基于皮肤外燥模型小鼠的“干燥”皮肤综合评价及银耳多糖的干预研究
发布时间:2021-11-10 07:39
目的探究银耳多糖提取的新工艺,获取湿法破壁辅助超声波法的最佳提取条件;制备皮肤外燥模型小鼠,对模型小鼠皮肤进行干燥综合评价及银耳多糖干预下的功效评价;探究银耳多糖干预皮肤外燥模型小鼠的作用机制。方法1.湿法破壁辅助超声波法与传统提取方法相比较,通过测定浸膏得率、多糖含量和提取率论证新工艺的高效性;进一步利用正交实验确定新工艺的最佳提取条件;2.利用人工气候箱内按“温度-湿度-风”综合条件(温度22±2℃,相对湿度33±2%,风速2.5m/s,风处理时间5h/d)建立皮肤外燥小鼠模型,对小鼠进行皮肤干燥综合评价;采用内服灌胃、外涂银耳多糖两种方式,观察对小鼠皮肤表观特征、含水量、组织结构的影响;3.采用HE染色、ELISA法、免疫组化法分别观测银耳多糖对各组小鼠皮肤与肺部组织结构、透明质酸(Hyaluronic acid,HA)含量以及水通道蛋白3(Aquaporin3,AQP3)表达量的影响。结果1.湿法破壁辅助超声波法与其他提取方法相比,可显著提高银耳浸膏得率、多糖含量和提取率(P<0.05)。湿法破壁辅助超声波提取银耳多糖的最佳条件为:破壁时间8min,提取温度50℃,液料比...
【文章来源】:南方医科大学广东省
【文章页数】:74 页
【学位级别】:硕士
【部分图文】:
图1.2葡萄糖标准曲线??Fig.?1.2?Standard?curve?of?glucose??
经皮模型组肺部出现肺泡间隔增宽,甚至出现淤血和水肿等表现,其余各??组少见;与经皮模型组相比,各给药组肺部病理结果得到缓解,部分小鼠肺泡??间隔可恢复至正常,减少肺部淤血的严重程度,详见(图3.2F,G,H,I)。??■■at??图3.1给药后各组小鼠背部皮肤组织病理学变化(此图与第二章结果部分相同)??Fig.3.1?Histopathological?changes?in?the?back?skin?of?mice?in?each?group?after??administration?(The?figure?is?identical?to?the?results?section?in?Chapter?2)??A-口服空白组;B-口服模型组;C-口服银耳多糖高剂量组;D-口服银耳多糖??中剂量组;E-口服银耳多糖低剂量组;F-外用空白组;G-外用模型组;H-外用银耳??多糖组;I-外用阳性对照组.??A:?Oral?blank?group;?B:?Oral?model?group;?C:Oral?administration?of?high-dose??Tremella?polysaccharides?group(40
本文编号:3486855
【文章来源】:南方医科大学广东省
【文章页数】:74 页
【学位级别】:硕士
【部分图文】:
图1.2葡萄糖标准曲线??Fig.?1.2?Standard?curve?of?glucose??
经皮模型组肺部出现肺泡间隔增宽,甚至出现淤血和水肿等表现,其余各??组少见;与经皮模型组相比,各给药组肺部病理结果得到缓解,部分小鼠肺泡??间隔可恢复至正常,减少肺部淤血的严重程度,详见(图3.2F,G,H,I)。??■■at??图3.1给药后各组小鼠背部皮肤组织病理学变化(此图与第二章结果部分相同)??Fig.3.1?Histopathological?changes?in?the?back?skin?of?mice?in?each?group?after??administration?(The?figure?is?identical?to?the?results?section?in?Chapter?2)??A-口服空白组;B-口服模型组;C-口服银耳多糖高剂量组;D-口服银耳多糖??中剂量组;E-口服银耳多糖低剂量组;F-外用空白组;G-外用模型组;H-外用银耳??多糖组;I-外用阳性对照组.??A:?Oral?blank?group;?B:?Oral?model?group;?C:Oral?administration?of?high-dose??Tremella?polysaccharides?group(40
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