FHL2参与调节KLF8促进结直肠癌侵袭转移机制的研究
本文关键词:FHL2参与调节KLF8促进结直肠癌侵袭转移机制的研究
【摘要】:目的和意义FHL2(Four and a halfLIM Protein 2)为确定的癌基因,在胃肠道肿瘤的发生发展过程中起着重要的作用。最近已有研究报道了FHL2下游的转录调控,但其上游的相关调控报道甚微。结合文献,我们通过软件筛选出转录因子KLF8 (Kruppel-like factor 8)为FHL2可能的调控因子。Kruppel-like factor 8(KLF8)是作为K ruppel样Cys2/His2锌指转录因子蛋白质家族的一个转录抑制蛋白而被识别的,通过与辅抑制子碳端结合蛋白(CtBP)相联系抑制基因表达。最近有研究表明KLF8在卵巢癌、肾癌以及乳腺癌中表达是升高的,但是在肠癌组织细胞中的表达及其与肠癌发生、侵袭转移尚无相关报道。同时本课题旨在明确KLF8与FHL2上游启动子序列的转录调控关系,从而寻找能靶向调控FHL2表达的元件,以期应用于肿瘤的生物靶向治疗。材料和方法主要材料Lovo、SW480、SW1116、Caco2、SW620.HT29和DLD1细胞,rTGF-β1、TGF-β1中和抗体、双荧光素酶报告基因检测试剂盒、CHIP试剂盒、突变试剂盒、KLF8抗兔多克隆抗体、FHL2抗鼠多克隆抗体、罗丹明标记鬼笔环肽。主要方法1.KLF8对肠癌EMT及侵袭转移的影响1.1 KLF8过表达稳定株的构建及KLF8对肠癌EMT的影响转染pcDNA3.1-KLF8和对照pcDNA3.1质粒到Lovo细胞,48小时后用含有600μg/mlG418的培养基继续培养2周,挑选单克隆细胞,并用800μg/ml G418培养基继续培养,建立单克隆稳定表达株,western blot验证稳定克隆细胞中KLF8的表达情况。western blot检测转染pcDNA3.1-KLF8和对照pcDNA3.1质粒细胞中的E-cadheri、Vimentin及N-cadhenrin的表达情况。1.2 KLF8对肠癌细胞侵袭转移的影响接种适当密度转染pcDNA3.1-KLF8和对照pcDNA3.1质粒细胞至6孔板中,待融合度近100%时,用移液器枪头进行划痕,镜下记录划痕区相对距离,继续培养,分别于12和24小时再次拍照记录,评估肠癌细胞的转移能力;种转染pcDNA3.1-KLF8和对照pcDNA3.1质粒的单细胞悬液(5×105/室)至Matrigel侵袭小室,室内为无血清培养基,室外为10%胎牛血清培养基,常规培养24小时,0.2%结晶紫染色,显微镜下计数发生侵袭的细胞数量,评价高表达KLF8对细胞侵袭能力的影响。1.3 rTGF-β1对KLF8及EMT的影响western blot检测不同浓度(0、0.5、1.0、2.0ng/ml) rTGF-β1处理Lovo细胞后蛋白中KLF8、E-cadherin 和vimentin的表达。用含有2μg/ml TGF-β1的中和抗体及对照正常鼠IgG抗体(normal mouse IgG, mIgG)的培养基孵育SW480细胞过夜,第二天分别加或不加rTGF-β1 (2ng/ml)刺激,继续孵育48小时,western b lot方法检测KLF8、E-cadherin和vimentin的表达。转染KLF8-siRNA和对照Scr-siRNA入Lovo细胞,24小时后加或不加rTGF-β1,继续孵育48小时,western blot检测KLF8、E-cadherin和vimentin的表达。2.KLF8和FHL2在原发性肠癌、转移癌组织及细胞内的表达情况2.1 KLF8和FHL2在原发性肠癌及转移癌组织中的表达收集15对以上来自同一肠癌病人的原发与转移癌(淋巴结或肝转移)手术标本,在连续切片中分别应用KLF8和FHL2抗体进行免疫组织化学染色。2.2 KLF8和FHL2在肠癌细胞内的表达提取Lovo, SW1116, SW620, HT-29, DLD1, CaCo2, SW480的细胞蛋白,用western blotti ng技术检测不同肠癌细胞中KLF8和FHL2的表达水平,并间接免疫荧光染色方法检测KLF8与FHL2两蛋白的细胞内亚分布。3.KLF8与FGL2的关系3.1 FHL2启动子区域内KLF8的结合位点通过使用生物信息学软件预测FHL2启动子区域内的KLF8结合位点,为了获得更多KLF8与FHL2启动子结合的证据,我们利用染色质免疫共沉淀(CHIP)的方法,探索FHL2启动子区域内KLF8的结合位点。3.2双荧光素酶检测FHL2启动子区域内KLF8结合位点的活性根据FHL2启动子(500bp)内KLFs的位置设计三对引物,扩增FHL2基因5’端上游启动子序列,分别插入到pGL3-Basic载体,构建质粒pluc55、pluc201和pluc498,瞬时转染入不同KLF8表达状态的肠癌细胞,进行双荧光素检测。3.3定点突变重组质粒并检测其活性变化按照突变试剂盒设计突变引物,以pluc-55为模板进行扩增得到KLF8结合位点突变的产物,产物用DpnI酶切可将未突变的模板质粒清除,然后转化入Epicurian coli XL 1-blue感受态细胞扩增,再将突变质粒测序鉴定后命名为plucMT。将突变质粒转染入细胞内48小时后收集细胞进行双荧光素酶报告基因检测。4.下调FHL2对KLF8诱导的结直肠癌EMT的影响及其对KLF8诱导的结直肠癌增殖、侵袭转移能力的影响4.1 FHL2低表达对KLF8诱导的EMT的影响在KLF8过表达稳定株(Lovo-pcDNA3.1/Lovo-pcDNA3.1-KLF8)中,瞬时转染Scr-RNA或FHL2-siRNA,48小时后,vestern blot检测FHL2、E-cadherin、 Vimentin、N-cadherin表达;另外用免疫荧光染色实验观察E-cadherin和 Vimentin在Lovo-KLF8-src-siRNA和SW480-KLF8-FHL2-siRNA两个细胞中分布的变化。4.2 FHL2低表达对KLF8诱导的结直肠癌细胞增殖、侵袭和转移能力的影响(1)WST-1实验验证FHL2对KLF8调节的结直肠癌细胞增殖的影响在过表达KLF8稳定株(Lovo-pcDNA3.1-KLF8)中,瞬时转染FHL2-siRNA或Scr-RNA,分别种植0、24、48、72小时后的单细胞悬液于96孔板中,继续培养24小时,向每孔中加入10μl WST-1溶液,4小时后测定450nm处的吸光度。(2)压低FHL2表达对KLF8诱导的肠癌细胞侵袭和转移能力的影响取适当密度KLF8过表达稳定株(Lovo-pcDNA3.1/Lovo-pcDN A3.1-KLF8)瞬时转染Scr-RNA或FHL 2-siRNA后的单细胞悬液铺板于六孔板中,待细胞长满后,用移液器枪头划痕,分别于划痕后0h、12h、24h显微镜下拍照,记录划痕情况;种KLF8过表达稳定株(Lovo-pcDNA3.1/Lovo-pcDNA3.1-KLF8)瞬时转染Scr-RNA或FHL2-siRNA后的单细胞悬液(5×105/室)至Matrigel侵袭小室,室内为无血清培养基,室外为10%胎牛血清培养基,常规培养24小时,0.2%结晶紫染色,显微镜下计数发生侵袭的细胞数量,评价压低FHL2对KLF8诱导的侵袭能力的影响。(3)FHL2siRNA对过表达KLF8引起的肠癌细胞形态的影响显微镜白光下观察过表达KLF8稳定株瞬时转染FHL2-siRNA或Scr-RNA48小时后细胞形态;盖玻片上培养过表达KLF8稳定株瞬时转染FHL2-siRNA或Scr-RNA后的细胞,48小时后取出,并进行罗丹明鬼笔环肽染色,经过PBS洗涤后,于荧光显微镜下观察细胞形态。5.压低FHL2表达对KLF8诱导的体内侵袭转移作用的影响5.1皮下肿瘤模型的建立给5-6周龄大小的BALB/c雌性裸鼠皮下分别注射转染pcDNA3.1、 pcDNA3.1-KLF8-FHL2 siRNA的细胞,35天后处死,对比三组皮下肿瘤大小;肿瘤连续切片免疫组化验证Ki-67和CD105的表达情况。5.2脾被膜下肝转移模型的建立给5-6周龄大小的BALB/c雌性裸鼠脾被膜下分别注射转染pcDNA3.1. pcDNA3.1-KLF8.pcDNA3.1-KLF8-FHL2siRNA的细胞,3周后处死,观察体内肝脏转移瘤大小;并用qRT-PCR验证三组肝肿瘤内E-cadherin的表达。6.数据的统计学处理IHC每张切片随机选取3-5个不同视野,计算目的蛋白阳性细胞表达率,并进行两个样本的配对t检验;双荧光素酶报告基因检测、PCR、细胞粘附、侵袭、转移和westrnm blotting灰度值分析结果用三次实验结果先进行方差齐性检验,方差齐(P0.05)则进行两个处理组间独立样本t检验或多个处理组间one way ANOVA统计分析,整体比较有显著性差异后多重比较采用LSD法;方差不齐(P0.05)则应用S atterthwaite近似t检验或Welch检验分析,整体比较有显著性差异后多重比较采用Duunett's T3检验。应用SPSS13.0软件进行统计学分析,所有数据采用均数+-标准差表示,p0.05具有显著性差异。结果1.KLF8促进肠癌EMT及侵袭转移1.1过表达KLF8对肠癌细胞EMT的作用通过western blot证实KLF8与E-cadherin血呈负相关关系,与V imentin、 N.cadherin呈正相关关系。1.2 KLF8对肠癌细胞侵袭转移的作用划痕和侵袭实验表明KLF8表达水平与肠癌细胞的侵袭转移能力呈正相关。1.3 rTGF-β1对KLF8及EMT的影响肠癌细胞内KLF8的表达对rTGF-β1存在剂量依赖性,浓度越高的rTGF-β1导致KLF8的表达增高,并且降低E-cadherin而增加Vimentin的表达水平;内外源性rTGF-β1引起的KLF8表达均可以受到TGF-β1中和抗体的抑制;KLF8siRNA阻断了rTGF-β1引起的Vmehtin的表达,而增加E-cadherin表达。2.KLF8与FHL2在肠癌组织和细胞中的表达关系2.1 KLF8与FHL2在原发性肠癌及转移癌组织中的表达免疫组化实验证实KLF8与FHL2在肠癌组织中表达水平均显著高于邻近正常肠组织,且同位点胞浆和胞核内均有表达,通过Spearman分析得出二者表达呈正相关;二者在转移癌中的表达均呈阳性表达。2.2 KLF8与FHL2在肠癌细胞内同向表达并具有相关性Western blot证实,KLF8在肠癌细胞SW480、SW1116、Caco2和SW620均呈高表达,而在HT29、DLD1和Lovo细胞内呈较低表达。FHL2在上述肠癌细胞内的表达趋势与KLF8一致,除SW480外。并且间接免疫荧光实验显示KLF8与FHL2的表达位于Lovo的胞核和胞浆内。3.FHL2是KLF8转录活性的直接目标3.1 FHL2启动子区域存在KLF8结合位点生物信息学分析发现:在FHL2启动子500bp内存在3个GT盒子:分别位于-50-55bp(GT盒子1),-192--201bp(GT盒子2)和-493--498bp(GT盒子3)。CHIP结果发现:加了KLF8抗体组内GT盒子1处有条带出现,加了对照抗体IgG和未加KLF8抗体处均未见条带出现。3.2双荧光素酶基因报告实验证明KLF8与GT盒子1结合将FHL2启动子区域内的三个GT盒子接入pGL3-Basic载体中,构建重组质粒转染入Lovo-pcDNA3.1、Lovo-pcDNA3.1-KLF8中进行双荧光素酶检测,结果显示:转染含有GT盒子1质粒的高表达KLF8细胞组活性明显高于对照组,转染含GT盒子2和GT盒子3质粒的高表达KLF8细胞组与对照组细胞无明细差异。3.3定点突变重组质粒对FHL2启动子活性的影响按照定点突变试剂盒突变设计突变引物,以重组质粒pLuc-55为模板,构建突变质粒pluc-MT,将野生型和突变型质粒分别转入不同KLF8表达状态的肠癌细胞进行双荧光素酶检测,显示:转染野生型质粒的高表达KLF8细胞组活性明显高于对照组,而转染突变型质粒的高表达KLF8细胞组与对照组无明细差异。4. FHL2siRNA抑制KLF8诱导肠癌细胞的EMT和肠癌细胞增殖、侵袭转移能力,并影响KLF8诱导肠癌细胞形态的变化4.1 FHL2siRNA抑制KLF8诱导肠癌细胞的EMTWestern blot证实:在KLF8过表达稳定株中转染FHL2-siRNA可促进E-cadherin的表达,并且抑制Vimentin和N-cadherin的表达。免疫荧光实验结果同样证实:在KLF8稳定表达株中压低FHL2可促进E-cadherin的表达,抑制Vimentin的表达。4.2 FHL2siRNA抑制KLF8诱导的结直肠癌细胞增殖、侵袭和转移能力增殖试验提示转染FHL2-siRNA的KLF8过表达稳定株的OD450s明显低于转染Scr-RNA的KLF8过表达稳定表达株。对比0h、12h、24h的划痕实验结果,敲低KLF8过表达稳定株中FHL2的表达引起肠癌细胞迁移速度的降低;Transwell试验显示KLF8过表达稳定株转染FHL2-siRNA后的细胞侵袭率明显低于KLF8过表达稳定株。4.3 FHL2低表达对KLF8引起的肠癌细胞形态变化的影响KLF8过表达稳定株细胞呈现出一种细长如成纤维细胞的形态,而对照细胞及转染FHL2-siRNA的KLF8稳定表达株均呈现出圆的和平坦的细胞形态。罗丹明结果显示:过表达KLF8稳定细胞边缘地带突出,而且丝状伪足和板状伪足是细胞膜表面的动态特征,与癌细胞侵袭和转移有关,而转染FHL2-siRNA的KLF8稳定表达株细胞边缘未伸出伪足。5.FHL2低表达对体内KLF8诱导的侵袭转移作用的阻断5.1 FHL2低表达减小KLF8诱导的裸鼠皮下肿瘤大小裸鼠皮下成瘤,对比三组皮下肿瘤大小,转染pcDNA3.1-KLF8细胞组的肿瘤明显大于转染p cDNA3.1及在KLF8高表达FHL2低表达稳定株的细胞组肿瘤;另外肿瘤切片免疫组化结果证实:在注射KLF8过表达稳定株组中,Ki-67和CD105的表达明显高于另外两组。5.2 FHL2低表达抑制KLF8诱导的体内转移脾被膜下注射三组细胞23天后处死,观察结果提示:注射KLF8过表达稳定株组的肝脏转移瘤比另外两组较大;qRT-PCR证实:KLF8过表达稳定株内E.cadherin的mRNA表达水平较对照组及KLF8过表达而FHL2低表达稳定株低。结论1.KLF8促进肠癌的EMT及侵袭转移活性;2.FHL2和KLF8在肠癌及转移瘤组织细胞中的表达呈正相关;3.CHIP实验、双荧光素酶、基因突变实验相互印证在FHL2启动子区域55bp处存在KLF8结合位点;4.FHL2siRNA抑制KLF8诱导肠癌EMT和肠癌细胞增殖、侵袭转移能力,并改变其诱导的细胞形态变化;5.体内实验再次印证FHL2参与调节KLF8诱导的EMT和侵袭转移。FHL2为癌基因,KLF8是正向调节肠癌的发生、发展及侵袭转移的转录因子,FHL2和KLF8的相互作用,在大肠癌EMT及侵袭转移中具有重要作用。KLF8 promotes tumorigenesis, invasion and metastasis of colorectal cancer cells by transcriptional activation of FHL2
【关键词】:KLF8 FHL2 结直肠癌 EMT
【学位授予单位】:南方医科大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2015
【分类号】:R735.34
【目录】:
- 摘要3-11
- ABSTRACT11-23
- 前言23-26
- 一、实验材料26-32
- 二、实验方法32-50
- 三、结果50-67
- 四、讨论67-74
- 五、全文小结74-75
- 六、参考文献75-82
- 中英文缩略词对照表82-84
- 在读期间撰写论文情况84-85
- 致谢85-86
【相似文献】
中国期刊全文数据库 前10条
1 刘光明,,姜若兰;人类结(直)肠癌细胞膜上表皮生长因子受体的研究[J];中华肿瘤杂志;1995年02期
2 王志华;康熙雄;张智清;申宝忠;李莹;;肠癌细胞BAI1基因表达的检测及其抗肿瘤作用[J];世界华人消化杂志;2003年06期
3 曾庆华 ,汤辉焕;羟基喜树碱对肠癌细胞体外作用的研究[J];中国现代医学杂志;2002年06期
4 王志华,张智清,申宝忠,李莹;BAI1基因在肠癌细胞的表达及抗血管生成作用[J];实用肿瘤学杂志;2003年01期
5 钱丽娟;许沈华;张宗显;;鳖甲浸出液对直肠癌细胞HR—8348抑制作用的超微结构观察[J];浙江肿瘤;1993年01期
6 钱丽娟;许沈华;张宗显;;鳖甲浸出液对直肠癌细胞HR—8348抑制作用的超微结构观察[J];浙江肿瘤;1993年03期
7 薛英威,耿敬姝,刘晓民,刘立人,高小敏,陈国林,赵家宏;直肠癌细胞的流式细胞仪分析及临床意义[J];中国病理生理杂志;2000年07期
8 滕理送,郑树,曹江,蔡心涵,吴金民;野生型p53基因重组质粒的构建及其对人肠癌细胞的抑瘤效应[J];中国肿瘤生物治疗杂志;1995年01期
9 戴德林;人类肠癌细胞内染色体早熟浓集[J];国外医学(肿瘤学分册);1981年06期
10 肖慧杰;李博;申震;谢忠士;刘铜军;;2-脱氧葡萄糖对直肠癌细胞葡萄糖代谢的影响[J];中国老年学杂志;2013年03期
中国重要会议论文全文数据库 前4条
1 薛英威;耿敬姝;刘晓民;刘立人;高小敏;陈国林;赵家宏;;直肠癌细胞的流式分析及临床意义[A];第六次全国大肠癌会议暨中日韩大肠癌会议论文汇编[C];1998年
2 王继德;白杨;姜泊;张亚历;王振宇;;全反式维甲酸通过启动子区域的干扰素调控因子1元件诱导肠癌细胞中的XAF1表达[A];中华医学会第七次全国消化病学术会议论文汇编(下册)[C];2007年
3 叶景佳;陈月兰;曹江;;HAI-1过表达对肠癌细胞SW620在体内生长能力的影响[A];第九届全国肿瘤生物治疗学术会议论文集[C];2006年
4 章斌;;用~(18)F-FDG细胞结合实验早期评价热化疗对肠癌细胞HCT-116的杀伤效应[A];中华医学会第九次全国核医学学术会议论文摘要汇编[C];2011年
中国重要报纸全文数据库 前1条
1 衣晓峰 孙理;研究显示 端粒酶可作为胃肠肿瘤诊断标志物[N];中国医药报;2010年
中国博士学位论文全文数据库 前1条
1 汤玮玮;Carfilzomib抑制肠癌细胞生长及增加CPT-11化疗敏感性的机制探讨[D];福建医科大学;2014年
中国硕士学位论文全文数据库 前9条
1 方兴保;中期因子诱导肠癌细胞上皮间质转化促进化疗耐药机制及其临床意义的研究[D];昆明医科大学;2013年
2 黄建栋;自然杀伤细胞联合西妥昔单抗对肠癌细胞体外作用的研究[D];福建医科大学;2012年
3 陈丽妹;Grb2抑制对肠癌细胞HT29肿瘤相关信号转导的影响[D];福建医科大学;2012年
4 王辉;B7-H4分子在肠癌细胞和间质浸润淋巴细胞表达的临床意义和作用研究[D];苏州大学;2012年
5 严清青;FHL2参与调节KLF8促进结直肠癌侵袭转移机制的研究[D];南方医科大学;2015年
6 叶景佳;HAI-1过表达对肠癌细胞SW620生长和运动能力的影响[D];浙江大学;2005年
7 韩娜;抑制PAR4表达对肠癌细胞SW620恶性表型的影响[D];浙江大学;2011年
8 朱成英;重组腺相关病毒携带CEA感染DC诱导CTL抗lovo直肠癌细胞活性的研究[D];山西医科大学;2012年
9 魏家臣;人Fas/FasL基因克隆及转染联合顺铂对直肠癌细胞杀伤作用的研究[D];第三军医大学;2003年
本文编号:1028158
本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/zlx/1028158.html