门静脉注射小鼠Hepcidin基因特异性RNAi腺病毒的方法研究
本文选题:Hepcidin 切入点:腺病毒科 出处:《浙江大学》2013年硕士论文
【摘要】:研究目的: 构建含Hepcidin基因重组腺病毒干扰真核表达载体Pad-hepc-shRNA-GFP,并验证其门静脉注射途径的干预效果。 实验方法: 1) Pad-hepc-shRNA-EGFP的构建:根据Hepcidin基因在genbank的序列,设计相应的siRNA,通过设计构架oligo,合成shRNA序列。设计并合成1对互补的含shRNA序列的寡聚单链DNA,按一定的体系退火形成DNA双链,然后用载体构建试剂盒BLOCK-iT U6RNAi Entry Vector Kit (invitrogen, Catalog nos. K4944-00)进行重组克隆,将退火而成的双链shRNA oligo插入shRNA表达载体pENTR/U6vector中,按照一定的连接体系,构建shRNA表达质粒,并转化至感受态细胞DH5a孵育,小量质粒抽提并且测序。设计引物、运用特定的酶切体系,对于构建的pENTR/U6载体进行改造,连入CMV启动子和荧光蛋白GFP,然后使用Invitrogen公司的LR重组系统将改造好的载体和pAd/BLOCK-IT-DEST重组,转化至感受态细胞DH5α孵育,筛选并测序,验证Pad-hpec-shRNA-EGFP(?)建成功。用构建的腺病毒载体Pad-hepc-shRNA-EGFP经Pac I消化后转染293A细胞,包装病毒,收集初级病毒液,二次扩增,收集病毒原液并测定滴度,备用。 2)经小鼠门静脉注射干扰病毒:对正常balb/c小鼠麻醉后,行门静脉注射载体病毒量2.7109ifu/ml/500ul,正常喂养10d后,取肝脏标本,通过半定量PT-PCR法检测小鼠肝脏Hepcidin基因的表达情况。对照组取正常小鼠肝脏标本检测Hepcidin基因的表达情况。 研究结果: 经过基因测序证明,腺病毒重组载体Pad-hepc-shRNA-EGFP中包含的基因片段与目的基因一致,成功构建了含Hepcidin基因重组腺病毒干扰真核表达载体,经过包装、扩增,并获得了滴度为2.7109ifu/ml腺病毒液。病毒门静脉注射后,实验组小鼠肝脏Hepcidin mRNA表达为1.30±0.53,明显低于对照组(6.39±1.00),充分显示出了门静脉注射此载体能够对Hepcidin基因的有效的抑制。 结论: 门静脉注射Hepcidin基因特异性重组腺病毒干扰载体Pad-hepc-shRNA-EGFP能够有效抑制小鼠Hepcidin基因的表达。
[Abstract]:Objectives of the study:The recombinant adenovirus interference eukaryotic expression vector Pad-hepc-shRNA-GFPFP containing Hepcidin gene was constructed and its effect on portal vein injection was verified.Experimental methods:1) the construction of Pad-hepc-shRNA-EGFP: according to the sequence of Hepcidin gene in genbank, the corresponding siRNAs were designed, and the shRNA sequence was synthesized by the framework of oligo.A pair of complementary oligonucleotides containing shRNA sequences were designed and synthesized, and DNA double strands were synthesized by annealing in a certain system. Then the kit BLOCK-iT U6RNAi Entry Vector Kit was constructed by using vector to construct BLOCK-iT U6RNAi Entry Vector Kit invitrogen, Catalog nos.K4944-00) was cloned into the shRNA expression vector pENTR/U6vector by inserting the annealed double-stranded shRNA oligo. According to a certain ligation system, the shRNA expression plasmid was constructed. The shRNA expression plasmid was transformed into the receptive cell DH5a incubated, and a small number of plasmids were extracted and sequenced.Primer was designed, and the constructed pENTR/U6 vector was modified with specific enzyme digestion system. The recombinant vector was linked to CMV promoter and fluorescent protein GFP. then the transformed vector and pAd/BLOCK-IT-DEST were recombined by LR recombination system of Invitrogen Company, and then transformed to DH5 伪 cells.Pad-hpec-shRNA-EGFPN was screened and sequenced to verify Pad-hpec-shRNA-EGFP.The building was successful.The recombinant adenovirus vector Pad-hepc-shRNA-EGFP was digested by Pac I and transfected into 293A cells. The virus was packaged, the primary virus solution was collected, the virus was amplified twice, the titer of the virus was collected and the titer was measured.2) injecting interfering virus through portal vein of mice: after anaesthesia to normal balb/c mice, the volume of vector virus was 2.7109 ifuml / r / 500ul.After normal feeding for 10 days, the liver samples were taken and the expression of Hepcidin gene in the liver of mice was detected by semi-quantitative PT-PCR method.The expression of Hepcidin gene in normal mouse liver was detected in the control group.Results of the study:It was proved by gene sequencing that the recombinant adenovirus vector Pad-hepc-shRNA-EGFP contained the same gene fragment as the target gene. The recombinant adenovirus containing Hepcidin gene interference eukaryotic expression vector was successfully constructed. After packaging, amplification, and titer of 2.7109ifu/ml adenovirus solution was obtained.After portal vein injection, the expression of Hepcidin mRNA in liver of experimental group was 1.30 卤0.53, which was significantly lower than that of control group (6.39 卤1.00), which showed that portal vein injection of the vector could effectively inhibit the expression of Hepcidin gene.Conclusion:Portal vein injection of Hepcidin gene specific recombinant adenovirus interference vector Pad-hepc-shRNA-EGFP can effectively inhibit the expression of mouse Hepcidin gene.
【学位授予单位】:浙江大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2013
【分类号】:R459.7
【相似文献】
相关期刊论文 前10条
1 刘海防,谢青;RNA干扰抗艾滋病病毒感染研究进展[J];国外医学.流行病学.传染病学分册;2005年03期
2 邓娟,杨益良,付士红,王力华,金冬雁,梁国栋;RNAi抑制XJ-160病毒复制的研究[J];中华微生物学和免疫学杂志;2005年06期
3 蹇锐,程小星,安静,陈炜,王嘉丽,张俊磊,万颖杰,陈宗涛;应用载体介导的RNAi技术抑制Bcl-2的表达[J];第三军医大学学报;2004年04期
4 朱志成;张兴义;姚宪章;石东磊;王春光;;RNA干扰技术及其在器官移植方面的应用及前景[J];中国老年学杂志;2006年01期
5 刁文一;蒋建雄;熊兴华;张炎;彭昕琴;张志刚;;RNAi在植物功能基因组中的应用[J];现代生物医学进展;2006年02期
6 王翔;胡治平;卢伟;唐湘祁;张洁;李婷;曾六旺;;TGFβ1基因RNAi慢病毒载体的构建与鉴定[J];重庆医科大学学报;2009年01期
7 钱倩;王晓通;谢玉波;李雷;肖强;;Cdx2基因RNA干扰慢病毒载体的构建与鉴定[J];世界华人消化杂志;2010年03期
8 沈上杭;王占祥;陈玉英;毛贺辉;;HIF-1α基因RNAi慢病毒载体的构建与鉴定[J];中国实用医药;2010年04期
9 王彪;刘照亮;林菊丽;单秀英;王美水;张声;鲁开化;;Ang2、Tie2基因的RNA干扰及其在体外抑制血管生成的作用[J];中国生物工程杂志;2010年04期
10 郭丹,傅更锋,樊燕蓉,薛龙增;RNA干涉技术在哺乳类细胞和人类疾病基因功能研究中的应用[J];生物医学工程学杂志;2004年01期
相关会议论文 前10条
1 刘桂林;王志宇;张珊珊;;RNAi技术及其在抗禽流感病毒感染中的应用[A];全国动物生理生化第十一次学术交流会论文摘要汇编[C];2010年
2 宋少康;董雅娟;牛召珊;朱孟芝;柏学进;;RNAi技术及其研究应用进展[A];中国畜牧兽医学会动物繁殖学分会第十五届学术研讨会论文集(上册)[C];2010年
3 左洪亮;李海怡;高璐;钟国华;;RNAi作用机制及其在害虫防治领域的应用前景[A];公共植保与绿色防控[C];2010年
4 苏玉虹;张俊峰;;在哺乳动物细胞内诱导持续性的RNAi研究策略[A];中国畜牧兽医学会养猪学分会第五次全国会员代表大会暨养猪业创新发展论坛论文集[C];2010年
5 孙朕;樊宝良;;有效避免干扰素反应的RNA聚合酶Ⅱ启动子驱动表达长dsRNA的RNAi载体的设计、构建及初步验证[A];中国畜牧兽医学会动物繁殖学分会第十五届学术研讨会论文集(上册)[C];2010年
6 吕小青;杨慧;李秋艳;李宁;;利用RNAi生产抗猪繁殖与呼吸综合征病毒转基因猪的研究[A];中国畜牧兽医学会动物繁殖学分会第十五届学术研讨会论文集(上册)[C];2010年
7 于丹;金春顺;杨景朴;刘岩;文连姬;赵胤;;新型RNAi载体的构建及其对喉癌干细胞增殖抑制及诱导凋亡的研究[A];吉林省医学会第九次耳鼻咽喉—头颈外科学术会议论文汇编[C];2011年
8 王琼;彭振辉;王万卷;耿松梅;牛新武;王梅;刘平;;RNAi对人类皮肤成纤维细胞COL1A1及COL3A1表达的影响[A];2010全国中西医结合皮肤性病学术会议论文汇编[C];2010年
9 王静;龚萍;马骁;龚炎长;彭秀丽;俸艳萍;李世军;;逆转录病毒介导的鸡Foxl2基因RNAi载体的构建[A];安全优质的家禽生产——第十五次全国家禽学术讨论会论文集[C];2011年
10 郭帅;许丹;;草鱼呼肠孤病毒(GCRV)体外抑制RNA干扰途径(RNAi)[A];渔业科技创新与发展方式转变——2011年中国水产学会学术年会论文摘要集[C];2011年
相关重要报纸文章 前10条
1 编译 李勇;RNAi药物研究或再升温[N];中国医药报;2011年
2 医学博士 科学松鼠会成员 致桦;美丽的干扰[N];中国经营报;2010年
3 徐铮奎;RNA干扰剂即将浮出市面[N];医药经济报;2004年
4 吕兴晨;创新催生产业 科技改变民生[N];人民政协报;2011年
5 蒋立明;建立研发基地 开发高新技术[N];绍兴日报;2009年
6 余志平;打开功能基因组学与未来治疗学的大门[N];中国医药报;2004年
7 李彬;今年技术发展呈八大趋势[N];科技日报;2005年
8 黄爱萍 徐积明;寻找“超日赶美”的突破口[N];苏州日报;2009年
9 记者 吴伟农;世界十大科技突破[N];新华每日电讯;2001年
10 本报记者 韦绍锋 邢少文 康义文 康义瑶(实习) 驻地记者 胡勇;生物医药“海归”之惑[N];医药经济报;2004年
相关博士学位论文 前10条
1 陈正岗;沉默Id-1基因对腺样囊性癌生物学行为影响的实验研究[D];山东大学;2010年
2 张明芳;RNAi沉默Notch1、Notch2对人胶质瘤U251细胞增殖的影响及其机制[D];福建医科大学;2010年
3 唐茂盛;MNU灌肠诱导大鼠结肠癌模型的构建及RNAi干扰CD133基因对结肠癌的影响研究[D];第二军医大学;2010年
4 连海峰;RNAi抑制NRP2表达对胃癌细胞SGC7901生长及侵袭转移的实验研究[D];重庆医科大学;2010年
5 杨德君;应用RNAi技术对大肠癌ECGF1基因生物功能的研究[D];吉林大学;2006年
6 马旭;RNAi抑制S100A4基因表达及其对骨肉瘤细胞侵袭、转移能力的影响[D];中国医科大学;2009年
7 李长锋;靶向Survivin的RNAi联合放射治疗肺腺癌的研究[D];吉林大学;2010年
8 李振华;LIMK1表达对人成骨肉瘤细胞生物学活性影响的体外研究[D];吉林大学;2008年
9 田保明;基于RNAi技术的BnFAE1基因沉默及对甘蓝型油菜芥酸合成的影响[D];华中农业大学;2010年
10 王凯;腺病毒载体介导靶向bFGF的RNAi对体外培养前列腺间质细胞bFGF表达及其增殖和凋亡的影响[D];中国医科大学;2009年
相关硕士学位论文 前10条
1 赵留芳;RNAi介导survivin抑制鼻咽癌CNE-2裸鼠移植瘤的实验研究[D];昆明医学院;2011年
2 刘霞;腺病毒载体介导的RNAi抑制肺间质纤维化大鼠TGF-β1基因表达的研究[D];郑州大学;2010年
3 马s,
本文编号:1719426
本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/jjyx/1719426.html