[目的]γ干扰素诱导蛋白10 (IP-10, CXCL10)是ELR的CXC趋化家族成员之一,也是CXCR3受体的一个配体,可以趋化NK细胞,活化的T细胞,DC细胞等。在HBV感染的病人外周血单个核细胞,肝窦内皮细胞,血小板中,IP-10的mRNA和蛋白质水平都显著增高。IP-10基因敲除的小鼠对稳定性嗜神经小鼠肝炎病毒的免疫反应减弱,伴随脑部CD4+和CD8+淋巴细胞浸润减少和炎性因子释放减少。因此,在HBV感染中,IP-10的诱导表达上调及其免疫效应是一非常重要的事件。但是,诱导IP-10表达上调的分子机制及其意义还不是十分清楚。在此研究中首先检测了不同病人肝组织中IP-10的表达,进一步通过细胞模型探索了HBx诱导趋化因子IP-10表达的分子机制及其白细胞趋化效应。 [方法] 1.在HBV感染病人肝脏组织中IP-10表达的检测 12例(8例男性,4例女性;年龄在32-65之间,平均年龄48±9)接受外科手术治疗的慢性HBV感染肝癌患者,7例接受外科手术治疗的非HBV感染肝癌患者和5例肝血管瘤患者肝脏正常组织分别从华中科技大学附属同济医院和协和医院收集,肝脏组织中IP-10mRNA和蛋白的表达分别采用real-time PCR和免疫组织化学方法检测。 2.转染不同质粒的HepG2细胞IP-10表达的检测 转染不同质粒的HepG2 (pBlue-HBV, pCMV-HBs, pCMV-HBc, pCMV-HBx,)细胞培养上清中的IP-10采用ELISA方法检测。 3.IP-10启动子荧光素酶报告基因活性检测 一系列5’端截短突变的IP-10启动子荧光素酶报告基因质粒和NF-κB突变的IP-10启动子荧光素酶报告基因质粒采用分子克隆技术构建,并与HBx真核表达质粒pCMV-HBx共转染HepG2细胞。48h后检测荧光素酶活性。 4.凝胶迁徙阻滞实验 转染不同质粒的细胞核抽提物与生物素标记的NF-κB1探针共同孵育,加入或不加入未标记的野生型NF-κB1探针或未标记的突变型NF-κB1探针,随后用6%聚丙烯酰胺凝胶在0.5×TBE中电泳,电泳后转膜,Image Station 4000R成像检测膜上化学发光信号。 5.染色质免疫共沉淀实验 HepG2细胞转染不同质粒后用1%甲醛交联,超声打断染色质,与anti-p65抗体,anti-p50抗体或同型对照IgG一起孵育共沉淀。从染色体-抗体复合物中分离出DNA用于PCR扩增,琼脂糖凝胶电泳分析。 6.激光共聚焦显微术 转染不同质粒的HepG2细胞爬片用冷甲醇固定,1%牛血清白蛋白封闭,anti-p65一抗孵育。FITC标记的二抗检测信号,激光共聚焦显微镜观察。 7.趋化实验 趋化实验采用5-μm孔径的24孔Transwell板进行。1×105外周血单个核细胞用200μl RPMI培养液悬浮加入到上室。1ml转染了相应质粒的HepG2细胞上清液加入下室。Transwell板在37℃,5%CO2培养箱中孵育4h后,对趋化的细胞HE染色,计数。 [结果] 1.HBV感染的肝脏组织中IP-10的表达 采用real-time PCR和免疫组织化学方法检测HBV感染肝脏组织中IP-10mRNA和蛋白表达结果提示,HBV阳性的肝癌组织中IP-10的mRNA和蛋白表达均显著高于HBV阴性肝癌组织以及肝血管瘤的正常肝脏组织,这些数据表明,在HBV感染的肝脏组织中IP-10的表达升高,可能在HBV诱导的肝脏炎症损伤中起着重要作用。 2. HepG2细胞中HBx蛋白诱导IP-10的表达 转染了HBV全长表达质粒(pBlue-HBV)后,HepG2细胞培养上清液中IP-10蛋白水平显著增高。为了检测HBV不同蛋白分子对诱导IP-10的作用,分别转染了编码不同HBV蛋白分子的真核表达质粒(pCMV-HBs, pCMV-HBc, pCMV-HBx),结果表明HBx蛋白可以显著增加IP-10的表达。IP-10启动子荧光素酶活性分析结果提示IP-10的启动子能被HBx蛋白呈剂量依赖性激活。 3.HBx诱导的IP-10表达上调是通过激活TRAF2/TAK1/NF-κB信号途径 为了探讨HBx诱导IP-10表达的机制,构建了一系列5’端缺失的IP-10启动子荧光素酶报告基因载体,并与HBx真核表达质粒pCMV-HBx共转染HepG2细胞。荧光素酶活性检测结果提示在IP-10启动子nt-190 to-96区域对HBx激活IP-10启动子起重要作用,进一步分析发现在这一区域有两个NF-κB结合位点(NF-κB1和NF-κB2)。NF-κB结合位点定点突变实验证实,IP-10启动子的NF-κB1结合位点对HBx诱导IP-10表达起作用。加入NF-κB的抑制剂SN50后,可抑制HBx诱导的IP-10表达。同时,NF-κB亚单位p65和p50的增加能够促进IP-10的表达。 为了探讨激活的NF-κB是否直接与IP-10启动子结合而实现对其调控,进一步进行了EMSA和CHIP实验。用生物素标记的IP-10启动子NF-κB1寡核苷酸探针检测结果显示,在转染了pCMV-HBx质粒的细胞核抽提物中NF-κB蛋白与DNA的结合增强;转染了pCMV-HBx质粒的细胞核抽提物,用anti-p50或anti-p65抗体进行免疫沉淀,沉淀物分离出的DNA能够扩增出177bp的IP-10启动子序列。以上结果显示,NF-κB能够与IP-10启动子上的NF-κB1结合位点直接结合。 为了进一步探讨HBx激活NF-κB的机制,western blot、启动子荧光素酶活性以及共聚焦显微镜术检测结果提示,在转染了HBx蛋白真核表达载体pCMV-HBx后,HepG2细胞中TAK1和IKKα的磷酸化水平增加。加入TAK1的抑制剂或转染TAK1的siRNA阻断TAK1的作用后,NF-κB和IP-10的启动子活性均被抑制。TRAF家族成员TRAF2阻断后也能阻碍NF-κB和IP-10的启动子活性。同时,在TAK1和TRAF2阻断后NF-κB亚单位p65的核转位被抑制。上述结果显示,HBx诱导的IP-10转录表达是通过激活TRAF2/TAK1/NF-κB信号通路而实现的。由此我们推测,HBx可能通过TLR信号传导,TAK1被激活,进而激活IKK,最终激活NF-κB。 4.HBx诱导IP-10表达上调增加外周血单个核细胞的趋化性 趋化实验结果表明,相比转染对照质粒,转染了HBx,NF-κB p50或NF-κBp65真核表达质粒的HepG2细胞上清液对外周血单个核细胞的趋化活性增加。加入抗IP-10的中和抗体后能减弱其对外周血单个核细胞的趋化。加入了NF-κB的抑制剂SN50后,能减弱转染HBx的细胞上清诱导外周血单个核细胞的趋化性。 [结论]本课题研究证明HBV阳性的肝癌组织中IP-10的mRNA和蛋白表达水平均显著高于HBV阴性肝癌组织以及肝血管瘤的正常肝脏组织,提示在HBV感染的肝脏组织中IP-10的表达可能在HBV诱导的肝脏炎症损伤中起着重要作用。在此基础上进一步通过转染了编码HBV不同蛋白基因的HepG2细胞模型,探讨了HBV诱导IP-10表达的机制,研究证明病毒蛋白HBx可诱导炎性趋化因子IP-10表达增加,其机制为病毒蛋白HBx通过激活TRAF2/TAK1/NF-κB信号通路,从而导致IP-10启动子的转录激活,IP-10的表达增加。由此推测,HBx诱导的IP-10等趋化因子的表达增加,趋化炎性细胞的浸润可能在导致肝脏免疫损伤中起重要作用。
【学位单位】:华中科技大学
【学位级别】:博士
【学位年份】:2010
【中图分类】:R512.62
【部分图文】: 为了证实在HBV感染的肝脏组织中IP一10的表达情况,本研究首先采用Real TimePCR和免疫组织化学方法分别检测了临床肝组织标本中IP一 10mRNA和蛋白质的表达水平,图1一IA结果可见在HBV感染的肝癌组织中IP一10mRNA的表达水平显著高于HBV阴性的肝癌组织以及HBV阴性的肝血管瘤患者正常肝脏组织的表达,三组患者肝组织IP一10蛋白表达的差异与mRNA的表达具有同样的趋势(图1一IB)。提示炎性趋化因子IP一10在HBV感染的肝脏组织中表达升高,其高表达可能在HBV感染引起的肝脏炎症损伤中起重要作用。嘛匀、屯梦索了一双︸讯1价少.︸‘一.、尸.户炸。.甘P《0.051:t::孟a’户.夕不“·’二、:‘’犷f‘介:之_、·、·行、、.,会冷了季、‘产_气心气‘今价.方.一一,‘?户f二、二.“飞、。‘’,令 01401e012010co8咖co4栩似。 ad0000000一目口,.一VN比OE叮几一口,一节一O比
细胞HepGZ中。转染48h后,通过real一 timePeR和RT一PCR方法检测转染细胞内各种相关细胞因子和趋化因子(IL一8,Ip一10,x一TAe,MeP一l,MIP一ra,MIP一lp,RANTES,CCLZO,IL一 18)mRNA的表达情况。图1一2结果可见,未转染基因的HePGZ细胞表达趋化因子CCLS/RANTES水平较高(图1一ZA),HBx转染入细胞后可直接诱导多种细胞因子或趋化因子的表达改变,在本实验所选取的几种细胞因子中,CXCL10/IP一10表达上调最为明显,其次是CCL20,有些趋化因子表达没有明显改变,部分细胞因子表达降低,如IL一18(图1一ZB
一HBx诱导IP一10的表达Figurel一3.HBxProteininducesIP-10exPression·
【相似文献】
相关期刊论文 前10条
1 于勤;郑晓群;方唯一;;心肌特异性hVEGF_(165)真核表达载体的构建及鉴定[J];中国临床医学;2006年02期
2 唐向辉;;体外制备RNA探针——一种极有希望的从质粒DNA合成单链RNA新技术[J];医学分子生物学杂志;1986年03期
3 逯好英;杜连英;马贤凯;;表达载体pMM15的构建[J];军事医学科学院院刊;1983年06期
4 吴斌华;陈秋生;谢朝阳;朱少平;;Bcl-x基因shRNA表达质粒的构建和鉴定[J];现代医药卫生;2010年15期
5 马绍辉,李琦涵;在结蛋白启动子/增强子控制下的HBsAg表达质粒DNA的有效接种[J];国外医学.预防.诊断.治疗用生物制品分册;2001年02期
6 茆达干,杨利国,曹少先;影响基因疫苗免疫效果的因素[J];中国免疫学杂志;2004年05期
7 胡新立,周迅蕾;Nodal基因5′末端侧翼序列启动子的分析[J];北京大学学报(自然科学版);2000年02期
8 陈春华,曹英林,胡维诚,赵丽;通过定点诱变构建带有突变的载脂蛋白CⅡ启动子的表达载体[J];癌变.畸变.突变;2003年01期
9 朱舟;陈华先;徐逸;张强;陈晨;王伟;;NSE启动子调控的pNSE-IRES2-EGFP-p27双顺反子真核表达载体的构建及表达分析[J];中国康复;2007年06期
10 刘亚男;邵月婷;赵丹;汲坤;李晓洁;邵晨;王波;张爽;李馨;李扬;赵雪俭;;共表达p53及siRNA-VEGF质粒的构建及其在PC-3细胞中的表达[J];中国实验诊断学;2010年03期
相关博士学位论文 前10条
1 姜安丽;人同源盒基因NKX3.1启动子的克隆及其调控区的鉴定[D];山东大学;2005年
2 周玉;HBV感染病人肝脏组织中IP-10的表达与HBx诱导其表达的分子机制研究[D];华中科技大学;2010年
3 祝秉东;人β-防御素-1基因表达与转录调控[D];四川大学;2004年
4 刘南南;水稻种胚LOX3基因及启动子的功能分析[D];南京农业大学;2006年
5 罗先润;Survivin启动子马区动CD/TK双自杀基因对胃癌的靶向治疗作用[D];郑州大学;2012年
6 汤绍辉;人肝癌胰岛素样生长因子Ⅱ基因启动子结构与功能研究[D];暨南大学;2004年
7 史巧娟;绿色荧光蛋白基因gfp在华癸中生根瘤菌与紫云英共生固氮体系研究中的应用[D];华中农业大学;2000年
8 徐顺霖;端粒酶逆转录酶基因在心肌中的表达及骨髓基质细胞培养液对心肌的保护机制研究[D];南京医科大学;2005年
9 邱亚峰;表达MDV gB CTL表位与鸡HSP108融合蛋白基因的重组CVI988病毒的构建及免疫保护试验[D];南京农业大学;2006年
10 梁小燕;抑癌基因LKB1调控细胞周期分子机制研究[D];重庆医科大学;2010年
相关硕士学位论文 前10条
1 张磊;乙型肝炎病毒通过转录因子YY1在肝癌细胞中上调HLJ1基因的表达[D];重庆医科大学;2011年
2 于文静;亚麻韧皮部特异启动子克隆与26份种质DNA指纹图谱构建[D];中国农业科学院;2010年
3 黄俊华;一种基于细胞内转录的猪瘟病毒快速拯救系统[D];中国农业科学院;2011年
4 崔磊;启动子低甲基化导致NGALR在食管癌中过表达[D];汕头大学;2008年
5 吴滨;人酰基辅酶A:胆固醇酰基转移酶-1基因P1启动子的TNF-α效应元件分析鉴定[D];华东师范大学;2004年
6 董流昕;转基因抗草甘膦大豆参比分子的构建[D];北京林业大学;2005年
7 曹鹏;人脑胶质原纤维酸性蛋白(GFAP)原核表达载体的构建及蛋白表达的鉴定[D];第二军医大学;2009年
8 胡伶俐;牛杀菌—通透性增加蛋白和防御素基因融合质粒的构建及其在大肠杆菌中表达[D];华中农业大学;2010年
9 佘其美;TNF-α、胰岛素和地塞米松对稳定表达人脂联素3T3-L1细胞PPAR-γ2mRNA表达的影响[D];安徽医科大学;2005年
10 牛牛;COX-2基因和肺癌相关性研究[D];北京市结核病胸部肿瘤研究所;2006年
本文编号:
2855284