绿微囊藻细菌A2的分离、鉴定及其溶藻特性研究[D];西北农林科技大学;2013年

2 俞海洋;黑胸大蠊浓核病毒含磷脂酶A2功能区在大肠杆菌中的表达及活性研究[D];武汉大学;2005年

3 刘爱霞;紫红链霉菌(Streptomyces violaceoruber)磷脂酶A2基因在巴斯德毕赤酵母中的表达与应用研究[D];江南大学;2015年

4 刘彬;粘质沙雷氏菌磷脂酶A2基因的克隆表达及应用[D];长春理工大学;2014年

5 邓雪锋;细小病毒B19独特区磷脂酶A2功能初步研究[D];华中师范大学;2009年

6 赵丹;细小病毒B19-VP1U保守区外氨基酸对磷脂酶A2活性的影响[D];华中师范大学;2012年

7 菅新艳;人细小病毒B19结构蛋白VP1独特区多克隆抗体的制备及其磷脂酶A2活性的研究[D];华中师范大学;2010年

8 冯志鸿;Ca~(2+)结合区域关键氨基酸对人细小病毒B19磷脂酶A2活性影响的研究[D];华中师范大学;2010年

9 王罡琦;硝基化油酸(OA-NO2)调节脂蛋白相关磷脂酶A2(Lp-PLA2)的表达及分子机制研究[D];吉林大学;2014年



本文编号:2868105

资料下载
论文发表

本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/jichuyixue/2868105.html


Copyright(c)文论论文网All Rights Reserved | 网站地图 |

版权申明:资料由用户7a34d***提供,本站仅收录摘要或目录,作者需要删除请E-mail邮箱bigeng88@qq.com