RNA结合基序蛋白3对急性脑损伤的保护作用研究

发布时间：2020-07-12 10:09

【摘要】：目的:了解外源性RBM3对急性脑损伤大鼠是否具有保护作用,及其保护作用与亚低温对急性脑损伤的保护作用是否有相似效应方法:40只清洁级雄性Sprague-Dawley(SD)大鼠随机分成4组,每组10只,即正常对照组(NC组),脑损伤组(CI组),脑损伤+RBM3组(CR组),脑损伤+亚低温组(CM组)。其中(CI组,CR组,CM组)均为缺氧方法构建的急性脑损伤模型,其中CM组通过亚低温处理,使大鼠肛温维持在32℃。观察比较各组大鼠24小时后神经行为学表现。各组大鼠分别于实验处理后24小时通过采血进行肝肾功能(CK、AST、Cr)、血气分析水平的检测。用HE染色法观察各组大鼠脑、肺、肝、肾组织的病理损伤情况。所得数据均经统计学软件分析。结果:1.通过缺氧方式成功构建大鼠急性脑损伤模型,大鼠在缺氧过程中出现青紫、躁动甚至昏迷、死亡等脑组织缺氧、神经功能障碍、机体严重损伤的表现。缺氧刺激24小时后,与正常对照组比较,脑损伤模型组大鼠出现行为学改变,在学习、记忆以及空间定向能力方面减退。2.采血进行血气分析(PH、PO_2、PCO_2、SaO_2),(1)各组大鼠的PH值比较差异均无统计学意义。(2)脑损伤组PO_2、PCO_2、SaO_2结果与正常对照组差异均有统计学意义。经过RBM3或者亚低温处理后:(3)PO_2和SaO_2结果均有所升高且与脑损伤组比较,以及两组之间比较,P0.05,差异有意义。(4)PCO_2值结果RBM3组与脑损伤组比较,P0.05,差异无意义。亚低温组结果明显降低,与脑损伤组比较P0.05,差异有意义。3.采血进行生化指标(CK、AST、Cr)分析,脑损伤组CK、AST、Cr明显高于正常对照组,且经过RBM3或者亚低温处理后:(1)CK值与脑损伤组比较均有所降低,P0.05。两组之间比较差异无意义,P0.05。(2)AST结果与脑损伤组比较同样均降低,P0.05,且两组之间比较P0.05,差异有意义。(3)Cr值结果与脑损伤组比较,RBM3组差异无意义P0.05,亚低温组结果明显降低P0.05。4.重要器官保护作用比较:HE染色结果显示:经缺氧处理的脑损伤组的大鼠在脑、肝、肺、肾的病理图片显示均有明显损伤,而经过RBM3或亚低温处理后,脑、肝、肺病理损伤程度均明显减轻。结论:1.外源性RBM3对急性脑损伤大鼠具有一定的保护作用。2.外源性RBM3对急性脑损伤大鼠的保护作用与亚低温对急性脑损伤大鼠的保护作用具有相似效应。
【学位授予单位】：安徽医科大学
【学位级别】：硕士
【学位授予年份】：2019
【分类号】：R743
【图文】：

图 1 RBM3 溶液的序列稀释Fig 1 Serial dilution of RBM3 solution注：选择 8 个离心管，第一个对照组中加入 1.8 ml 维持液，在实验组的一系列的离心管中同样加入 1.8 ml 的维持液，在第一个实验组离心管中加入 0.2 ml 的RBM3 溶液，充分吹打、混匀此时该管中的 RBM3 浓度为 10-1mg/ml，然后在第一个离心管中取混合后的 RBM3 溶液 0.2 ml 加入到第二只离心管中，再次进行吹打、混匀则该管 RBM3 的浓度为 10-2mg/ml，再次取混合后的 RBM3 溶液 0.2 ml加入第三只离心管中该管 RBM3 的浓度为 10-3mg/ml，依此类推，作系列稀释，则得到的列续为 RBM3 进行 10 倍稀释。3）弃去培养板上各孔细胞的培养液，用 PBS 轻轻洗涤三次后，每孔加入相应稀释度 RBM3 溶液，每个稀释度重复 3 个孔，置于 37℃、50%CO2培养箱中培养，培养期间每隔 2 个小时摇动培养板数下，以保证所有细胞都能充分接触。

10ug/ml 作用于神经小胶质细胞。不同浓度的 RBM3（0、0.01、0.1、1.0、10ug/ml 作用下的小胶质细胞 24h 后，细胞活性和细胞状态如下。表 1 小胶质细胞活性及状态Tab 1 Microglia cell activity and statusRBM3 浓度（ug/ml） 细胞活性 细胞状态空白对照 0.847±0.063 静息状态0.01 0.847±0.078 静息状态0.1 0.862±0.064 部分活化1 0.861±0.069 部分活化10 0.883±0.075 大部分活化100 0.868±0.071 活化状态1000 0.697±0.083 部分细胞死亡

图 3 脑组织 HE 病理染色（×200）Fig 3 Hematoxylin and eosin(HE)staining of the brain tissues(×200)

【相似文献】

相关期刊论文 前10条

1 况建国;郝向阳;;尼莫通治疗急性脑损伤的疗效分析[J];江西医学院学报;1998年04期

2 郭丽丽,常香莲,付海花;急性重症脑损伤的护理体会[J];长治医学院学报;1996年03期

3 梁锦泉;冯子泽;;急性脑损伤继发神经源性肺水肿[J];中国医药科学;2013年15期

4 林立,马保新,吴天子;急性脑损伤颈内静脉血氧饱和度监测的应用[J];福建医药杂志;2000年01期

5 周丽琴;唱丽敏;阴炳侠;孔丽清;王金侠;齐雅君;;神经元特异性烯醇化酶在急性脑损伤患者血清中的变化[J];中国临床医生;2014年01期

6 石昌林;;七叶皂苷钠治疗急性脑损伤300例[J];中国医药指南;2011年09期

7 董宏;王勇强;赵桂森;张英;;磷酸肌酸在急性脑损伤患者脑心综合征防治中的应用[J];山东医药;2013年12期

8 温立鸿;;37例急性脑损伤患者血小板相关参数结果分析[J];中国实用神经疾病杂志;2011年04期

9 周凡,张世明;急性脑损伤866例临床分析[J];苏州大学学报(医学版);2004年02期

10 周君富;张晓岗;钟雪娟;;急性脑损伤与脑脊液和血浆过氧化脂质关系的探讨[J];中华创伤杂志;1991年01期

相关会议论文 前5条

1 周君富;奚国华;丁德云;张晓岗;胡军福;江观玉;;急性脑损伤患者脑脊液过氧化脂质的检测及其临床意义(摘要)[A];第三次全国急诊医学学术会议论文摘要汇编[C];1990年

2 马海英;喻博;李花;王洪飞;石玉秀;;PKH26示踪神经干细胞移植急性脑损伤的初步观察[A];中国解剖学会第十一届全国组织学与胚胎学青年学术研讨会论文汇编[C];2009年

3 金细众;杨坤;林芙蓉;;急性脑损伤病人血乳酸改变与APACHEⅡ评分间的相关性分析[A];第三届重症医学大会论文汇编[C];2009年

4 张秀丽;孙志扬;;大鼠急性脑损伤后NF-κB活性的变化及地塞米松对其影响[A];首届西湖重症医学论坛暨2011年浙江省重症医学学术年会论文汇编[C];2011年

5 张志捷;杨建军;艾青;王春光;徐建国;;不同晶体液对脑损伤兔血清电解质、酸碱平衡和脑水肿的影响[A];2008年第七次华东六省一市麻醉学学术会议暨浙江省麻醉学术年会论文汇编（下册）[C];2008年

相关博士学位论文 前3条

1 万琪;急性脑损伤脑皮质微血管改变与再生的实验研究[D];第四军医大学;1995年

2 王宇;经颅二维及彩色多普勒超声评价急性脑损伤及颅内压变化的临床研究[D];第四军医大学;2013年

3 王希锋;脑电双频谱指数用于预测急性严重脑损伤病人预后的临床研究[D];山东大学;2014年

相关硕士学位论文 前3条

1 王瑶瑶;RNA结合基序蛋白3对急性脑损伤的保护作用研究[D];安徽医科大学;2019年

2 王春生;丙泊酚对大鼠急性脑损伤S100β蛋白、脑组织总钙、含水量及组织形态学的影响[D];宁夏医科大学;2014年

3 李跃伟;应用经颅多普勒动态监测急性脑损伤患者脑血流及脑血管反应性的研究[D];苏州大学;2006年

本文编号：2751793