当前位置:主页 > 医学论文 > 神经病学论文 >

激活素A对Neuro-2a细胞增殖抑制作用及其机制

发布时间:2020-11-10 00:56
   激活素A(Activin A)是TGF-β超家族成员,在机体的多个组织器官中均有表达,并发挥不同的生物学作用。其受体由I型受体以及II型受体构成,它们均属于丝氨酸/苏氨酸激酶(Ser/Thr)型受体。在信号传导的过程中,Activin A与II型受体相互结合后,所得到复合物再和I型受体结合,进而通过细胞内经典Smads信号蛋白,或者非Smads依赖的途径(包括MAPK、Rho GTpase、P13K/Akt或ARIPs)传导信号至细胞核,然后激活靶基因转录。有关研究显示,Activin A在多种肿瘤细胞増殖及凋亡过程中有着不可或缺的地位,如大肠癌及卵巢癌等组织高表达Activin A,大肠癌及骨肉瘤等患者外周血Activin A水平也升高。还有研究报道,Activin A的表达变化能够影响肿瘤恶液质的产生。本课题组前期研究显示:小鼠神经母细胞瘤Neuro-2a细胞能够表达Activin信号分子ARIP1,2;同时Activin A诱导的Neuro-2a细胞Na~+电流,过表达的ARIP1能够下调这一功能。这一结果提示,Activin A可以影响Neuro-2a细胞活性,但Activin A能否影响Neuro-2a细胞增殖、进而诱导Neuro-2a细胞凋亡以及Activin A是否对Neuro-2a细胞迁移有一定作用,目前仍不清楚。因此,本研究首先利用体外培养的小鼠脑神经母细胞瘤Neuro-2a细胞,探讨Activin A对Neuro-2a细胞增殖、凋亡以及形态的影响,并进一步确定Activin A抑制Neuro-2a细胞增殖的相关机制,为寻找神经系统肿瘤新的治疗靶点和方法奠定研究基础。
【学位单位】:吉林大学
【学位级别】:硕士
【学位年份】:2018
【中图分类】:R739.4
【部分图文】:

分子结构图,多肽,分子结构,受体


图 1.1 Activin 多肽的分子结构Fig.1.1 Structure of activin polypeptide分别为 ActivinA(ActivinA,βAβA)、ActivinB(Activin B,β Bβ B)和 ActivinA(Activin AB,β Aβ B)。 其中分布最广泛、生物活性最强一种就是 Activin A。1.1.2 Activin 受体Activin 受体有两种分型,一种是 I 型受体(ALK-2 和 ALK-4),另一种是 II型受体。而 II 型受体又分为 IIA、IIB 两个亚型。这两种不同形式的 ActRII 的高度同源性集中在其细胞质结构域中(75%),而在细胞外(51%)和跨膜(42%)区域则只有中等同源性。已有研究报道:以 ActRIIA 受体为靶向,能够实现延缓肾纤维化的进程[2];ActRIIB 的阻断保留了小鼠肌肉时的能量供应,增加了肌肉发力能力[3]。已有研究证实,Activin 受体在机体健康和疾病状态下均能够调控胶质细胞的生物学功能[4-5]。越来越多的实验证实了 Activin 受体在临床治疗中的突

模式图,信号传导,模式图,信号通路


后通过 Smad4 这一信号分子向核内移行,进而激活靶基因启动子。因此,Activin信号传导途径的关键步骤,是 II 型受体与 I 型受体复合体的形成。所以,如果对I 型受体与 II 型受体复合体的结合过程进行干预,我们可能能够调控 Activin 诱导的细胞内信号的传导过程。有研究证实 Activin 信号通路是传统保守的神经诱导信号[31]。越来越多的实验证明 Activin 信号通路的调控作用。有研究揭示:Activin 信号调控食管腺癌的增殖和侵袭;Activin A 能够通过 Activin A 信号通路诱导肝细胞发生分化;同时 Activin 信号也参与细胞的自我更新以及结肠癌的信号传导; ActivinA 有望成为筛查结肠癌的新指标[33-37]。这标志着临床治疗手段有望通过对 ActivinA 信号通路的控制和干扰产生新的治疗思路[28, 38, 39]。新的研究发现:ActivinA/ Smads 信号通路在神经元 PC12 细胞中负调控缺氧诱导的自噬[40]。此外,Smad1,5 或 8 的 C 端还可以被 BMP 激活,并且 BMP 还与神经发育

细胞分泌,细胞,自分泌,水平变化


第 3 章 实验结果a 细胞自分泌 Activin A定 Neuro-2a 细胞是否能够分泌 ActivinA,同时探a 细胞分泌 ActivinA 水平的影响,实验采用 ELIuro-2a 细胞 12 h 后细胞上清中 Activin A 水平变化 细胞能够分泌 ActivinA,LPS 刺激 Neuro-2a 细显升高,与对照组相比统计学差异显著,** P<激 12 h 后,分泌 ActivinA 水平无明显变化(图 a 细胞自分泌 ActivinA。
【相似文献】

相关期刊论文 前10条

1 何淑珠;;以核心概念为中心建构“细胞增殖”专题知识的案例分析[J];生物学教学;2017年02期

2 王海丽;细胞增殖与调控机理的研究[J];安阳大学学报;2004年03期

3 孙岚玲 ,王术平;可溶性CD23在T细胞增殖中的作用[J];国外医学(免疫学分册);1992年04期

4 刘友华;章静波;;生长因子、生长抑制因子与肿瘤细胞增殖调控[J];国外医学(肿瘤学分册);1987年04期

5 祖幼力,河野通明,難波雄二郎,花罔正男;IL-2促细胞增殖机制初探(简报)[J];中国免疫学杂志;1988年04期

6 张澍;张水英;王月峰;马旭;;用人鼠细胞杂交、提前染色体浓缩和染色单体差异技术研究人骨髓细胞增殖时相和周期[J];中国人民解放军军医进修学院学报;1988年01期

7 王志华;;B细胞增殖分化因子(TRF/IL-5)及其受体[J];国外医学(免疫学分册);1988年02期

8 内海耕糙;王维人;;细胞膜机能的调节与信息传递[J];佳木斯医学院学报;1988年03期

9 吴晓波;;涉及T细胞激活的信息:通过抗CD28和抗CD2单克隆抗体的协同作用诱导T细胞增殖[J];国外医学(卫生经济分册);1988年06期

10 鲁先平,李士谔,于树玉;亚硒酸钠对AH_(22)小鼠腹水型肝癌细胞中组织特异酶CPSⅠ的诱导及对细胞增殖酶ACT的抑制[J];生物化学杂志;1989年03期


相关博士学位论文 前10条

1 申菲菲;Dynasore对肺癌A549细胞增殖、凋亡及侵袭迁移的影响及其机制[D];中国医科大学;2018年

2 杨阳;牙鲆生殖细胞增殖、分化规律及分子机制的研究[D];中国科学院大学(中国科学院海洋研究所);2018年

3 张磊;稳态磁场抑制肿瘤细胞增殖及其机制研究[D];中国科学技术大学;2018年

4 朱国琴;熊果酸联合紫杉醇对胃癌细胞增殖和迁移的影响[D];南京医科大学;2018年

5 韩超;AKR1B10在肝癌早期诊断中的作用及其抑制剂对HepG2细胞增殖调控的研究[D];中国医科大学;2018年

6 钟云华;热休克转录因子2在肺癌中的表达及调控的分子机制[D];昆明理工大学;2017年

7 苏踊跃;CASK-Id1信号通路在细胞增殖中的作用[D];第三军医大学;2004年

8 胡新颖;鲢鱼骨骼肌丝氨酸蛋白酶抑制剂的纯化、性质鉴定及对肿瘤细胞增殖的影响[D];中国农业大学;2005年

9 高媛;血小板因子-4抑制U937细胞增殖的机理研究[D];中国人民解放军军事医学科学院;2005年

10 孙荣距;hCASK调控p21~(WAF1/CIP1)表达机制的研究[D];第三军医大学;2006年


相关硕士学位论文 前10条

1 金云云;牛miR-204对脂肪细胞增殖、分化和凋亡的功能研究[D];西北农林科技大学;2018年

2 任江涛;富含血小板血浆促进糖尿病创面血管新生和细胞增殖的实验研究[D];遵义医学院;2018年

3 周业;RTN4高表达对永生化胃粘膜上皮GES1细胞增殖的影响及机制[D];南华大学;2018年

4 李佳林;白花蛇舌草总黄酮联合顺铂对肺癌A549细胞增殖、凋亡的影响及可能机制[D];南华大学;2018年

5 张佳玉;长期染烟BEAS-2B细胞的组蛋白乙酰化修饰及FOXO3基因调控细胞增殖与凋亡机制研究[D];苏州大学;2018年

6 王旦旦;下调RbAp48表达抑制肿瘤细胞增殖及提高顺铂敏感性的机制研究[D];南方医科大学;2018年

7 耿介;人Vasorin蛋白对HepG2和MB231细胞增殖和迁移能力的影响[D];军事科学院;2018年

8 高文静;氢质子磁共振波谱成像联合微小染色体维持蛋白2在评价脑胶质瘤细胞增殖及预后的应用价值[D];山东大学;2018年

9 陈欣欣;激活素A对Neuro-2a细胞增殖抑制作用及其机制[D];吉林大学;2018年

10 郑庆凯;MiR-433通过下调PAK4的表达抑制A549细胞增殖及迁移[D];郑州大学;2018年



本文编号:2877219

资料下载
论文发表

本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/shenjingyixue/2877219.html


Copyright(c)文论论文网All Rights Reserved | 网站地图 |

版权申明:资料由用户bdb36***提供,本站仅收录摘要或目录,作者需要删除请E-mail邮箱bigeng88@qq.com