当前位置:主页 > 医学论文 > 内分泌论文 >

同型半胱氨酸通过内质网应激致肝脂质蓄积作用

发布时间:2018-03-27 07:42

  本文选题:蛋氨酸 切入点:同型半胱氨酸 出处:《重庆医科大学》2015年硕士论文


【摘要】:背景:同型半胱氨酸(Homocysteine, Hcy)是蛋氨酸代谢途径的中间代谢产物,高同型半胱氨酸血症(Hyperhomocysteinemia, HHcy)与心血管疾病、大脑认知障碍、骨质疏松和非酒精性脂肪肝密切相关。HHcy是动脉粥样硬化的一个独立危险因素,近年来有关此方面的报道已有很多,但Hcy对非酒精性脂肪肝的影响及其分子机制尚不明确。本研究旨在采用蛋氨酸负荷的方法建立高同型半胱氨酸血症动物模型,结合原代肝细胞体外培养实验以探讨Hcy诱发肝脏脂质代谢紊乱的作用及分子机制。方法:选取4周龄健康雄性C57BL/6J小、鼠20只,随机分为对照组(Control)和蛋氨酸组(Methionine),每组各10只;在自由进食和饮水条件下,适应性喂养14天至6周龄时,对照组小鼠喂养标准饲料,蛋氨酸组小鼠喂养在标准饲料基础上添加2%蛋氨酸饲料,持续喂养16周,每周记录体重;对照组和蛋氨酸组动物在22周龄时处死,称取肝脏、附睾周围脂肪重量;收集血液进行生化检测,采用ELISA试剂盒测定血清Hcy水平;采用HE染色观察肝细胞形态、脂质沉积程度;Real-time PCR检测肝脏组织目标基因表达水平;Western Blotting检测肝脏GRP78/BIP、PERK、p-PERK、eIF2a、p-eIF2a和nSREBP1c蛋白表达水平;原代肝细胞用高浓度Hcy、Met、PBA和TM处理后进行油红O染色观察细胞内红染脂质数量;Real-time PCR检测肝细胞目标基因表达水平;Western blotting检测原代肝细胞GRP78/BIP、PERK、 p-PERK、eIF2α、p-eIF2α蛋白表达水平。结果:高蛋氨酸饮食对动物体重增长无显著影响,但肝脏/体重比值和附睾周围脂肪/体重比值均显著高于对照组;肝脏组织切片H.E染色结果显示蛋氨酸组小鼠肝组织出现显著的肝细胞脂肪变性,血清AST、TG水平显著增高,HDL水平显著降低;Real-time PCR结果显示蛋氨酸组小鼠肝脏组织CBS的mRNA表达水平较对照组明显下调;Western blotting结果提示高蛋氨酸饮食组小鼠肝脏GRP78/BIP、活化的p-PERK、活化的p-eIF2a和成熟形式的n-SREBP-1c表达水平增高;油红O染色结果表明原代肝细胞在同型半胱氨酸和衣霉素作用下发生明显脂质蓄积,PBA预处理后再加入同型半胱氨酸干预肝细胞脂质蓄积明显减轻;Real-time PCR结果显示原代肝细胞在同型半胱氨酸和衣霉素作用下GRP78、CHOP、FAS、ACClα和HMG-CoAr的mRNA表达水平较对照组明显上调,PBA预处理后再加入同型半胱氨酸干预肝细胞GRP78、FAS和ACC1α表达水平较同型半胱氨酸组明显下调,但CHOP和HMG-CoA r表达水平与同型半胱氨酸组无明显变化;Western blotting结果提示原代肝细胞在同型半胱氨酸和衣霉素作用下GRP78/BIP、p-PERK和p-eIF2a蛋白表达显著增强,PBA预处理后再加入同型半胱氨酸干预肝细胞上述内质网应激标志物蛋白表达明显减弱。结论:高蛋氨酸饮食可通过升高血液中同型半胱氨酸水平导致肝脏发生脂肪变性。同型半胱氨酸可通过诱导内质网应激激活脂质代谢相关基因的表达进而导致肝脏脂肪变性。同型半胱氨酸水平升高可通过调节肝细胞脂质代谢关键转录因子的活化,从而对肝脏脂质代谢造成影响。
[Abstract]:Background: homocysteine (Homocysteine, Hcy) is the intermediate metabolite methionine metabolism, hyperhomocysteinemia (Hyperhomocysteinemia, HHcy) and cardiovascular disease, cognitive impairment, osteoporosis and nonalcoholic fatty liver is closely related to.HHcy is an independent risk factor for atherosclerosis, in recent years the related reports there are many, but the effect of Hcy on nonalcoholic fatty liver and its molecular mechanism is still unclear. Methods: This study aims to establish the methionine load homocysteine in animal models, combined with in vitro culture of primary hepatocytes to investigate the effects and molecular mechanisms of lipid metabolism disorders induced by Hcy liver. Methods: select healthy 4 week old male C57BL/6J were small, 20 rats were randomly divided into control group (Control) and methionine group (Methionine), 10 rats in each group; and in freedom. Under the condition of drinking water, fed for 14 days to 6 weeks of age, the control group of mice fed the standard diet, mice were fed with 2% methionine methionine feed with standard diet, lasting for 16 weeks, body weight was recorded weekly; the control group and the methionine group animal were sacrificed at 22 weeks old, weighing around liver, epididymal fat weight collect blood; biochemical test, serum Hcy levels were measured by ELISA kit; HE staining was used to observe the morphology of hepatocytes, lipid deposition; detecting liver tissue Real-time expression level of PCR gene; Western Blotting detection PERK, liver GRP78/BIP, p-PERK, eIF2a, p-eIF2a and nSREBP1c protein expression; primary hepatocytes with high concentration Hcy, Met, PBA and TM after treatment were observed in cells stained with oil red O stained red lipid quantity; Real-time PCR detection of liver cell target gene expression level; Western blotting The primary detection of liver cell GRP78/BIP, PERK, p-PERK, eIF2 alpha, the expression level of p-eIF2 protein. Results: high methionine diet had no significant effect on animal growth, but the liver / body weight ratio and epididymis around fat / body weight ratio were significantly higher than control group; liver tissue slices H.E staining showed that methionine group of mice liver tissue there is a significant fatty degeneration of liver cells, serum AST, TG levels were significantly increased, HDL levels decreased significantly; Real-time PCR showed that the expression level of methionine group of mice liver tissue CBS mRNA significantly decreased compared with the control group; Western blotting showed a high methionine diet group mouse liver GRP78/BIP, activation of p-PERK, increased the expression level of p-eIF2a and the activation of the mature form of n-SREBP-1c; oil red O staining results showed that hepatocytes in homocysteine and tunicamycin markedly lipid accumulation PBA, pre treated with homocysteine significantly reduce lipid accumulation in liver cells; Real-time PCR showed GRP78, primary hepatocytes in homocysteine and tunicamycin under the action of CHOP, FAS, the expression level of ACCl alpha and HMG-CoAr mRNA increased significantly compared with the control group, PBA pretreatment and then adding the same type cysteine intervention of liver GRP78 cells, the expression level of FAS and ACC1 alpha is homocysteine group significantly decreased, but CHOP and HMG-CoA expression of R and homocysteine group had no obvious change; Western blotting showed GRP78/BIP hepatocytes in homocysteine and tunicamycin, the expression of p-PERK and p-eIF2a protein significantly enhanced after pretreatment with PBA added homocysteine above liver cell markers of ER stress protein expression significantly decreased. Conclusion: high methionine diet by elevated blood homocysteine Cystine levels lead to liver fatty degeneration. Homocysteine can then lead to hepatic steatosis by expression of genes related to lipid metabolism activation induced by endoplasmic reticulum stress. Elevated homocysteine levels can live through the regulation of lipid metabolism in liver cells of the key transcription factor, resulting in hepatic lipid metabolism.

【学位授予单位】:重庆医科大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2015
【分类号】:R589

【相似文献】

相关期刊论文 前10条

1 刘烈刚,姚平,章锡平,郝丽萍,杨雪锋,孙秀发;急性乙醇暴露对人原代肝细胞血红素氧化酶的影响[J];卫生研究;2004年05期

2 蔡大伟;侯艳宁;;原代肝细胞培养技术研究现状及其新药研发中的应用[J];解放军药学学报;2009年03期

3 张栗;冉云;王玲;陈晨;张遵真;;茶多酚对乙醇所致原代肝细胞损伤的保护作用研究[J];营养学报;2009年04期

4 谷康定,林群馨;原代肝细胞和传代细胞对微囊藻毒素-LR的敏感性[J];毒理学杂志;2005年03期

5 邓颖;陈杰;毕惠嫦;黄民;;原代肝细胞培养及其在药物代谢和毒理学研究中的应用进展[J];中国药理学通报;2006年08期

6 罗丹;刘华钢;;原代肝细胞的分离培养及其在药物研发中的应用[J];广西科学;2006年04期

7 余莹;张日华;朱自强;王林涛;;改良的小鼠原代肝细胞分离纯化方法[J];南京医科大学学报(自然科学版);2008年11期

8 谭洪玲;杨明会;王宇光;马增春;高月;;大鼠原代肝细胞培养方法的建立[J];中国应用生理学杂志;2006年04期

9 杭化莲;张磊;施晓雷;卞建民;丁义涛;;成人原代肝细胞的分离、培养及冻存[J];世界华人消化杂志;2011年19期

10 张兴元;宋向芹;张芳;欧琨;吕毅;;介绍一种简易高效的大鼠原代肝细胞分离方法[J];滨州医学院学报;2011年01期

相关会议论文 前10条

1 张丁丁;辛永宁;罗兵;姜曼;刘昊刚;宣世英;;一种易于推广的分离与培养小鼠原代肝细胞的方法[A];中华医学会第十六次全国病毒性肝炎及肝病学术会议论文汇编[C];2013年

2 王凤飚;李涛;杜智;杜斌;张金卷;;大量幼猪原代肝细胞的分离与培养[A];天津市生物医学工程学会2004年年会论文集[C];2005年

3 张丽芳;胡晓;;蛇床子素在大鼠原代肝细胞中代谢的研究[A];中国药学会应用药理专业委员会第三届学术会议、中国药理学会制药工业专业委员会第十三届学术会议暨2008生物医药学术论坛论文汇编[C];2008年

4 洪胜辉;张军;张蕊;王来娣;邵丹;张宜辉;董飚;段修军;龚道清;;鹅原代肝细胞的简易、高纯分离及培养[A];安全优质的家禽生产——第十五次全国家禽学术讨论会论文集[C];2011年

5 庄鹏;江元森;马会慧;李志刚;麦丽;杨林;姚集鲁;;长期培养的大鼠原代肝细胞功能和形态学观察[A];中华医学会第十二次全国病毒性肝炎及肝病学术会议论文汇编[C];2005年

6 张炜;陈文芳;齐浩;刘淼;屈颖;任兆玉;;紫外辐射对小鼠原代肝细胞细胞内钙离子浓度的影响[A];第六届全国光生物学学术研讨会论文集[C];2004年

7 王和平;管媛媛;佟雷;王建明;;肝复康滴丸对四氯化碳损伤大鼠原代肝细胞的保护作用[A];2008年中国药学会学术年会暨第八届中国药师周论文集[C];2008年

8 苏荣胜;颜成;朱华军;李海琴;唐兆新;;铜对肉鸡原代肝细胞活性及糖原含量的影响[A];中国畜牧兽医学会家畜内科学分会第七届代表大会暨学术研讨会论文集(下册)[C];2011年

9 张先杰;王莹;宋茂民;孙家邦;段钟平;陈煜;张晶;郑素军;;三明治构型大鼠原代肝细胞长期培养及生物学特性的研究[A];第三届全国重型肝病及人工肝血液净化学术年会论文集(上册)[C];2007年

10 杨桦;金福东;毛艳斌;张晓棠;林松;王颖;宋艾芝;刘桂芬;鲁润铭;;乳猪原代肝细胞的分离培养[A];第一届全国人工肝及血液净化学术年会暨全国人工肝及血液净化攻关协作组成立大会论文集[C];2004年

相关博士学位论文 前4条

1 周龙;丙泊酚对小鼠原代肝细胞胰岛素抵抗的影响[D];南方医科大学;2014年

2 许斌;鸭原代肝细胞对鸭乙型肝炎病毒易感性相关蛋白的研究[D];复旦大学;2006年

3 黄屹;乙型肝炎病毒在原代肝细胞共培养模型上的增强感染研究[D];北京协和医学院;2013年

4 刘振威;健康成人原代肝细胞体外实验测定异烟肼和利福平的肝代谢和肝毒性的研究[D];复旦大学;2004年

相关硕士学位论文 前10条

1 覃玉燕;成人原代肝细胞的分离、鉴定及其蛋白质合成与P450表达[D];湖南师范大学;2015年

2 陈亮;成人原代肝细胞培养及冻存复苏后细胞凋亡的Annexin V/PI检测及Fas表达[D];湖南师范大学;2015年

3 肖燕;乙酰甲喹及其代谢物的抑菌活性和对鸡原代肝细胞毒性的研究[D];南京农业大学;2014年

4 孙珍珍;同型半胱氨酸通过内质网应激致肝脂质蓄积作用[D];重庆医科大学;2015年

5 蒋丽娜;HCVcore蛋白诱发肝脂肪变机制的初步研究[D];第四军医大学;2011年

6 柏灵灵;炎症因子上调SREBP-1致小鼠原代肝细胞脂质异常聚集及损伤[D];重庆医科大学;2013年

7 张丽芳;蛇床子素在大鼠原代肝细胞中代谢的研究[D];南昌大学;2008年

8 薛梅;丙型肝炎病毒对树,

本文编号:1670636


资料下载
论文发表

本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/nfm/1670636.html


Copyright(c)文论论文网All Rights Reserved | 网站地图 |

版权申明:资料由用户df41b***提供,本站仅收录摘要或目录,作者需要删除请E-mail邮箱bigeng88@qq.com