MyD88非依赖性途径在枸杞多糖影响T2DM小鼠炎症因子生成过程中的作用
发布时间：2020-12-07 11:02
目的:慢性炎症能够导致胰岛β细胞损伤,诱导胰岛素分泌降低,同时干扰胰岛素信号传导,诱导胰岛素抵抗的发生,在2型糖尿病（T2DM）的发生发展中具有重要作用。枸杞多糖（LBP）是枸杞提取物的主要活性成分之一。已有研究表明LBP除了具有降糖作用外,还可以降低T2DM患者体内的炎症因子水平,但是其抑炎降糖的作用机制还不清楚。本课题研究了My D88非依赖性途径（又称TRIF/TRAM途径）在LBP影响T2DM炎症因子生成过程中的作用,以探讨LBP抑炎降糖的机制。方法:利用水煮醇沉法获取LBP,并对其进行表征。采用高脂饲料喂养My D88-/-小鼠（40只）,链脲佐菌素（Streptozotocin,STZ）低剂量（80mg/kg）腹腔注射建立T2DM模型。将成模后的My D88-/-小鼠随机分为模型组、二甲双胍组（40mg/kg）以及低、中、高LBP组（20、40、80mg/kg）,进行为期3个月的干预。另取8只My D88-/-小鼠为正常对照组。干预过程中记录所有小鼠的体重和血糖的变化。干预结束后,ELISA法检测小鼠血清中白细胞介素1β（IL-1β）、IL-6、IL-8、肿瘤坏死因子ɑ（T...
【文章来源】：宁夏医科大学宁夏回族自治区
【文章页数】：65 页
【学位级别】：硕士
【部分图文】：
枸杞多糖提的提取分离流程图
文 第一章 材料与方法6图 1 枸杞多糖提的提取分离流程图2.2 苯酚-硫酸法测定总糖含量①标准储备液的配制：称取 105℃条件下干燥的 D-无水葡萄糖 0.1000g，置于 100mL 容量瓶中，加超纯水溶解并稀释至刻度线，摇匀使其完全溶解,待用。②样品溶液的配制：称取枸杞多糖（0.01g）放入 10mL 容量瓶用超纯水定容并摇匀，再取 1mL 母液定容至 10ml 摇匀，即得到供试样品溶液,待用。③5%苯酚溶液的配制：称取重蒸馏苯酚 5g，加适量超纯水溶解后，转移至 100mL 容量瓶中定容摇匀，置于棕色试剂瓶保存待用。④制作标准曲线：分别吸取葡萄糖标准储备液 0.2mL、0.3mL、0.4mL、0.5mL、0.6mL、0.7mL、0.8mL、0.9mL，加超纯水至 1mL
为特征峰的 3336.85cm处有一个明显的宽峰。在 2927.94cm处有一个强峰，此处H2的 C-H 伸缩振动区。这些都是多糖结构的特征吸收峰。另外，在 1637.56cm-1和.61cm-1范围内的峰可由 C=O（-NH2COHN3-）的变角振动引起。1247.94cm-1处特征双峰为酮的 C-O-C 结构的伸缩振动引起。1151.50cm-1处的尖峰是由 C-O（-COOH C-N 结构的伸缩振动引起的。1078.21cm-1处的尖峰由不对称吡喃糖 C-O-C 振动引1028.06cm-1处的吸收峰为糖苷环的特征吸收峰，表明 LBP 样品中存在吡喃糖基。 LBP 样品在 921.97cm-1处的峰，可以推测 LBP 中鼠李糖末端(-CH2-)在脱氧核苷糖位置。775.38cm-1处为吡喃环对称伸缩振动引起的特征峰。酪氨酸、苯丙氨酸和色氨酸是蛋白质中的常见成分。它们在各种蛋白质中含量相似最大吸收峰在 280nm 处，所以紫外吸收法也常用来进行蛋白质检测。采用紫外吸收测 LBP 样品在 200-550nm 范围内的吸收峰发现，在 280nm 处出现一个吸收峰(图说明获得的 LBP 样品为蛋白质多糖。
【参考文献】：
期刊论文
[1]枸杞多糖对免疫抑制小鼠血清中IL-6、IL-10和IL-12/IL23 p40分泌水平的影响[J]. 白学鹏,孙鹏,沈春秀,杨荣敏,王昀昕,王佩,李家兴,苏春霞. 动物医学进展. 2019(07)
[2]二甲双胍对2型糖尿病大鼠骨骼肌Toll样受体/髓样分化因子88信号通路的影响及机制[J]. 马芳菲,李婷,单梦婷,田晨光,吕晨燕,高迎. 医学研究生学报. 2018(08)
[3]三黄汤通过抑制脂肪组织间巨噬细胞浸润及炎症因子表达改善肥胖小鼠的胰岛素抵抗[J]. 赵娟,叶丽芳,梁舒,张颢,于希忠,尚文斌. 南京中医药大学学报. 2018(04)
[4]高脂低糖和高脂高糖饲料建立糖耐量受损大鼠模型[J]. 陈珊珊,梁芳芳,王泓午,窦昊颖. 中国老年学杂志. 2018(08)
[5]枸杞多糖对糖尿病性白内障大鼠晶状体上皮细胞热休克蛋白27表达及氧化应激产物的影响[J]. 刘求红,张梅珍,余杨桂,俞晓艺,刘红,程娟娟. 中国临床药理学杂志. 2018(07)
[6]MyD88非依赖性信号通路在枸杞多糖抑制糖尿病小鼠肿瘤坏死因子α中的作用[J]. 刘婷婷,王凌霄,杨晓辉,姚智卿,蔡慧珍. 浙江大学学报(医学版). 2018(01)
[7]二甲双胍在2型糖尿病中的临床应用[J]. 李融融,肖新华. 中国研究型医院. 2018(01)
[8]肿瘤坏死因子受体相关因子6在NF-κB炎症通路中的研究进展[J]. 张群燕,郭郡浩,蔡辉. 东南国防医药. 2017(04)
[9]枸杞多糖作用于2型糖尿病大鼠的血清代谢组学研究[J]. 唐华丽,夏惠,王锋,孙桂菊. 食品科学. 2017(13)
[10]RNA干扰技术沉默TRAF6对脂多糖诱导肾小管上皮细胞表型转化及炎症因子表达的影响[J]. 刘明龙,梁耀军,李侃,杨洋,马占军,吴蓉,王凤丽. 兰州大学学报(医学版). 2017(03)
博士论文
[1]MyD88在特定细胞型中对肥胖相关炎症疾病进展的作用[D]. 虞敏佳.浙江大学 2013
[2]糖尿病人群及高脂饮食肥胖小鼠的免疫代谢学研究[D]. 向宇飞.中南大学 2011
硕士论文
[1]2型糖尿病胰岛素抵抗与IL-6、IL-8、TNF-α及T细胞亚群变化的相关性研究[D]. 孙晓琳.青岛大学 2018
[2]枸杞多糖的分离提取及质量鉴定研究[D]. 符梦凡.浙江大学 2018
[3]2型糖尿病患者血浆TG和LDL水平对胰岛α及β细胞功能的影响[D]. 许军华.天津医科大学 2016
本文编号：2903135
【文章来源】：宁夏医科大学宁夏回族自治区
【文章页数】：65 页
【学位级别】：硕士
【部分图文】：
枸杞多糖提的提取分离流程图
文 第一章 材料与方法6图 1 枸杞多糖提的提取分离流程图2.2 苯酚-硫酸法测定总糖含量①标准储备液的配制：称取 105℃条件下干燥的 D-无水葡萄糖 0.1000g，置于 100mL 容量瓶中，加超纯水溶解并稀释至刻度线，摇匀使其完全溶解,待用。②样品溶液的配制：称取枸杞多糖（0.01g）放入 10mL 容量瓶用超纯水定容并摇匀，再取 1mL 母液定容至 10ml 摇匀，即得到供试样品溶液,待用。③5%苯酚溶液的配制：称取重蒸馏苯酚 5g，加适量超纯水溶解后，转移至 100mL 容量瓶中定容摇匀，置于棕色试剂瓶保存待用。④制作标准曲线：分别吸取葡萄糖标准储备液 0.2mL、0.3mL、0.4mL、0.5mL、0.6mL、0.7mL、0.8mL、0.9mL，加超纯水至 1mL
为特征峰的 3336.85cm处有一个明显的宽峰。在 2927.94cm处有一个强峰，此处H2的 C-H 伸缩振动区。这些都是多糖结构的特征吸收峰。另外，在 1637.56cm-1和.61cm-1范围内的峰可由 C=O（-NH2COHN3-）的变角振动引起。1247.94cm-1处特征双峰为酮的 C-O-C 结构的伸缩振动引起。1151.50cm-1处的尖峰是由 C-O（-COOH C-N 结构的伸缩振动引起的。1078.21cm-1处的尖峰由不对称吡喃糖 C-O-C 振动引1028.06cm-1处的吸收峰为糖苷环的特征吸收峰，表明 LBP 样品中存在吡喃糖基。 LBP 样品在 921.97cm-1处的峰，可以推测 LBP 中鼠李糖末端(-CH2-)在脱氧核苷糖位置。775.38cm-1处为吡喃环对称伸缩振动引起的特征峰。酪氨酸、苯丙氨酸和色氨酸是蛋白质中的常见成分。它们在各种蛋白质中含量相似最大吸收峰在 280nm 处，所以紫外吸收法也常用来进行蛋白质检测。采用紫外吸收测 LBP 样品在 200-550nm 范围内的吸收峰发现，在 280nm 处出现一个吸收峰(图说明获得的 LBP 样品为蛋白质多糖。
【参考文献】：
期刊论文
[1]枸杞多糖对免疫抑制小鼠血清中IL-6、IL-10和IL-12/IL23 p40分泌水平的影响[J]. 白学鹏,孙鹏,沈春秀,杨荣敏,王昀昕,王佩,李家兴,苏春霞. 动物医学进展. 2019(07)
[2]二甲双胍对2型糖尿病大鼠骨骼肌Toll样受体/髓样分化因子88信号通路的影响及机制[J]. 马芳菲,李婷,单梦婷,田晨光,吕晨燕,高迎. 医学研究生学报. 2018(08)
[3]三黄汤通过抑制脂肪组织间巨噬细胞浸润及炎症因子表达改善肥胖小鼠的胰岛素抵抗[J]. 赵娟,叶丽芳,梁舒,张颢,于希忠,尚文斌. 南京中医药大学学报. 2018(04)
[4]高脂低糖和高脂高糖饲料建立糖耐量受损大鼠模型[J]. 陈珊珊,梁芳芳,王泓午,窦昊颖. 中国老年学杂志. 2018(08)
[5]枸杞多糖对糖尿病性白内障大鼠晶状体上皮细胞热休克蛋白27表达及氧化应激产物的影响[J]. 刘求红,张梅珍,余杨桂,俞晓艺,刘红,程娟娟. 中国临床药理学杂志. 2018(07)
[6]MyD88非依赖性信号通路在枸杞多糖抑制糖尿病小鼠肿瘤坏死因子α中的作用[J]. 刘婷婷,王凌霄,杨晓辉,姚智卿,蔡慧珍. 浙江大学学报(医学版). 2018(01)
[7]二甲双胍在2型糖尿病中的临床应用[J]. 李融融,肖新华. 中国研究型医院. 2018(01)
[8]肿瘤坏死因子受体相关因子6在NF-κB炎症通路中的研究进展[J]. 张群燕,郭郡浩,蔡辉. 东南国防医药. 2017(04)
[9]枸杞多糖作用于2型糖尿病大鼠的血清代谢组学研究[J]. 唐华丽,夏惠,王锋,孙桂菊. 食品科学. 2017(13)
[10]RNA干扰技术沉默TRAF6对脂多糖诱导肾小管上皮细胞表型转化及炎症因子表达的影响[J]. 刘明龙,梁耀军,李侃,杨洋,马占军,吴蓉,王凤丽. 兰州大学学报(医学版). 2017(03)
博士论文
[1]MyD88在特定细胞型中对肥胖相关炎症疾病进展的作用[D]. 虞敏佳.浙江大学 2013
[2]糖尿病人群及高脂饮食肥胖小鼠的免疫代谢学研究[D]. 向宇飞.中南大学 2011
硕士论文
[1]2型糖尿病胰岛素抵抗与IL-6、IL-8、TNF-α及T细胞亚群变化的相关性研究[D]. 孙晓琳.青岛大学 2018
[2]枸杞多糖的分离提取及质量鉴定研究[D]. 符梦凡.浙江大学 2018
[3]2型糖尿病患者血浆TG和LDL水平对胰岛α及β细胞功能的影响[D]. 许军华.天津医科大学 2016
本文编号：2903135
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