颗粒蛋白酶前体对P.g-LPS诱导的巨噬细胞M1向极化的影响及机制研究
发布时间:2021-06-09 17:20
背景和目的牙周炎是发生在牙周组织的感染性疾病,菌斑微生物为牙周炎发生的始动因素,宿主免疫反应为牙周组织破坏的主要因素。巨噬细胞可以分化为促炎状态的M1型和抗炎状态的M2型,当巨噬细胞被募集到牙周组织中时,其分化状态受环境刺激的影响,在细菌脂多糖(lipopolysaccharide,LPS)和/或干扰素-γ(interferon,IFN-γ)诱导下,巨噬细胞分化为促炎状态的M1型,促进宿主炎性反应以抵抗细菌和病毒,并分泌促炎因子,最终导致牙周组织破坏;相反,IL-4和/或IL-13诱导巨噬细胞分化为抗炎状态的M2型,发挥抗炎和促进组织愈合的功能,并分泌抗炎因子,促进组织的修复愈合。多项研究证实,颗粒蛋白酶前体(progranulin,PGRN)为TNF受体竞争性拮抗剂,在免疫调节和抗炎中发挥重要作用。我们先前研究证实发现牙周炎患者龈沟液中PGRN较正常龈沟液含量升高;体外实验证实PGRN促进牙周膜干细胞的成骨分化;重组PGRN可减轻大鼠实验性牙周炎炎症反应及牙槽骨吸收,促进牙周骨缺损的再生。但其在巨噬细胞极化过程中的调控作用及其机制尚不清楚。本研究旨在探讨PGRN在巨噬细胞M1向极化中...
【文章来源】:山东大学山东省 211工程院校 985工程院校 教育部直属院校
【文章页数】:61 页
【学位级别】:硕士
【部分图文】:
图1-1.RAW264.7巨噻细胞培养
?山东大学硕士学位论文???qRT-PCR技术检测RAW264.7细胞经过含或不含有100?ng/ml?P.g-LPS培养??基诱导24?h后TNF-a和iNOS?mRNA的表达。与对照组相比,100?ng/ml?P.g-??LPS组TNF-a和iNOSmRNA表达显著增高(图1-2C)。??(3)?Ml型巨噬细胞高表达TNF-a和iNOS蛋白??Western?Blot技术检测RAW264.7细胞经过含或不含有100?ng/ml?P.g-LPS??培养基诱导24?h后TNF-a和iNOS蛋白的表达。与对照组相比,100?ng/ml?P.g-??LPS组TNF-a和iNOS蛋白的表达显著增高(图1-2?D,E)。??(4)?Ml型E噬细胞TNF-a分泌增多??ELISA技术检测RAW264.7细胞经过含或不含有100?ng/ml?P.g-LPS培养基??诱导24?h后TNF-ct的分泌。与对照组相比,100?ng/ml?P.g-LPS组TNF-a的分泌??显著增高(图1-2?F)。??A?B?C?q-PCR??(A??<U??〇?1001?—|?a,?6〇'?■?NC?…??〇?80.?"5?2?5〇?LPS(100?ng/ml)??A?1?^?^?^?3〇l??A?M?4〇-??…’一?:—Si?::??i?〇UP——.^?i°?^__??NC?LPS(100?ng/ml)?★?^?|?y??/?^?#??D?E?^?F??一?kDa?S?WB???EUSA??flv?28?|?〇)??§]??——?m?nc?k?〇61?—??TNF
胞因子的蛋白水平;酶联免疫吸附技术检测巨噬细胞TNF-a分泌水平变化。具??体操作步骤同第一部分。??结果??1、rPGRN逆转P.g-LPS升高的Ml表型分子表达或M1/M2比例??(1)流式细胞术检测RAW264.7细胞Ml和M2表面标记物CD86和CD206的??表达,与对照组相比,100?ng/ml?P.g-LPS组M1/M2表面标iiZ物CD86/CD206比??值显著开高,在此基础h加入5,?10,?20ng/mlrPGRNC,CD86/CD206的比值??显著降低。(图2-1-1)??A〇1?F66?A02?A03?AD4??,Gate?FI???C,at*?Pi?-??Oate?Pi?*??->?te?Fl??^ ̄n?'PH ̄ ̄ ̄i?二?1?8T ̄1??确,-?i?4?^\] ̄'???*i?r?Li?-?U?i?I-1?U-?I?:i?lR?-?i?-??U?j?L=j??5?n—?w<a-iTn^?f??—,-i?丨?_?H?i— ̄n_?i_?”《r,》、_i?气?riW-W^wnw-—-nO'iAw'??^?J?J?^?^?^?^??A?(?A???*P-f?*??fC?*??NC?LPS?(100?ng/ml)?LPS+rPGRN?(5?ng/ml)??A〇5?A06?BO,?B02??Oal*?P1?"_:?*!??P*?"??Oals?P1?*??'?n??Pi??ir?——n?'p7"!一q?=「—i)「—j ̄"1??:5|?-?-?4?4?A??、?j?"?lf?I?a^i???^??
本文编号:3220998
【文章来源】:山东大学山东省 211工程院校 985工程院校 教育部直属院校
【文章页数】:61 页
【学位级别】:硕士
【部分图文】:
图1-1.RAW264.7巨噻细胞培养
?山东大学硕士学位论文???qRT-PCR技术检测RAW264.7细胞经过含或不含有100?ng/ml?P.g-LPS培养??基诱导24?h后TNF-a和iNOS?mRNA的表达。与对照组相比,100?ng/ml?P.g-??LPS组TNF-a和iNOSmRNA表达显著增高(图1-2C)。??(3)?Ml型巨噬细胞高表达TNF-a和iNOS蛋白??Western?Blot技术检测RAW264.7细胞经过含或不含有100?ng/ml?P.g-LPS??培养基诱导24?h后TNF-a和iNOS蛋白的表达。与对照组相比,100?ng/ml?P.g-??LPS组TNF-a和iNOS蛋白的表达显著增高(图1-2?D,E)。??(4)?Ml型E噬细胞TNF-a分泌增多??ELISA技术检测RAW264.7细胞经过含或不含有100?ng/ml?P.g-LPS培养基??诱导24?h后TNF-ct的分泌。与对照组相比,100?ng/ml?P.g-LPS组TNF-a的分泌??显著增高(图1-2?F)。??A?B?C?q-PCR??(A??<U??〇?1001?—|?a,?6〇'?■?NC?…??〇?80.?"5?2?5〇?LPS(100?ng/ml)??A?1?^?^?^?3〇l??A?M?4〇-??…’一?:—Si?::??i?〇UP——.^?i°?^__??NC?LPS(100?ng/ml)?★?^?|?y??/?^?#??D?E?^?F??一?kDa?S?WB???EUSA??flv?28?|?〇)??§]??——?m?nc?k?〇61?—??TNF
胞因子的蛋白水平;酶联免疫吸附技术检测巨噬细胞TNF-a分泌水平变化。具??体操作步骤同第一部分。??结果??1、rPGRN逆转P.g-LPS升高的Ml表型分子表达或M1/M2比例??(1)流式细胞术检测RAW264.7细胞Ml和M2表面标记物CD86和CD206的??表达,与对照组相比,100?ng/ml?P.g-LPS组M1/M2表面标iiZ物CD86/CD206比??值显著开高,在此基础h加入5,?10,?20ng/mlrPGRNC,CD86/CD206的比值??显著降低。(图2-1-1)??A〇1?F66?A02?A03?AD4??,Gate?FI???C,at*?Pi?-??Oate?Pi?*??->?te?Fl??^ ̄n?'PH ̄ ̄ ̄i?二?1?8T ̄1??确,-?i?4?^\] ̄'???*i?r?Li?-?U?i?I-1?U-?I?:i?lR?-?i?-??U?j?L=j??5?n—?w<a-iTn^?f??—,-i?丨?_?H?i— ̄n_?i_?”《r,》、_i?气?riW-W^wnw-—-nO'iAw'??^?J?J?^?^?^?^??A?(?A???*P-f?*??fC?*??NC?LPS?(100?ng/ml)?LPS+rPGRN?(5?ng/ml)??A〇5?A06?BO,?B02??Oal*?P1?"_:?*!??P*?"??Oals?P1?*??'?n??Pi??ir?——n?'p7"!一q?=「—i)「—j ̄"1??:5|?-?-?4?4?A??、?j?"?lf?I?a^i???^??
本文编号:3220998
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