HBx基因转染SUDHL-4细胞对其生长侵袭的影响
本文关键词:HBx基因转染SUDHL-4细胞对其生长侵袭的影响
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【摘要】:背景和目的:恶性淋巴瘤(malignant lymphoma,ML)是淋巴造血系统的肿瘤,按照病理类型分为霍奇金淋巴瘤(Hodgkin disease,HL)和非霍奇金淋巴瘤(non-Hodgkin lymphoma,NHL)。在中国,每年新发恶性肿瘤中淋巴瘤约占4%,是九种常见肿瘤中的一种,其在肿瘤导致的死亡排名中居列第十位,其中又以非霍奇金淋巴瘤为主,占ML的85%~90%。弥漫性大B细胞淋巴瘤(Diffuse large B-cell lymphoma,DLBCL)在组织学形态、遗传学特征、免疫表型及临床表现上都存在着高度的异质性,是NHL中最为常见的一类组织学亚型。临床上发现许多恶性淋巴瘤患者伴有乙型肝炎病毒的感染,两者的关系日益受到相关研究人员的关注。大量临床的研究数据也进一步表明NHL患者乙型肝炎病毒(HBV)感染率明显高于普通人群及其他相关性实体肿瘤的患者,恶性淋巴瘤合并HBV的感染率仅次于肝癌;同时HBV的再激活在NHL合并HBV感染患者的治疗中表现显著,这些研究和发现充分表明HBV病毒感染与淋巴瘤的发生发展存在着一定的相关性。乙型肝炎病毒(HBV)具有S、C、P以及X区4个重叠开放读码框架(ORF),HBV的X基因作为其中最小的ORF,能够编码145个氨基酸组成的蛋白,即HBx。HBx可通过多种不同的作用诱导肝细胞癌(HCC)的形成,并促其发展,其中抑制肝细胞发生凋亡在HBV导致HCC发生的过程中起到巨大的作用。然而,目前的研究和相关报道尚不能解释HBV感染在NHL的发生和进展中的作用及具体机制。因此本实验选用人弥漫性大B细胞淋巴瘤(DLBCL)细胞株SUDHL-4作为研究对象,采用脂质体转染的方法,将HBx基因转入SUDHL-4细胞株中,建立带有乙肝病毒的淋巴瘤细胞模型,研究HBx对B-NHL细胞生长侵袭转移的影响并探讨其可能的作用机制,为筛选有效的治疗药物开辟新的途径,为淋巴瘤合并HBV感染的治疗提供更多有力的理论依据。方法:1、利用分子克隆的方法构建HBx基因的真核载体pcDNA3.1-X。2、将pcDNA3.1-X通过脂质体瞬时转染转入B-NHL细胞SUDHL-4中,构建整合有HBV X基因的淋巴瘤细胞株SUDHL-4-HBx,以SUDHL-4及转染空载体的B-NHL细胞SUDHL-4-con作对照,利用CCK-8法检测转染96h内各组细胞的增殖情况,应用流式细胞仪检测细胞周期和凋亡情况。3、将pcDNA3.1-X通过脂质体转染法转入SUDHL-4后,用G418筛选稳定转染HBx的SUDHL-4细胞株,取对数期SUDHL-4、SUDHL-4-con和稳定转染的SUDHL-4-HBx细胞,利用CCK8法检测三种细胞96h的生长情况;以SUDHL-4及转染空载体的B-NHL细胞SUDHL-4-con作对照,应用流式细胞仪检测细胞周期和凋亡情况,用改良噻唑蓝法(MTT)检测细胞粘附力;用Transwell小室实验检测细胞迁移和侵袭能力。结果:1、重组质粒双酶切结果及质粒测序结果表明成功构建pcDNA3.1-X。2、瞬时转染后SUDHL-4细胞有HBx mRNA的表达,与SUDHL-4组细胞及SUDHL-4-con组细胞相比,SUDHL-4-HBx细胞的增殖减缓,G0/G1期细胞比例增加、S期细胞所占比例减少,细胞凋亡率增加。3、稳定转染HBx基因的SUDHL-4细胞有HBx mRNA及HBx蛋白的表达,与SUDHL-4和SUDHL-4-con组细胞相比,SUDHL-4-HBx细胞的增殖能力、粘附力及转移侵袭能力有不同程度增强;细胞周期无显著变化,细胞凋亡率显著降低。结论:1、成功构建整合有HBV X基因和蛋白的B-NHL细胞株SUDHL-4-HBx。2、瞬时转染HBx基因后,SUDHL-4-HBx细胞的增殖减缓,细胞周期阻滞于G0/G1期,细胞凋亡率增加。3、稳定转染HBx基因后,SUDHL-4-HBx细胞的增殖能力及粘附力、侵袭转移能力均显著增强;细胞凋亡率显著降低。
【关键词】:SUDHL-4 HBx 脂质体转染 增殖 侵袭 转移
【学位授予单位】:郑州大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2016
【分类号】:R733.1
【目录】:
- 中文摘要4-6
- Abstract6-13
- 缩略词表13-15
- 引言15-16
- 第一部分 HBx基因真核表达载体的构建及鉴定16-30
- 一 材料与仪器16-17
- 1 血清样本16
- 2 试剂与主要耗材16-17
- 3 主要仪器17
- 二 实验方法17-25
- 1 HBV x基因的提取鉴定17-19
- 1.1 乙肝病毒患者血清DNA的提取17-18
- 1.2 HBx基因的PCR扩增18-19
- 1.3 PCR扩增产物的凝胶电泳鉴定19
- 2 HBx基因测序载体构建与鉴定19-22
- 2.1 PCR扩增产物胶回收19-20
- 2.2 紫外分光光度法测DNA浓度20
- 2.3 HBV X基因的克隆20-21
- 2.4 测序质粒的提取21
- 2.5 HBV X基因测序载体的鉴定21-22
- 3 HBx基因真核表达载体构建与鉴定22-25
- 3.1 HBV X基因的酶切及胶回收22-23
- 3.2 T4连接酶连接反应23
- 3.3 转化和培养23-24
- 3.4 重组质粒pcDNA3.1-X的浓度和纯度测定24
- 3.5 重组质粒pcDNA3.1-X的鉴定24-25
- 三 结果25-29
- 1 HBV X基因的凝胶电泳实验结果25
- 2 HBV x基因真核载体鉴定结果25-29
- 四 讨论29-30
- 第二部分 HBx 转染 SUDHL-4 对其生长侵袭转移的影响30-59
- 一 材料与仪器30-32
- 1 细胞株30
- 2 试剂与主要耗材30-31
- 3 主要仪器31-32
- 二 所需溶液的配制32-35
- 1 SUDHL-4 细胞培养所需溶液的配制32-33
- 1.1 含 10%胎牛血清的RPMI-1640培养液32
- 1.2 台盼蓝染液32-33
- 1.3 PBS缓冲溶液33
- 1.4 细胞冻存液33
- 2 转染后细胞粘附、迁移及侵袭实验所需溶液的配制33-34
- 2.1 MTT溶液33
- 2.2 FN溶液33
- 2.3 BSA溶液33
- 2.4 结晶紫溶液33-34
- 3 Western Bolt实验所需溶液的配制34-35
- 3.1 电泳缓冲液34
- 3.2 电转缓冲液34
- 3.3 5×SDS loading buffer上样缓冲液34
- 3.4 TBST缓冲液34
- 3.5 封闭液34
- 3.6 丽春红染色液34-35
- 三 实验方法35-46
- 1 细胞的复苏、培养及冻存35-36
- 1.1 细胞复苏35
- 1.2 细胞培养35
- 1.3 细胞传代35
- 1.4 细胞冻存35-36
- 1.5 单细胞悬液制备和细胞计数36
- 2 细胞转染36-37
- 2.1 G418筛选剂量确定36
- 2.2 脂质体转染36-37
- 2.3 稳定表达HBx基因SUDHL-4 细胞株的筛选37
- 3 瞬时转染HBx基因对SUDHL-4 细胞凋亡的影响37-41
- 3.1 SUDHL-4 细胞转染后形态变化及转染情况37
- 3.2 瞬时转染SUDHL-4 细胞中HBx基因的表达37-39
- 3.3 瞬时转染HBx基因对SUDHL-4 细胞增殖的影响39-40
- 3.4 瞬时转染HBx基因对SUDHL-4 细胞周期和凋亡率的影响40-41
- 4 稳定表达HBx基因对SUDHL-4 细胞生物学特性的影响41-46
- 4.1 RT-PCR验证SUDHL4HBx细胞株中HBx mRNA的表达41
- 4.2 Western Bolt验证SUDHL4HBx细胞中HBx蛋白的表达41-44
- 4.3 稳定表达HBx基因对SUDHL-4 细胞增殖的影响44
- 4.4 稳定表达HBx基因对SUDHL-4 细胞周期和凋亡的影响44
- 4.5 稳定表达HBx基因对SUDHL-4 细胞粘附力、迁移力及侵袭力的影响44-46
- 4.6 数据分析46
- 四 结果46-56
- 1 SUDHL-4 细胞瞬时转染 HBx 后形态变化及转染情况46-47
- 2 RT-PCR测定瞬时转染HBx基因mRNA的表达47-48
- 3 瞬时转染HBx基因对SUDHL-4 细胞增殖的影响48-49
- 4 瞬时转染HBx基因对细胞周期和细胞凋亡的影响49-50
- 5 稳定表达HBx基因SUDHL-4 细胞株的鉴定50-51
- 6 稳定表达HBx基因对SUDHL-4 细胞增殖的影响51-52
- 7 稳定表达HBx基因对SUDHL-4 细胞周期和凋亡的影响52-53
- 8 稳定表达HBx基因对SUDHL-4 细胞粘附力的影响53-54
- 9 稳定表达HBx基因对SUDHL-4 细胞转移和侵袭的影响54-56
- 五 讨论56-58
- 六 结论58-59
- 参考文献59-62
- 综述62-78
- 参考文献72-78
- 个人简介78-79
- 致谢79
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