CYP19A1及雌激素对阿尔茨海默病作用的研究
本文关键词:CYP19A1及雌激素对阿尔茨海默病作用的研究
【摘要】:目的:探究CYP19A1基因的过表达及雌激素对阿尔茨海默病细胞模型的影响,为阐述CYP19A1、雌激素与阿尔茨海默病的内在关系提供实验依据。方法:1.取胎龄为18-19d的C57BL/6J胎鼠,分离海马组织。采用胰酶消化法进行原代培养,倒置相差显微镜下观察细胞的生长状态,采用微管蛋白相关标志物2(MAP2)及Hoechst 33258免疫荧光染色鉴定海马神经元纯度。2.用Aβ25-35处理海马神经元建立阿尔茨海默病细胞模型。设不同浓度梯度的Aβ25-35作用于海马神经元48h,用CCK-8法检测细胞活性,确定Aβ25-35最佳AD模型造模浓度。3.用不同浓度的17β-雌二醇作用加入到Aβ25-35处理的阿尔茨海默病细胞模型中,48h后用CCK-8法检测细胞活性,以及用Hoechst 33258染核检测细胞凋亡情况。4.利用模板质粒H4134,采用聚合酶链反应(PCR)扩增出CYP19A1基因片段;用限制性内切酶Spe I-HF和XbaI酶酶切pLenti-CMV-EGFP-P2A-MCS-3FLAG(H138)表达载体;使用无缝克隆试剂盒将CYP19A1基因片段和线性化载体连接;运用PCR方法鉴定阳性克隆的pLenti-CMV-EGFP-P2A-CYP19A1载体。使用Obio转染试剂进行慢病毒包装,运用定量聚合酶链反应(qPCR)法行滴度检测;并用重组慢病毒转染人胚肾细胞(293T),观察GFP表达并用Western Blot检测目的质粒的表达情况。从而构建CYP19A1过表达慢病毒。5.CYP19A1过表达慢病毒转染海马神经元,72h后用Aβ25-35处理造模。48h后,用CCK-8法检测细胞活性,用Hoechst 33258染核检测细胞凋亡情况。成果:1.本课题所采用方法培养的海马神经元生长状态良好,且能稳定存活至3w;神经元的纯度可达95%。2.稳定建立了海马神经元阿尔茨海默病细胞模型,确立Aβ25-35的造模浓度为20uM。3.10-4 mol/L、10-5mol/L浓度17β-雌二醇可对抗Aβ25-35处理的海马神经元阿尔茨海默病细胞模型的活性损伤和细胞凋亡,对海马神经元有保护作用。4.成功获得了阳性克隆的pLenti-CMV-EGFP-P2A-CYP19A1载体。并成功转染了293T细胞,目的质粒在细胞中成功表达。成功构建了CYP19A1过表达慢病毒。5. CYP19A1过表达慢病毒能在海马神经元中成功转染,海马神经元经过CYP19A1过表达慢病毒转染后能对抗Aβ25-35处理的海马神经元阿尔茨海默病细胞模型的活性损伤和细胞凋亡。结论:在阿尔茨海默病细胞模型中CYP19A1过表达及雌激素可对抗由Aβ25-35引起的活性损伤和细胞凋亡,即CYP19A1过表达及雌激素对阿尔茨海默病具有保护作用。
【关键词】:阿尔茨海默病 雌激素 CYP19A1
【学位授予单位】:广州中医药大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2016
【分类号】:R749.16
【目录】:
- 摘要3-5
- Abstract5-10
- 引言10-12
- 第一章 文献研究12-17
- 1.1 阿尔茨海默病12-13
- 1.1.1 概述12
- 1.1.2 流行病学12
- 1.1.3 病理特征及发病机制12-13
- 1.1.4 遗传因素13
- 1.2 雌激素与阿尔茨海默病13-15
- 1.2.1 阿尔茨海默病患病率的性别差异13-14
- 1.2.2 雌激素对阿尔茨海默病的作用14
- 1.2.3 雌激素对阿尔茨海默病的作用机制14-15
- 1.3 CYP19A1与阿尔茨海默病15-17
- 1.3.0 CYP的简介15
- 1.3.1 CYP19A1的简介15
- 1.3.2 CYP19A1与阿尔茨海默病的研究进展15-17
- 第二章 海马神经元的培养与鉴定17-23
- 2.1 实验材料17-18
- 2.1.1 实验动物17
- 2.1.2 主要耗材17
- 2.1.3 主要实验试剂17
- 2.1.4 主要仪器设备17-18
- 2.1.5 主要溶液配制18
- 2.2 实验方法18-20
- 2.2.1 原代海马神经元的培养18-19
- 2.2.2 免疫荧光鉴定海马神经元19-20
- 2.3 实验结果20-21
- 2.3.1 原代海马神经元20-21
- 2.3.2 海马神经元免疫荧光鉴定21
- 2.4 讨论21-23
- 第三章 雌激素对Aβ_(25-35)诱导的阿尔茨海默病细胞模型的作用23-30
- 3.1 实验材料23-24
- 3.1.1 实验动物23
- 3.1.2 主要耗材23
- 3.1.3 主要实验试剂23
- 3.1.4 主要仪器设备23
- 3.1.5 主要溶液配制23-24
- 3.2 实验方法24-25
- 3.2.1 原代海马神经元的培养24
- 3.2.2 药物处理24
- 3.2.3 细胞活力检测24-25
- 3.2.4 海马神经元凋亡的检测25
- 3.3 统计学分析25-26
- 3.4 实验结果26-29
- 3.4.1 Aβ_(25-35)最佳造模浓度26
- 3.4.2 DMSO溶媒稀释比的选择26-27
- 3.4.3 17β-雌二醇对Aβ_(25-35)损伤的阿尔茨海默病细胞模型的作用27-29
- 3.5 讨论29-30
- 第四章 CYP19A1过表达慢病毒的构建及鉴定30-45
- 4.1 实验材料30-31
- 4.1.1 质粒、菌株与细胞30
- 4.1.2 主要耗材30
- 4.1.3 主要酶与试剂30
- 4.1.4 主要仪器设备30-31
- 4.1.5 1主要溶液配制31
- 4.2 实验方法31-41
- 4.2.1 CYP19A1荧光表达载体的构建31-36
- 4.2.2 过表达CYP19A1的慢病毒包装及纯化36-41
- 4.3 实验结果41-44
- 4.3.1 CYP19A1序列的PCR扩增41-42
- 4.3.2 CYP19A1载体酶切测序结果42-43
- 4.3.3 慢病毒滴度的测定43
- 4.3.4 目的质粒的表达情况的检测43-44
- 4.4 讨论44-45
- 第五章 CYP19A1过表达对阿尔茨海默病细胞模型的作用研究45-52
- 5.1 实验材料45
- 5.1.1 实验动物45
- 5.1.2 主要耗材45
- 5.1.3 主要实验试剂45
- 5.1.4 主要仪器设备45
- 5.1.5 主要溶液配制45
- 5.2 实验方法45-47
- 5.2.1 慢病毒感染海马神经元的最适感染复数的确定45-46
- 5.2.2 CCK-8检测慢病毒转染对AD细胞模型活性影响46
- 5.2.3 Hoechst 33258检测慢病毒转染对AD细胞模型凋亡的影响46-47
- 5.3 统计学分析47
- 5.4 实验结果47-50
- 5.4.1 最适感染复数的确定47-49
- 5.4.2 CYP19A1过表达对Aβ_(25-35)引起的海马神经元活性损伤的影响49
- 5.4.3 CYP19A1过表达对Aβ_(25-35)引起的海马神经元凋亡的影响49-50
- 5.5 讨论50-52
- 结语52-53
- 参考文献53-57
- 附录57-58
- 在校期间发表论文情况58-59
- 致谢59-60
- 统计学审核证明60
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