当前位置:主页 > 医学论文 > 内分泌论文 >

Peroxiredoxin Ⅱ在STZ诱导的胰岛β-cell损伤中的保护作用研究

发布时间:2018-10-18 20:48
【摘要】:背景:Peroxiredoxin Ⅱ(Prx Ⅱ)是一种典型的含有2-Cys残基的过氧化物还原酶,在哺乳动物的细胞中广泛表达。Prx Ⅱ通过C端Cys的巯基与另1分子N端Cys的巯基发生氧化还原反应,形成二硫键,清除H2O2。2010年发表在《ANTIOXIDANTSREDOX SIGNALING》一篇论文的结果显示:real time-PCR检测到小鼠腹腔注射STZ后,胰腺组织中Prx Ⅱ的mRNA转录水平与对照组相比明显下降。STZ的分子中有氨基葡萄糖结构,能够特异性通过GLUT2进入胰岛β-cell,产生氧化应激导致胰岛β-cell损伤,诱导血糖升高。虽然Prx Ⅱ的作用研究十分广泛,但是Prx Ⅱ在STZ诱导的胰岛β-cell损伤过程中的作用尚不清楚,为了深入研究Prx Ⅱ在STZ诱导的胰岛β-cell损伤中的保护作用,本实验利用Prx Ⅱ基因敲除小鼠(Prx Ⅱ~(-/-))和Prx Ⅱ敲降的Min6小鼠胰岛素瘤细胞研究Prx Ⅱ在STZ诱导的胰岛β-cell损伤中的保护作用。方法:体内实验,利用单次200 mg/kg的STZ和连续5次50 mg/kg/次的STZ(1次/d),腹腔注射6-8周龄的Prx Ⅱ~(+/+)和Prx Ⅱ~(-/-)小鼠诱导胰岛β-cell损伤,采用HE染色观察小鼠胰岛组织形态学变化,血糖仪检测小鼠血糖水平和ELISA检测小鼠血清中胰岛素水平;腹腔注射2 g/kg的葡萄糖(IPGTT)和1 IU/kg的胰岛素(IPITT)分别检测小鼠血糖情况。体外实验,利用慢病毒侵染Min6细胞构建稳定遗传的空载体Min6细胞(Scramble)和Prx Ⅱ敲降的Min6细胞(shPrx Ⅱ)。首先,采用MTT实验检测STZ对Scramble和shPrx Ⅱ的细胞毒性作用;然后,采用流式细胞术和原位荧光染色检测5 mM STZ处理Scramble和shPrx Ⅱ不同时间下细胞周期、细胞凋亡和ROS水平情况;最后,采用Western blotting检测细胞周期、细胞凋亡以及相关信号转导蛋白的表达水平。结果:体内实验,小鼠经STZ腹腔注射后,(39)(5)(36)染色观察到两种小鼠的胰岛β-cell均发生细胞死亡,且Prx Ⅱ~(-/-)小鼠胰岛β-cell死亡的程度明显高于Prx Ⅱ~(+/+)小鼠;ELISA结果显示,Prx Ⅱ~(-/-)小鼠的胰岛素水平显著低于Prx Ⅱ~(+/+)小鼠;小鼠血糖检测发现两种小鼠的血糖显著升高,且在相同时间下Prx Ⅱ~(-/-)小鼠的血糖显著高于Prx Ⅱ~(+/+)小鼠,IPGTT也得到相似的结果。体外实验,成功构建能稳定遗传的Prx Ⅱ敲降的Min6小鼠胰岛素瘤细胞(shPrx Ⅱ);MTT实验结果显示,随着STZ处理浓度的增加、时间的延长,Scramble和shPrx Ⅱ细胞的存活率都下降,且在相同处理浓度下、时间下shPrx Ⅱ细胞的存活率显著低于Scramble细胞;流式细胞术检测发现随着5 mM STZ处理时间的延长,Scramble和shPrx Ⅱ细胞发生G2/M期阻滞、细胞凋亡和ROS水平升高,且在相同处理时间下shPrxⅡ细胞的G2/M期阻滞和凋亡显著高于Scramble细胞,在9 h,18 h时shPrx Ⅱ细胞的ROS水平显著高于Scramble细胞;原位荧光染色结果发现随着5 mM STZ处理时间的延长,Scramble和shPrx Ⅱ细胞的凋亡增加,且在相同处理时间下shPrx Ⅱ细胞的凋亡显著高于Scramble细胞;Western blotting结果发现细胞周期相关蛋白(P21、P16、CyclinB1)和促凋亡相关蛋白(Bad、Bax、Cleavaged-caspase3)的表达水平随着5 mM STZ处理时间的延长而增加,且在相同处理时间下shPrx Ⅱ细胞中相关蛋白的表达水平显著高于Scramble,而抗凋亡蛋白Bcl-2和Bcl-xl的表达水平随着5 mM STZ处理时间的延长而降低,且在相同处理时间下shPrx Ⅱ细胞中Bcl-2和Bcl-xl蛋白的表达水平显著低于Scramble细胞。P-AKT、P-GSK-3b、P53和P-P53的表达水平随着5 m M STZ处理Scramble和shPrx Ⅱ细胞时间的延长而减少,且在相同处理时间下shPrx Ⅱ相关蛋白磷酸化水平显著低于Scramble细胞。结论:以上结果说明,在胰岛β-cell受到STZ损伤时,Prx Ⅱ的缺失使胰岛β-cell大量死亡导致血糖升高,Prx Ⅱ的敲降会导致P-AKT、P-GSK-3b、P53和P-P53的表达水平下降,导致胰岛β-cell发生G2/M期阻滞和凋亡。因此,Prx Ⅱ可能通过调控P-AKT、P-GSK-3b、P(20)(18)和P-P53的表达水平保护胰岛β-cell。
[Abstract]:......
【学位授予单位】:黑龙江八一农垦大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2017
【分类号】:R587.1

【相似文献】

相关期刊论文 前10条

1 镡鲁滨;丁江舟;;非酶糖化抑制剂对STZ—糖尿病大鼠白内障发生率的影响[J];海军医学;1998年01期

2 费聿荣;韦丹;李明;张敏;张晓琳;丁文军;杨建虹;;STZ诱导的糖尿病对骨密度和血清睾酮的影响(英文)[J];中国科学院研究生院学报;2007年02期

3 齐峰;邱昌龙;朱亮;赵舒;杨小溪;;黄芪桂枝五物汤对STZ诱发糖尿病大鼠周围神经保护作用[J];中国中医基础医学杂志;2013年06期

4 郑里翔;STZ和alloxan联合使用复制实验性糖尿病大鼠模型[J];中国病理生理杂志;1999年08期

5 刘阳;宋淑娟;赵召霞;陈继冰;李一;;STZ诱导小鼠糖尿病模型胸腺的改变[J];中国老年学杂志;2006年03期

6 徐国兴,胡建章,王婷婷,郑卫东,林雯;HSP70在STZ—糖性白内障发病机制中的研究(英文)[J];国际眼科杂志;2004年03期

7 文莉;陈家春;;紫红獐牙菜对STZ糖尿病小鼠的降糖作用[J];中国药师;2007年02期

8 王剑勇;张晓明;张惠燕;;血小板反应素1在STZ诱导大鼠糖尿病性视网膜病变的表达研究[J];分子细胞生物学报;2006年05期

9 毕春花;王艳;;血管内皮生长因子和内抑素在STZ大鼠肾脏中的表达及意义[J];中国中西医结合肾病杂志;2008年04期

10 朱晓波;闫智宏;徐志伟;;维生素A结合胰岛素干预对STZ糖尿病大鼠血糖的影响[J];南京医科大学学报(自然科学版);2010年08期

相关会议论文 前5条

1 王剑勇;;血小板反应素1在STZ诱导大鼠糖尿病性视网膜病变的表达研究[A];2006年浙江省眼科学术会议论文集[C];2006年

2 费聿荣;韦单;李明;张敏;张晓琳;丁文军;杨建虹;;STZ诱导的糖尿病对骨密度和血清睾酮的影响[A];全国中西医结合内分泌代谢病学术会议论文汇编[C];2006年

3 陈刚;林丽香;庄维持;姚瑾;黄惠彬;林帆;梁继兴;林建立;;用基因芯片研究STZ诱导的糖尿病脑血管病大鼠全脑的基因表达谱[A];中华医学会第六次全国内分泌学术会议论文汇编[C];2001年

4 黄海泉;刘必成;刘殿阁;罗冬冬;马坤岭;;厄贝沙坦对STZ诱导的糖尿病大鼠肾脏CTGF表达的影响[A];“中华医学会肾脏病学分会2004年年会”暨“第二届全国中青年肾脏病学术会议”论文汇编[C];2004年

5 黄海泉;刘必成;阴东平;刘殿阁;罗冬冬;;STZ诱导糖尿病大鼠肾脏CTGF表达改变及意义探讨[A];“中华医学会肾脏病学分会2004年年会”暨“第二届全国中青年肾脏病学术会议”论文汇编[C];2004年

相关博士学位论文 前1条

1 于佳一;次血红素6肽结构鉴定及其保护STZ-诱导2型糖尿病大鼠作用研究[D];吉林大学;2015年

相关硕士学位论文 前5条

1 郑腾飞;姜黄素对STZ诱导的糖尿病视网膜病变的保护作用[D];湖北科技学院;2015年

2 刘励文;消渴痹通胶囊对STZ大鼠神经细胞氧化应激的影响[D];长春中医药大学;2016年

3 唐欣;石斛合剂对STZ诱导的认知功能障碍大鼠脑组织保护机制研究[D];福建中医药大学;2017年

4 石骁;大黄素对STZ大鼠肾脏组织Toll样受体4、NF-κB及白细胞介素-6表达影响的实验研究[D];河北医科大学;2017年

5 吴洁;速降糖对STZ糖尿病大鼠早期周围神经病变防治作用的实验研究[D];湖北中医学院;2004年



本文编号:2280325

资料下载
论文发表

本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/nfm/2280325.html


Copyright(c)文论论文网All Rights Reserved | 网站地图 |

版权申明:资料由用户09a16***提供,本站仅收录摘要或目录,作者需要删除请E-mail邮箱bigeng88@qq.com