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高糖作用下大鼠海马神经元MLCK表达与MAPK/ERK通路的相关性及二苯乙烯苷对神经元保护作用机制的探讨

发布时间:2020-12-06 03:08
  目的:建立SD大鼠海马神经元细胞原代培养模型,确定最适的高糖作用浓度和作用时间;检测高糖作用下海马神经元细胞内ERK、p-ERK和MLCK的表达;探讨高糖环境下海马神经元细胞MLCK与MAPK/ERK信号通路的相关性;初步研究高糖作用后二苯乙烯苷致MLCK表达下降的作用机制。方法:1.海马神经元细胞的原代培养及鉴定:以25mM为基础糖浓度培养海马神经元细胞,并用倒置显微镜观察海马神经元的形态;细胞培养至第7天,通过NSE免疫组化染色鉴定海马神经元细胞的纯度,并计算海马神经元细胞的纯度;2.最适高糖浓度探索:原代培养海马神经元细胞,将细胞悬液接种到96孔板中,细胞培养至第5天,将细胞分为25mM-24h组、25mM-48h组、25mM-72h组、45hmM-24h组、45mM-48h组、45mM-72h组;达到各组相应的糖作用时间后,用CCK-8试剂盒检测各组细胞的OD值,计算各组海马神经元的活性,得出最适高糖作用浓度。3.最适高糖作用时间的探索:原代培养海马神经元细胞,将细胞悬液接种到玻底培养皿中,将细胞分为25mM组、45hmM-24h组、45mM-48h组、45mM-72h组;达到... 

【文章来源】:贵州医科大学贵州省

【文章页数】:59 页

【学位级别】:硕士

【部分图文】:

高糖作用下大鼠海马神经元MLCK表达与MAPK/ERK通路的相关性及二苯乙烯苷对神经元保护作用机制的探讨


剪开颅骨后的整个大脑

细胞悬液,细胞培养,孔板,铺满培养


图 1 剪开颅骨后的整个大脑 图 2 暴露的海马组织Fig.1 and 2 Sampling of hippocampal neurons1.2.3 海马神经元细胞的鉴定(NSE 染色法)(1)准备工作:细胞爬片的预处理:将细胞置于 24 孔板中,用 PBS 4 倍稀释 10×PLL,取适量铺满培养板底部,置于细胞培养箱过夜后,PBS 漂洗 3 次,并放入培养箱晾干备用(所有操作均在超净工作台中)。(2)细胞培养方法同 2.2,直至制成细胞悬液。(3)免疫组化染色①将细胞悬液以5×105/mL 的密度接种到放置了细胞爬片的 24 孔培养板中;②细胞培养至第 7 天,从 24 孔板中取出爬片,37℃的 0.01M 的 PBS 浸洗 3次×2min;

神经元


个别细胞已开始长出突起,形态为圆形、椭圆形、锥体状及不规则形;细胞胞体透亮、饱满,立体感强,细胞周围光晕明显,折光性强;24h 后多数细胞长出长短不一的突起,可看到相邻突起有少量连接(见图 3-1)。(2)培养 3d 后,海马神经元细胞进一步生长,胞体增大,多为圆形、椭圆形或锥体形,以双极和多极神经元为主,表面光滑,折光性强,突起较之前明显增长,局部有较多的突起相互连接成稀疏网络(见图 3-2)。(3)培养 5-7d 后,神经元细胞形态成熟饱满,体积较大,聚集生长更明显,胞浆丰富,光晕明显,发达的突起向外延伸并且变粗分出许多分支,互相连接形成密集交错的网络(见图 3-3、图 3-4)。(4)培养 11-13d 后,神经细胞更加成熟,突起变得更加粗大,网络更加致密。培养液内出现悬浮的细胞碎片,一些神经元细胞开始退化,细胞变形,突起开始断裂变短,部分细胞裂解,细胞背景不干净(见图 3-5、图 3-6)。

【参考文献】:
期刊论文
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[8]不同糖浓度中大鼠DRG神经元相关蛋白表达及Ca2+浓度的测定[J]. 丁炎,那存乌力吉,阎雪晶,姚维凡,赵海山,陈磊.  中国医科大学学报. 2012(12)
[9]二苯乙烯苷对SAMP8小鼠学习记忆能力的改善作用[J]. 刘玲,赖术,黎昀,黄忠仕.  中国现代中药. 2012(10)
[10]糖尿病大鼠脑内微血管细胞外信号调节激酶磷酸化的研究[J]. 黄艳,吴兴临,张建中,王岩.  宁夏医科大学学报. 2012(09)

硕士论文
[1]褪黑素通过ERK/MAPK通路调控动脉粥样硬化模型兔动脉内皮细胞MLCK的表达[D]. 程筱雯.安徽医科大学 2007



本文编号:2900602

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