当前位置:主页 > 医学论文 > 中药论文 >

川芎嗪对LPS诱导AKI小鼠肾内皮细胞糖层损伤的保护作用及其机制的研究

发布时间:2020-10-20 22:25
   [目的]急性肾损伤(AKI)是临床综合征中常见且复杂的疾病,肾功能的丧失主要是由于肾小球滤过迅速下降所致。肾小球滤毛细血管壁在阻止分子量较大的溶质从血管中渗出起重要作用,作为其组份之一内皮细胞被糖萼覆盖,糖萼是由蛋白多糖和可溶性生物大分子组成的一种带负电荷的类似渔网样结构,是肾小球壁高选择性通过的重要组份,HS作为糖萼的重要构成成分之一,其破坏或者降解将涉及毛细血管等微循环内皮细胞的形态和功能损伤。川芎嗪作为一种天然化合物,是从川芎中提取的活性生物碱,具有对抗体内炎症、抗癌、抗氧化、抗凋亡等药理作用。我们研究目的就是探讨脂多糖诱导AKI的机制,用川芎嗪预先处理后,通过肾脏组织病理学观察,尿蛋白、Scr、BUN、组织和细胞MDA、ROS、SOD等氧化指标检测及肾脏和内皮细胞HS荧光检测,研究TMP对LPS诱导AKI的作用机制,评价TMP对LPS诱导AKI预防和治疗的效果,为AKI的临床诊疗提供新的理论依据。[方法]体内实验:把成年健康的雄性C57BL/6小黑鼠随机分成5组:正常组(control组)、模型组(LPS 组 10mg/kg)、治疗组(LPS+TMP 组,50mg/kg、100mg/kg、200mg/kg),正常组与模型组给予生理盐水灌胃1周,治疗组分别给予TMP(50mg/kg、100mg/kg、200 mg/kg)灌胃1周,第7天灌胃1h以后腹腔注射LPS,24 h后留血清和肾保存备用。HE明确小鼠肾脏病理变化及病理学评分,用EB染色法测量肾毛细血管的渗透性,用相应试剂盒检测BUN、Scr及组织中SOD、MDA、ROS,免疫荧光检测肾组织中HS的含量。体外实验:把HUVEC分成 5 组为正常、模型(LPS,1 μg/mL)、治疗(TMP+LPS,100μM/ml,200μM/ml,300 μM/ml),用相应试剂盒检测细胞中SOD、MDA,免疫荧光检测细胞中ROS的含量,MMP的表达变化及细胞膜表面HS的含量。[结果]与正常组相比,模型组小鼠肾组织损伤明显严重,肾组织外渗的伊文思蓝量、BUN、Scr浓度明显上升,而治疗组中,尤其是中高剂量治疗组,有效减轻肾损伤程度,能显著降低肾组织外渗的伊文思蓝量、BUN、Scr浓度明显降低。同时,川芎嗪通过减少体内应激反应及保护线粒体膜电位等抑制LPS所导致的糖萼脱落或降解,最终达到保护内皮糖萼完整性的目的,保护了肾小球微血管内皮的完整性,进而缓解了 LPS诱导的AKI。[结论]川芎嗪通过保护线粒体膜电位,进而减少体内氧化应激反应等途径,进而抑制LPS所导致的内皮糖萼中主要成分HS的脱落或降解,最终达到保护内皮糖萼完整性的目的,从而保护肾小球滤过屏障功能的完整性,有助于减轻脂多糖诱导的急性肾损伤,表明川芎嗪保护内皮糖萼的完整性和有助于减轻LPS诱导的急性肾损伤,保护肾小球屏障的完整性可能是治疗LPS诱导的AKI的潜在候选药物。
【学位单位】:滨州医学院
【学位级别】:硕士
【学位年份】:2018
【中图分类】:R285.5
【部分图文】:

活力检测,细胞的


将PBS覆于组织上,3?min/次,弃去PBS,重复三次,将稀释好的DAPI均匀滴于载玻片的组织上,孵育8分钟,注意避光。??轻甩掉0八?1,将?85覆于组织上,3?111丨11/次,弃去?85,重复三次,然后封片,于奥林巴斯荧光光学显微镜下观察并拍摄。??细胞活力测定??TT法测定HUVEC的存活数量,将密度为4X?l〇5/ml的HUVEC加入37°C的培养箱中繁育,然后在加入不同浓度(5〇nM、100_、20〇nM400?mM)的TMP存在及空白孔(等体积生理盐水)孵育24小时,242〇nl的MTT(5?mg/ml),继续孵育4?h。弃去培养基,然后添加150?ul?D震荡器上轻轻摇晃10?niin,使孔内的晶体溶化完全。用酶标仪检测各果以百分比表示,未行任何处理组的活细胞数量为100%。如图1浓度达到400?pM时,将会出现细胞毒性。??

模型,血尿素氮,脂多糖,肌酐


Bun和Scr均会上升[6]。在使用LPS?(脂多糖)注入小鼠体内12h后建??立的AKI模型中,我们检测血尿素氮和血肌酐的浓度变化情况。我们的实验结果??表明(图2)?:?LPS组Bun和Scr的浓度与正常组相比明显增加,对于治疗组,尤??其是中、高剂量治疗Bun和Scr的含量明显低于模型组,同时也高于正常组,这??提示我们应用LPS成功诱导AK丨模型,同时也表明TMP能减轻LPS诱导的AKI。??60,?#?2.5,??tiiiliiliiii??Control?LPS?50?100?200?Control?LPS?50?100?200??LPS+TMP(mg/kg)?LPS+TMP(mg/kg)??图2?TMP对LPS诱导的AKI模型中BUN及Scr的含量变化影响。(#代表LPS组与Control??组对比,/5<0.0丨;**代表1^5+丁1^(10〇11^/^)组与1^3组对比,/5<0.0丨;***代表1^5+丁1^??(200?mg/kg)组与?LPS?组对比,尸?<?0.01)??Figure?2?Effect?of?TMP?on?BUN?and?Scr?contents?in?AKI?Mmodel?induced?by?LPS.?(#?Represent??comparison?between?LPS?and?Control,?P?<?0.01;?**?Represent?comparison?between?LPS+TMP?(100??mg/kg)?and?LPS

中肾,理变,肾小球,空泡形成


?滨州医学院硕士学位论文???2.川芎嗪能够缓解LPS诱导的肾脏病理变化??在光镜下观察可见(图3),与正常组相比,模型组肾脏组织病理损害明显,??如肾小球萎缩,里面结构不清晰,肾小球囊腔扩张、肾小管上皮细胞坏死、脱落、??空泡形成,间质水肿等改变,病理评分明显升高。而治疗组肾小球萎缩,肾小球??囊腔扩张不明显或减轻,肾小管上皮细胞坏死、空泡形成减少,间质水肿减轻,??病理评分明显低于模型组,而高于正常组。??
【相似文献】

相关期刊论文 前10条

1 姜牧君;陈育华;屈晓龙;葛波波;屈洪党;;LPS诱导慢性帕金森病小鼠模型的建立与评价[J];解剖学研究;2016年05期

2 刘音;刘硕;王文蝶;朱军;陈朱波;姜明红;;利用流式细胞术检测LPS刺激活化后小鼠腹腔巨噬细胞体积的变化[J];基础医学与临床;2014年06期

3 白鑫宇;杨晓峰;赵叶利;李盈;李建春;;金丝桃苷对内毒素(LPS)诱导的小鼠急性肾损伤的保护作用[J];沈阳药科大学学报;2014年10期

4 方慧;李霞;孙立娟;薛明胜;王翔宇;;羧甲基壳聚糖对LPS干预人牙周膜成纤维细胞表达IL-6的影响[J];临床口腔医学杂志;2013年11期

5 刘利本;平家奇;刘婧陶;张雪梅;;蒲公英提取物对LPS激活小鼠腹腔巨噬细胞炎症因子分泌的影响[J];动物医学进展;2011年02期

6 刘建强;;LPS诱导的炎症反应对脑动脉瘤形成和破裂引起出血的影响[J];医学理论与实践;2017年16期

7 高厚明;刘志承;石巧玲;冯四林;;厚朴酚改善LPS诱导的小鼠抑郁行为和大脑细胞因子的研究[J];中医药通报;2016年02期

8 方慧;李霞;孙立娟;;羧甲基壳聚糖对LPS干预人牙周膜成纤维细胞表达PGE2的影响[J];临床口腔医学杂志;2015年05期

9 王长文;马洪波;张铎;赵文秀;;茶多糖对LPS活化单核巨噬细胞内活性氧的影响[J];中国兽医杂志;2014年03期

10 喻良文;黄晓其;钟燕珠;;银翘散对LPS致急性肺损伤小鼠的保护作用[J];四川中医;2014年05期


相关博士学位论文 前10条

1 邱振宇;莫西沙星对LPS诱导小鼠腹腔巨噬细胞炎症反应的影响与机制研究[D];中国医科大学;2018年

2 王荣梅;LPS、日粮磷及维生素D水平对蛋鸡FGF23和磷转运体表达的影响[D];山东农业大学;2017年

3 刘伟;肾上腺髓质素对LPS抑制人脐静脉内皮细胞TFPI基因表达的影响及其分子机制[D];中国协和医科大学;2007年

4 赵素贤;原发性胆汁性肝硬化(PBC)临床病理特点及LPS在其发病中作用的研究[D];中国人民解放军军事医学科学院;2008年

5 伞治豪;蒲公英甾醇对LPS诱导的乳腺炎抗炎作用及调节机制研究[D];吉林大学;2014年

6 高源;大黄酸在LPS活化巨噬细胞中发挥抗炎与促炎双向作用的机制研究[D];北京协和医学院;2014年

7 陈玲;LPS刺激的奶牛乳腺上皮细胞转录组和miRNA表达谱变化规律的研究[D];西北农林科技大学;2016年

8 金鹏锋;益生菌对LPS诱导的小鼠肝损伤和炎症因子表达的影响作用及机制研究[D];浙江大学;2015年

9 邢金燕;辛伐他汀对LPS诱导内皮祖细胞功能的影响[D];山东大学;2011年

10 郭建红;多次小剂量LPS处理减轻慢性肝损伤的机制研究[D];山西医科大学;2010年


相关硕士学位论文 前10条

1 王芳;苦参碱联合黄芩苷对LPS诱导小鼠肺炎的影响[D];山西农业大学;2018年

2 祁思蕊;乳酸杆菌上清对LPS致敏小鼠肠道免疫调节效应和肝脏保护作用[D];浙江农林大学;2019年

3 李建奎;川芎嗪对LPS诱导AKI小鼠肾内皮细胞糖层损伤的保护作用及其机制的研究[D];滨州医学院;2018年

4 徐光彬;布鲁氏菌LPS对山羊子宫内膜上皮细胞内质网应激和炎症因子的影响[D];西北农林科技大学;2018年

5 王庆文;朊蛋白在LPS诱导的结肠炎症中的作用研究[D];华东师范大学;2018年

6 王特日格乐;沙葱总黄酮对LPS诱导的小鼠腹腔巨噬细胞抗炎作用的研究[D];内蒙古农业大学;2018年

7 韩秀瑞;羊种布鲁氏菌变异株细胞内存活能力及LPS遗传特征研究[D];中国疾病预防控制中心;2017年

8 周琰;孕期补充维生素D预防LPS诱发的小鼠流产[D];安徽医科大学;2017年

9 顾超;小分子化合物P7C3抑制MPTP和LPS诱导的多巴胺能神经元损伤的机制研究[D];苏州大学;2017年

10 陈岳言;LPS诱导细胞损伤对细胞表面唾液酸影响的初步研究[D];哈尔滨工业大学;2014年



本文编号:2849237

资料下载
论文发表

本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/zhongyaolw/2849237.html


Copyright(c)文论论文网All Rights Reserved | 网站地图 |

版权申明:资料由用户3ca7f***提供,本站仅收录摘要或目录,作者需要删除请E-mail邮箱bigeng88@qq.com