MSCs源性外泌体促周围神经再生作用及机制的初步研究
【学位授予单位】:海南医学院
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2018
【分类号】:R745
【图文】:
实验方法1 MSCs 和外泌体的提取及鉴定本研究实所用的 MSCs 和外泌体来源于课题组前期研究。首先我们在体养出纯化 MSCs 细胞,经流式细胞仪检测 MSCs 成对标记物 CD44/CD成功提取 MSCs。随后我们使用第 6 代 MSCs 提取外泌体,在透射电镜实了我们成功在 MSCs 中提取到外泌体,微流式检测的外泌体浓度3×109个/ml(图 1)。外泌体提取方法:MSCs P6 细胞在 T175 细胞瓶生汇合,PBS 漂洗 3 次,每次用 35 ml PBS,加入无血清培养基继续培养30 ml。经历72 h的无血清培养,摇晃几次后,收集上清用于提取外泌体。30 10 min,去除活细胞。留取上清。2000×g,离心 10 min,去除死细胞。1000离心 30 min,去除细胞碎片。留取上清。用 0.22 um 的一次性针头过滤菌。用Macrosep 超滤管将上清液浓缩至 9 ml 左右。100,000×g 离心 70 m200 ul PBS 重悬外泌体沉淀。-80oC 保存。
大鼠能够在通道里连续行走,保证实验的顺28 d 分别步态测定。SFI 的具体测定方法格为长 80 cm 、宽 10 cm 高 15 cm,两端开宽后铺于槽底(图 2-2),远端放一暗箱。肢双脚踝关节着色后,放于槽的开口端,端行走,每侧后肢各留下 4~5 个足印,选择侧足(E)的 3 个指标测量:①足印长度从足跟到足尖的距离;②足趾宽度(width1 趾到第 5 趾连线距离;③中间足趾距离(连线距离(如图 2-1)。将上述3 变量代入)/NPL+109.5(ETW-NTW)/-NTW+13.3(EIT-N代表假手术侧。公式计算结果 0%~-11%能完全丧失,-11%~-100%表示部分神经功
图 2-2 步态实验现场Figure 2-2 Gait experiment sceTL)测定 d、21d、28 d 分别进行热板一个透明观测柱状体,热板透明观测柱里,用秒表计时足记为大鼠的热刺激缩足为避免组织损伤,每次时量 3 次,取平均值评估热痛潜
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本文编号:2746303
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