高原缺氧环境对听力健康影响的相关研究

发布时间：2017-03-25 18:00

  本文关键词：高原缺氧环境对听力健康影响的相关研究，，由笔耕文化传播整理发布。

【摘要】：目的:通过流行病学调查系统分析高原人群缺氧与听力变化的可能关系。通过建立动物模型研究高原移居时间对听觉系统的影响,为缺氧引起的耳聋治疗提供理论依据。方法:1、通过整群随机抽样的方式,在拉萨市境内随机选取200名18到25岁的青年,通过纯音测听以及调查问卷的形式进行听力健康流行病学调查,按照国际标准进行听力健康的筛选。运用统计学知识分析高原人群缺氧与听力变化的可能关系。2、利用动物模型实验:随机选取生活在平原地区的听力正常的Wistar大鼠140只,雌雄分别70只,鼠龄3-4个月,体重200 g-300g,自进入高原第1天开始计算时间,第1天老鼠的各项指标作为对照组,30天、60天、90天、120天、150天、180天的各项指标变化情况作为实验组,进行时间对照分析。在解剖显微镜下取出耳蜗基底膜进行铺片,然后进行苏木精染色,通过在放大400倍显微镜下对耳蜗HC细胞观察计数来分析大鼠进入高原不同时间点缺氧环境对耳蜗HC细胞的影响。结果:1、被调查的200名高原青年人群中,听力减退检出率为13.0%(26/200)。男性检出率为24.0%(18/75);女性检出率为6.4%(8/125),男性检出率明显高于女性,差异有统计学意义(P0.05)。藏族检出率为17.3%(20/115);汉族检出率为7.1%(6/85),藏族检出率高于汉族,差异有统计学意义(P0.05)。2、急进高原的大鼠表现出一定的急性高原反应症状。随着进入高原时间的延长,持续的缺氧环境,大量的实验大鼠出现活动量明显减少;从进藏第10天开始到进藏的第180天先后有15只大鼠死亡。6只动物在进藏2个月之后出现了单眼或双眼失明现象。3、通过本研究结果发现,耳蜗毛细胞在前3个月的变化不明显,但随着缺氧暴露时间的延长,OHC出现细胞膨大、变形、移位、每排细胞间距变宽,甚至出现细胞境界模糊或消失现象;IHC也随之出现了一定的形态学改变。结论:1、在缺氧环境下的持续暴露,对人体的听觉功能,视觉功能均有一定的影响。2、西藏偏远地区听力损失情况严峻,应当引起足够的重视。3、高原缺氧环境对人体的听觉系统有一定的损伤作用。4、缺氧对耳蜗的损伤作用的顺序是从蜗底部向蜗尖部进行的,对耳蜗毛细胞的损伤是先损伤OHC,继而进行性的损伤IHC.
【关键词】：高原缺氧 耳蜗 听力健康 动物模型
【学位授予单位】：西藏大学
【学位级别】：硕士
【学位授予年份】：2016
【分类号】：R764.43;R594.3
【目录】：

• 英文缩写注释表3-4
• 摘要4-6
• ABSTRACT6-12
• 第一章 文献综述12-21
• 第一节 高原环境对移居高原人群的影响12-18
• 1 高原的环境特点12-13
• 1.1 缺氧12
• 1.2 寒冷12-13
• 1.3 湿度低13
• 1.4 光照辐射强13
• 2 移居高原人群进入高原后正常系统生理特征的变化。13-16
• 2.1 血液系统生理特征的变化13-14
• 2.2 呼吸系统14
• 2.3 神经系统14-16
• 3 与高原缺氧相关性疾病16-18
• 3.1 高原代谢紊乱征16-17
• 3.2 高原先天性心脏病17
• 3.3 高原白内障17-18
• 第二节 缺氧的耳蜗毒性作用国内外研究现状18-21
• 第二章 高原环境对听力健康影响的调查研究21-26
• 引言21
• 第一节 资料和方法21-23
• 1 调查资料21-22
• 1.1 调查对象和调查时间21
• 1.2 问卷调查及回收情况21-22
• 2 调查方法22
• 2.1 问卷调查表22
• 2.2 纯音电测听检查22
• 3 诊断标准22-23
• 4 统计学方法23
• 第二节 实验结果23-25
• 1 调查情况23
• 2 不同性别的 18-25岁青年听力损失程度分布23-24
• 3 不同民族 18-25岁青年听力损失程度分布情况24
• 4 18-25岁青年听力损失的不同病因分布情况24-25
• 第三节 结果讨论25-26
• 第三章 高原环境下WISTAR大鼠的饲养管理26-29
• 引言26
• 1 饲养环境26-27
• 1.1 温度和湿度26
• 1.2 光照和噪声26
• 1.3 鼠架和鼠盒26-27
• 1.4 垫料27
• 1.5 饮水27
• 2 卫生管理27-28
• 2.1 实验工作人员工作制度27
• 2.2 饲料、饮水瓶、笼具、垫料等使用前必须消毒27-28
• 3 经验体会28-29
• 第四章 实验模型动物进入高原不同时间点耳蜗基底膜形态研究29-39
• 引言29
• 第一节 实验材料和试剂29-32
• 1 实验动物29-30
• 2 仪器、试剂和器材30-32
• 2.1 仪器30
• 2.2 主要试剂30
• 2.3 配制试剂30-32
• 第二节 实验方法32-35
• 1 动物的分组及观察32-35
• 1.1 分组方式32
• 1.2 观察动物一般状况32-33
• 1.3 耳蜗形态学观察33-35
• 第三节 实验结果与讨论35-39
• 1 实验结果35-37
• 1.1 Wistar大鼠的一般状态35
• 1.2 大鼠耳蜗基底膜铺片观察结果35-37
• 2 讨论37-39
• 2.1 大鼠的生理学变化37-38
• 2.2 大鼠耳蜗内HC细胞的细胞形态学变化38-39
• 第五章 全文总结39-40
• 参考文献40-46
• 在攻读硕士学位期间发表论文目录46-47
• 致谢47

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