人参皂苷Rd对新生鼠PVL模型少突胶质细胞标记物O4、O1表达的影响
发布时间：2021-01-11 16:06
目的:建立3日龄新生SD大鼠脑室周围白质软化（Periventricular leukomalacia,PVL）模型,动态检测脑室周围白质区晚期少突胶质细胞前体细胞的标记物O4和未成熟少突胶质细胞的标记物O1的表达趋势,初步探讨人参皂苷Rd对新生鼠PVL模型脑室周围白质区O4、O1表达的影响。方法:分离并结扎3日龄SD大鼠的左颈总动脉,再吸入92%N2+8%O2低氧混合气体进行缺氧1h来制作新生鼠PVL模型,将新生鼠随机分成3组,即PVL模型组、人参皂苷Rd实验组和假手术组。从制模术后3天、7天、14天的新生鼠中各随机选取8只并将其处死取脑组织,进行HE染色以观察病理变化,再通过免疫组化方法动态测定3组制模后新生鼠脑室周围白质区O4、O1的表达情况。结果:1.三组新生SD大鼠脑组织HE染色的病理改变PVL模型组和人参皂苷Rd实验组脑组织的病理变化主要发生在脑室周围的白质区、胼胝体及海马区,脑皮质损害轻微。假手术组各时间点脑组织病理结构无异常改变。PVL模型组在制模后第3天脑白质结构疏松,细胞水肿、坏死和排列紊乱,小胶质细胞增生。制模后第7天脑...
【文章来源】：遵义医科大学贵州省
【文章页数】：46 页
【学位级别】：硕士
【部分图文】：
少突胶质细胞不同发育阶段生物标记物现PVL动物模型尚无公认标准，目前进行的动物实验有缺血低氧模型、缺血低
图 3 鸡蛋饲养母鼠 PVL 模型制备方法合氯醛用腹腔注射的方式对 3 组新生鼠进行麻仰卧位固定在无菌操作台上无法动弹，暴露足颈部皮肤进行消毒处理，沿胸骨柄至下颌骨方向，沿着大鼠左侧胸锁乳突肌内缘逐层进行钝性 4-0 医用无菌丝线分别来结扎左颈总动脉的远断，缝合组织并再次进行消毒，观察切口有无 5 min 以内，手术暴露的时间越长，手术后新所有术后 SD 大鼠进行标记，然后放置回母鼠处O2+92%N2 低氧混合气体的自制小型缺氧仓，行左颈总动脉分离，不行结扎和缺氧步骤。最l）的剂量对实验组的新生鼠进行腹腔注射，同
医科大学硕士学位论文 结果 新生鼠 PVL 造模后症状观察1 术后新生鼠缺氧过程观察建立模型前三组新生鼠的活动均正常，GSRd 实验组和 PVL 模型组术后新 15-30min 左右开始出现呼吸频率增快、呼吸动度增大、四处窜动，在缺氧约时术后新生鼠出现活动减少、皮肤发绀发紫、肢体抖动、点头样抽搐（见时间共维持约 1h，所有术后新生鼠在缺氧过程中无死亡情况，假手术组干预，故无皮肤发绀等上述缺氧表现。本实验整个操作过程 PVL 模型组有死亡，GSRd 实验组有 10 只出现死亡，而假手术组并未出现死亡情况。
【参考文献】：
期刊论文
[1]人参皂苷Rd注射液联合法舒地尔对缺血性脑卒中患者内皮素-1与降钙素基因相关肽水平的影响[J]. 熊书君,瞿秋红,高春华. 中国临床药理学杂志. 2018(22)
[2]Pathophysiology of periventricular leukomalacia: what we learned from animal models[J]. Nahla Zaghloul,Mohamed Ahmed. Neural Regeneration Research. 2017(11)
[3]缺氧缺血性脑损伤后谷氨酸水平变化对少突胶质细胞的损伤[J]. 周慎,李凡. 微循环学杂志. 2017(01)
[4]人参皂苷Rd的理化性质及降解研究[J]. 刘知源,贾雪巍,邱智东,刘达. 吉林农业大学学报. 2017(01)
[5]宫内感染与早产儿脑损伤的研究进展[J]. 吕勤. 现代实用医学. 2016(11)
[6]早产儿脑室周围白质软化的影像学改变及其对预后的影响[J]. 林法涛,周卓妍,宋燕燕. 国际儿科学杂志. 2016 (01)
[7]围产期早产儿脑病危险因素研究进展[J]. 谭竹,王莉. 中华临床医师杂志(电子版). 2016(02)
[8]SD大鼠的繁殖性能及子代生长发育情况[J]. 洪雅青,顾刘金,黄雅丽,金锋,陈琼姜,陶核,张芳芳,朱勇,徐娟,黎关龙,陈炜. 职业与健康. 2014(22)
[9]人参皂苷Rd的抗癌机制研究进展[J]. 朱春燕,张旭,叶丽红. 中医药学报. 2014(02)
[10]缺氧缺血未成熟新生鼠脑少突胶质细胞髓鞘化障碍致脑白质损伤的作用[J]. 许全梅,熊曼,胡勇,裘刚,杨毅. 实用儿科临床杂志. 2012(22)
硕士论文
[1]早产儿及脑损伤相关因素分析[D]. 余在伟.安徽医科大学 2018
[2]人参皂苷Rd预处理通过增加冠脉流量减轻大鼠离体心脏缺血再灌注损伤[D]. 宋纯.兰州大学 2012
本文编号：2971076
【文章来源】：遵义医科大学贵州省
【文章页数】：46 页
【学位级别】：硕士
【部分图文】：
少突胶质细胞不同发育阶段生物标记物现PVL动物模型尚无公认标准，目前进行的动物实验有缺血低氧模型、缺血低
图 3 鸡蛋饲养母鼠 PVL 模型制备方法合氯醛用腹腔注射的方式对 3 组新生鼠进行麻仰卧位固定在无菌操作台上无法动弹，暴露足颈部皮肤进行消毒处理，沿胸骨柄至下颌骨方向，沿着大鼠左侧胸锁乳突肌内缘逐层进行钝性 4-0 医用无菌丝线分别来结扎左颈总动脉的远断，缝合组织并再次进行消毒，观察切口有无 5 min 以内，手术暴露的时间越长，手术后新所有术后 SD 大鼠进行标记，然后放置回母鼠处O2+92%N2 低氧混合气体的自制小型缺氧仓，行左颈总动脉分离，不行结扎和缺氧步骤。最l）的剂量对实验组的新生鼠进行腹腔注射，同
医科大学硕士学位论文 结果 新生鼠 PVL 造模后症状观察1 术后新生鼠缺氧过程观察建立模型前三组新生鼠的活动均正常，GSRd 实验组和 PVL 模型组术后新 15-30min 左右开始出现呼吸频率增快、呼吸动度增大、四处窜动，在缺氧约时术后新生鼠出现活动减少、皮肤发绀发紫、肢体抖动、点头样抽搐（见时间共维持约 1h，所有术后新生鼠在缺氧过程中无死亡情况，假手术组干预，故无皮肤发绀等上述缺氧表现。本实验整个操作过程 PVL 模型组有死亡，GSRd 实验组有 10 只出现死亡，而假手术组并未出现死亡情况。
【参考文献】：
期刊论文
[1]人参皂苷Rd注射液联合法舒地尔对缺血性脑卒中患者内皮素-1与降钙素基因相关肽水平的影响[J]. 熊书君,瞿秋红,高春华. 中国临床药理学杂志. 2018(22)
[2]Pathophysiology of periventricular leukomalacia: what we learned from animal models[J]. Nahla Zaghloul,Mohamed Ahmed. Neural Regeneration Research. 2017(11)
[3]缺氧缺血性脑损伤后谷氨酸水平变化对少突胶质细胞的损伤[J]. 周慎,李凡. 微循环学杂志. 2017(01)
[4]人参皂苷Rd的理化性质及降解研究[J]. 刘知源,贾雪巍,邱智东,刘达. 吉林农业大学学报. 2017(01)
[5]宫内感染与早产儿脑损伤的研究进展[J]. 吕勤. 现代实用医学. 2016(11)
[6]早产儿脑室周围白质软化的影像学改变及其对预后的影响[J]. 林法涛,周卓妍,宋燕燕. 国际儿科学杂志. 2016 (01)
[7]围产期早产儿脑病危险因素研究进展[J]. 谭竹,王莉. 中华临床医师杂志(电子版). 2016(02)
[8]SD大鼠的繁殖性能及子代生长发育情况[J]. 洪雅青,顾刘金,黄雅丽,金锋,陈琼姜,陶核,张芳芳,朱勇,徐娟,黎关龙,陈炜. 职业与健康. 2014(22)
[9]人参皂苷Rd的抗癌机制研究进展[J]. 朱春燕,张旭,叶丽红. 中医药学报. 2014(02)
[10]缺氧缺血未成熟新生鼠脑少突胶质细胞髓鞘化障碍致脑白质损伤的作用[J]. 许全梅,熊曼,胡勇,裘刚,杨毅. 实用儿科临床杂志. 2012(22)
硕士论文
[1]早产儿及脑损伤相关因素分析[D]. 余在伟.安徽医科大学 2018
[2]人参皂苷Rd预处理通过增加冠脉流量减轻大鼠离体心脏缺血再灌注损伤[D]. 宋纯.兰州大学 2012
本文编号：2971076
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