SIRT-6通过上调PPAR-α及阻遏肝细胞衰老改善非酒精性脂肪性肝病
【学位单位】:华中科技大学
【学位级别】:硕士
【学位年份】:2019
【中图分类】:R575.5
【部分图文】:
. 用免疫组织化学法比较健康对照和慢性肝病病人肝组织 SIRT-6 的表达情况首先,我们从临床角度出发,通过免疫组织化学法,比较经病理学证实的健康对者、自身免疫性肝病病人、NAFLD 病人肝组织的 SIRT-6 的表达情况,以初步了解AFLD 与 SIRT-6 表达的关系。SIRT-6 定位于细胞核,故为核染。健康对照者肝细胞态正常,未见脂质沉积与炎性细胞浸润,SIRT-6 核染明显,提示 SIRT-6 表达量较(见图 1-A);自身免疫性肝病病人肝组织未见脂质沉积,有明显的淋巴细胞和浆胞浸润,SIRT-6 核染轻度减低,提示 SIRT-6 表达量开始下降(见图 1-B);NAFLD人肝细胞出现明显的脂质沉积,以大泡性脂肪滴变为主,伴慢性炎性细胞浸润。IRT-6 未见核染,提示 SIRT-6 表达处于更低水平(见图 1-C)。上述实验结果为论证IRT-6 参与 NAFLD 发生发展提供了临床基础,下一步我们将通过基础实验进一步分 SIRT-6 调控 NAFLD 脂质代谢紊乱与肝细胞衰老的机制。此外,本节实验结果提示IRT-6 还可能参与到更多慢性肝病,如自身免疫性肝病的发生发展之中。
图 2 小鼠喂养周期体重变化趋势与大体形态与 HF 组小鼠在喂养第 0w、5w、10w、15w、20w 时的体重及变化趋势两组小鼠体重的差异具有统计学意义,P<0.05D、22w HF、22w HF+LV-NC、22w HF+LV-Sirt6 四组小鼠的大体形态(标好的实验方案,普通饮食组小鼠(CD 组)和高脂饮食喂养 20 周。喂养第 0w、5w、10w、15w、20w 时 CD 2.12 1.98)g、(25.65 4.94)g、(28.33 4.06)g、(6)g;HF 组小鼠的体重分别为:(23.11 2.38)g、(20)g、(36.78 3.72)g、(37.91 4.77)g。第 15w、统计学意义。两组小鼠体重变化趋势如图 2-A 所示。,从HF组随机选取8只小鼠,尾静脉注射慢病毒。其中4NC。上述各组按照之前的方法继续喂养 2 周直至第 22 22w HF、22w HF+LV-NC、22w HF+LV-Sirt6 四组小鼠。
两种检测方法均提示 4w CD 组、22w CD 组小鼠的肝组织未见明显的脂质沉积(见图3-A、-B,图 4-A、-B)。而 22w HF 组小鼠的肝组织可见到明显的脂质沉积,超过60%的肝细胞出现大泡性脂滴,提示严重脂肪变性(见图 3-C、图 4-C)。22w HF+LV-Sirt6组小鼠的肝组织脂质沉积显著减少,肝细胞脂肪变性得到明显改善(见图 3-D、图4-D)。本节实验结果提示 SIRT-6 可以减轻 NAFLD 小鼠的脂质沉积。图 3 各组小鼠肝组织 HE 染色(×400)A、B、C、D 分别表示 4w CD、22w CD、22w HF、22w HF+LV-Sirt6 四组小鼠肝组织的 HE 染色图 4 各组小鼠肝组织油红 O 染色(×400)A、B、C、D 分别表示 4w CD、22w CD、22w HF、22w HF+LV-Sirt6 四组小鼠肝组织的油红 O 染色4. 各组小鼠肝组织免疫组织化学染色用免疫组织化学的方法检测各组小鼠肝组织内 SIRT-6、 -H2AX 的表达(见图 5)。SIRT-6 与 -H2AX 定位于细胞核,故均是核染。4w CD、22w CD、22w HF 三组小鼠肝组织内 SIRT-6 的表达逐渐减少,其中 22w HF 组下调最显著。相较于 22w HF 组,22w HF+LV-Sirt6 组肝组织内 SIRT-6 的表达明显上调。4w CD、22w CD、22w HF 三
【相似文献】
相关期刊论文 前10条
1 潘传燕;冯鹏霏;张永德;罗洪林;;尼罗罗非鱼PPARδ的原核表达及其多抗制备和纯化[J];福建农业学报;2019年09期
2 蒋天从;姚满红;郭璐莹;易建平;韩宝生;戚桂杰;刘英杰;张鸥;;PPARγ基因外显子6多态性与多囊卵巢综合征关系的系统评价[J];中国煤炭工业医学杂志;2016年12期
3 李晨波;张小娟;刘琴;刘丽;沈建芳;;血脂、PPARγ在子痫前期及子痫前期合并胎儿生长受限中的检测及意义[J];南通大学学报(医学版);2016年06期
4 Daniela Rigano;Carmina Sirignano;Orazio Taglialatela-Scafati;;The potential of natural products for targeting PPARα[J];Acta Pharmaceutica Sinica B;2017年04期
5 李腾;李琼;严国强;储佳佳;沈小丹;温见炳;黄起壬;钟荣梅;;人PPARγ基因过表达重组腺病毒载体的构建及鉴定[J];南昌大学学报(医学版);2015年03期
6 胡亚;李东芳;;PPARγ在胃癌中作用的研究进展[J];中国中西医结合消化杂志;2014年05期
7 李强;党诚学;;PPARγ mRNA在胃癌组织中的表达及其与胃癌预后的关系[J];实用癌症杂志;2012年01期
8 刘洁琼;梅长林;熊锡山;贾洁爽;付莉莉;;酪氨酸激酶抑制剂对多囊肾病PPARγ的影响研究[J];中国中西医结合肾病杂志;2011年01期
9 何英;邬玉辉;;乳腺癌PPARγ和COX-2的表达及临床意义[J];中国现代医学杂志;2011年20期
10 张恒艾;杜冠华;;以PPAR为靶点防治肾脏疾病药物研究进展[J];中国药学杂志;2010年07期
相关博士学位论文 前10条
1 张美双;miR27a通过PPARγ调控脂肪细胞重编程诱导肥胖胰岛素抵抗的作用机制研究[D];吉林大学;2019年
2 谢波;槲皮素调控PPARγ/NF-κB信号通路在心肌缺血再灌注中的保护作用及机制研究[D];上海交通大学;2016年
3 王晨超;PPARγ基因沉默在BMP2诱导的骨缺损修复中作用的研究[D];中国医科大学;2019年
4 刘磊;ANGPTL4介导PPARγ激活剂在子痫前期病理过程中的保护性作用[D];上海交通大学;2018年
5 周亚群;PPARγ激活缓解紫杉醇诱发大鼠神经病理性疼痛的机制研究[D];华中科技大学;2019年
6 张兆斯;PPARγ介导的平滑肌细胞表型转化在蛛网膜下腔出血中的作用及机制研究[D];重庆医科大学;2019年
7 李琪;USP29去泛素化并稳定Snail蛋白及Ajuba辅转录激活PPARγ和ERα转录活性的机制[D];上海交通大学;2018年
8 穆琼;激活PPARγ对大鼠ICH模型病灶周围脑组织小胶质细胞吞噬能力及CD36表达的影响[D];苏州大学;2018年
9 博庆丽;胎盘PPARγ对细菌脂多糖诱发胎儿死亡的拮抗作用[D];安徽医科大学;2018年
10 赵帅;从天然产物库中筛选PPAR受体激动剂的研究[D];东北林业大学;2017年
相关硕士学位论文 前10条
1 邢国威;激活PPARα通过GPX4缓解铁过载引起的小鼠肝脏铁死亡损伤[D];华中农业大学;2019年
2 胡航;PPARγ在鹅卵巢颗粒细胞脂质代谢中的功能研究[D];四川农业大学;2018年
3 钟文霞;PYC通过PI3K/PPARα调控HepG2细胞内Plin5表达及脂质蓄积的机制研究[D];中国医科大学;2019年
4 金丹茹;清脂通脉颗粒对动脉硬化模型大鼠血脂及PPARγ、LXRα、CD36表达影响的研究[D];辽宁中医药大学;2019年
5 景智;基于PPARγ和AT1双靶点的先导化合物虚拟筛选[D];天津医科大学;2019年
6 赵精咪;谷氨酸兴奋毒性损伤对PPARγ表达及活性调节的体内研究[D];天津医科大学;2019年
7 郑思思;BHBA、NEFAs对牛子宫内膜细胞中PPARs表达的影响[D];沈阳农业大学;2019年
8 罗驰骋;白藜芦醇对鸡肝细胞脂肪变性PPARα信号通路的调控机理及PPARα慢病毒过表达载体的构建[D];江西农业大学;2019年
9 孙溪峰;吡格列酮通过PPARγ-miR-23-Irf1/Pknox1轴调节M1/M2型巨噬细胞极化从而减少肾炎症损伤和草酸钙晶体形成的实验研究[D];华中科技大学;2019年
10 辛晟梁;SIRT-6通过上调PPAR-α及阻遏肝细胞衰老改善非酒精性脂肪性肝病[D];华中科技大学;2019年
本文编号:2835669
本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/xiaohjib/2835669.html