E3泛素化连接酶CHIP在胃癌发生发展中的作用及机制研究
本文选题:胃癌 切入点:CHIP 出处:《苏州大学》2015年硕士论文 论文类型:学位论文
【摘要】:目的本研究试图阐明E3泛素化连接酶CHIP在胃癌细胞株AGS细胞中的作用以及探讨其潜在的生物学机制。方法应用q RT-PCR、Western blot以及IHC等方法检测胃癌组织中CHIP的表达情况。采用慢病毒感染宿主细胞的方法转染MSCV-GFP-h CHIP质粒并建立稳定高表达CHIP的胃癌细胞株AGS-h CHIP。通过x CELLigence系统实时动态观察CHIP高表达后细胞生长、细胞迁移以及细胞侵袭能力的变化。应用流式细胞术检测CHIP高表达后细胞周期的变化。采用Ki-67染色法以及TUNEL法检测CHIP高表达后细胞增殖以及细胞凋亡的变化。通过细胞划痕实验观察CHIP高表达后细胞迁移能力的变化。采用明胶酶谱MMP活性检测方法检测CHIP高表达后细胞内金属蛋白酶活性的变化。应用q RT-PCR及Western blot技术检测相关基因在m RNA水平以及蛋白水平的表达。通过Western blot技术检测CHIP高表达后对细胞内AKT信号通路相关蛋白以及TRAF-NF-κB信号通路相关家族成员蛋白水平的表达。结果胃癌组织中CHIP在m RNA水平以及蛋白质水平的表达均较正常组织呈相对低表达,且CHIP的表达量与胃癌的分化程度及TNM分期有显著统计学差异(P0.05)。在胃癌细胞株AGS中分别稳定转染MSCV-GFP-h CHIP质粒和MSCV-GFP质粒,成功获得实验组稳定高表达CHIP的AGS-h CHIP细胞和对照组AGS-control细胞。AGS-h CHIP细胞的生长速度明显慢于AGS-control细胞,并且迁移、侵袭能力均较AGS-control细胞显著减弱。AGS-h CHIP细胞与AGS-control细胞在细胞周期上无明显差异。AGS-h CHIP细胞的增殖能力较AGS-control细胞显著减弱。AGS-h CHIP细胞的凋亡细胞百分比较AGS-control细胞明显增多。AGS-h CHIP细胞中ITGB1基因在m RNA和蛋白质水平的表达均较AGS-control细胞显著下调。AGS-h CHIP细胞中的MMP-2、MMP-9蛋白质水平的表达均较AGS-control细胞显著下调,同时明胶酶谱MMP活性检测方法检测显示AGS-h CHIP细胞中MMP-2和MMP-9的表达显著低于AGS-control细胞。AGS-h CHIP细胞中Bcl-2基因在m RNA和蛋白质水平的表达均较AGS-control细胞明显下调,其余相关基因Bcl-xl、c IAP1、Bax、A20、Bim、Mcl-1在m RNA水平的表达无明显变化。AGS-h CHIP细胞中p AKT(Ser473)及p AKT(Thr308)的蛋白表达水平较AGS-control细胞呈明显下调。AGS-h CHIP细胞中Rel A、p50、Rel B及TRAF-2的蛋白表达水平较AGS-control细胞显著下调。结论CHIP在胃癌的发生发展中扮演着抑癌基因的角色,可以作为判断胃癌侵袭、转移以及患者预后的参考指标。在胃癌细胞株AGS细胞中高表达CHIP能显著抑制细胞的生长、迁移以及侵袭等恶性生物学行为。高表达CHIP显著抑制了胃癌细胞株AGS细胞的生长,与细胞增殖能力减弱及细胞凋亡增多相关,Bcl-2基因的下调及AKT信号通路活性的抑制可能是其潜在的原因。高表达CHIP显著抑制了AGS胃癌细胞株中TRAF-2-NF-κB信号通路的活性,导致了NF-κB信号通路下游一系列靶基因如ITGB1、MMP-2及MMP-9表达水平的下调,这可能是CHIP抑制胃癌细胞恶性生物学行为的重要机制之一。CHIP有望作为胃癌分子靶向治疗的新靶点,应用CHIP高表达技术可以成为一种潜在的胃癌基因治疗的手段。
[Abstract]:Objective to elucidate the E3 ubiquitin ligase CHIP in gastric cancer cell line AGS cells and investigate its biological mechanisms underlying this study. Methods Q RT-PCR CHIP was used to detect the expression of Western in gastric cancer tissue blot and IHC method. The lentivirus infected host cells transfected with MSCV-GFP-h plasmid CHIP method and the establishment of gastric cancer cells line AGS-h CHIP. CHIP high stable expression of growth by real-time x CELLigence system dynamic observation of the high expression of CHIP cells, changes of cell migration and cell invasion. CHIP detected by flow cytometry after high expression of cell cycle. Ki-67 staining was used to detect CHIP method and TUNEL method of high expression of apoptosis and cell proliferation by cell scratch experimental observation of high CHIP expression changes after cell migration. Gelatin zymography detection method to detect the activity of MMP CHIP High expression of metalloproteinase activity in cells was detected by Q. RT-PCR and Western blot related genes in M RNA mRNA and protein expression detected by CHIP Western. Blot technology of high expression on intracellular AKT signaling pathway related protein and member of the TRAF-NF- B signaling pathway related proteins. Results the expression level of CHIP in gastric cancer at M RNA level and protein expression level were lower than that of the normal tissue showed relatively low expression, differentiation and expression of TNM and gastric cancer and CHIP staging with significant difference (P0.05) in gastric cancer cell line AGS were transfected with MSCV-GFP-h CHIP plasmid and MSCV-GFP plasmid, the experimental group successfully obtained high stability the expression of CHIP AGS-h CHIP cells and AGS-control cells of control group.AGS-h CHIP cell growth was slower than AGS-control cells, and the migration, invasion to Force was significantly lower in the AGS-control cells decreased the percentage of apoptotic AGS-control cells.AGS-h cells CHIP cells and AGS-control cells in the cell cycle did not differ significantly between the.AGS-h CHIP cell proliferation ability of AGS-control cells was significantly decreased compared with.AGS-h CHIP cells significantly increased the expression of ITGB1.AGS-h gene in CHIP cells in M RNA and protein levels were significantly lower than that of AGS-control cells.AGS-h CHIP MMP-2 in the cells and MMP-9 protein expression levels were significantly lower than that of AGS-control cells, and zymography method for detection of MMP activity detection showed that expression of MMP-2 and MMP-9 AGS-h in CHIP cells was significantly lower than that of Bcl-2 AGS-control cell.AGS-h gene in CHIP cells in m RNA and protein levels were significantly lower than that of AGS-control cells, the C IAP1, gene Bcl-xl, Bax, A20, Bim, Mcl-1 expression in m level of RNA had no obvious change .AGS-h CHIP P AKT cells (Ser473) and P AKT (Thr308) protein expression level was higher than that of AGS-control cells showed a significant down-regulation of.AGS-h CHIP cells in Rel A, P50, Rel B and TRAF-2 protein expression was significantly down regulated in AGS-control cells. Conclusion CHIP in gastric cancer suppressor gene plays a role in the development of that can be used to judge the invasion, metastasis and prognosis of patients with the reference index. The high expression of CHIP can inhibit cell growth in gastric cancer cell line AGS cells, the malignant biological behavior of migration and invasion. The high expression of CHIP significantly inhibited the growth of gastric cancer cell line AGS cells, associated with cell proliferation and apoptosis increased weakened the down-regulation of AKT signaling pathway, and the activity of Bcl-2 gene may be the underlying cause. The high expression of CHIP significantly inhibited the TRAF-2-NF- activity of the B signaling pathway in gastric cancer cell lines AGS in the guide The NF- B signaling pathway downstream of a series of target genes such as ITGB1, MMP-2 and MMP-9 expression, which may be an important mechanism of CHIP inhibits the malignant biological behavior of gastric cancer cells.CHIP gastric cancer is expected as a new target for molecular therapy, high expression of CHIP can be used as a potential gene therapy of gastric cancer means.
【学位授予单位】:苏州大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2015
【分类号】:R735.2
【相似文献】
相关期刊论文 前10条
1 汪明明 ,崔速南;金属铂抗癌药CHIP[J];癌症;1989年06期
2 吕桂泉 ,许沈华 ,牟瀚舟 ,朱赤红 ,羊正炎 ,高永良 ,楼洪坤 ,刘祥麟 ,杨文 ,程勇;THE GENE EXPRESSION PROFILE OF HIGHLY METASTATIC HUMAN OVARIAN CANCER CELL LINE BY GENE CHIP[J];Chinese Journal of Cancer Research;2001年04期
3 张新民;戴翠莲;;CHIP与心肌缺血/再灌注损伤[J];中国病理生理杂志;2010年03期
4 史双林;;染色质免疫沉淀技术(ChIP)在基因转录调控中的作用[J];北华大学学报(自然科学版);2011年05期
5 李凌,马文丽,郑文岭,徐钤;PROGRESS IN DNA CHIP TECHNOLOGY[J];Chinese Medical Sciences Journal;2001年01期
6 徐夏莲,辛宏,李林钰,张慧,黄海长,常智杰;Hsp/Hsc70相互作用蛋白CHIP在大鼠肾纤维化组织中的高表达[J];中国生物化学与分子生物学报;2004年03期
7 徐夏莲,辛宏,王春华,王银银,常智杰;序列特异的双链RNA可解除CHIP对TGF-β信号通路的抑制作用[J];中国生物化学与分子生物学报;2004年04期
8 徐夏莲,辛宏,张新军,任芳丽,王银银,常智杰;利用四环素调控系统研究CHIP对TGF-β信号通路的抑制性调节[J];生物化学与生物物理进展;2005年06期
9 商瑜;徐夏莲;辛宏;常智杰;;利用条件基因沉默系统研究CHIP对TGF-β信号通路的调控[J];生物化学与生物物理进展;2009年07期
10 郭芸菲;王涛;徐小洁;宋金洁;王宣;王子政;叶棋浓;江泽飞;;热休克蛋白70羧基末端相互作用蛋白(CHIP)对HER2的降解作用[J];细胞与分子免疫学杂志;2014年06期
相关会议论文 前10条
1 郑惠珍;辛宏;徐夏莲;王银银;袁志发;翟永功;;过表达CHIP蛋白抑制小鼠前成骨细胞增殖[A];全国首届动物生物技术学术研讨会论文集[C];2004年
2 李汇华;;C-terminus of Hsc70 interacting protein (CHIP) inhibits myocardin transactivation through ubiquitin-mediated degradation[A];第二届全国“跨学科蛋白质研究”学术讨论会论文集[C];2008年
3 刘越存;张玉虎;王丽娟;王丽敏;王艳艳;;分子伴侣辅因子CHIP真核表达载体pDsRed2-N1/CHIP的构建及其在COS-7细胞中的表达[A];第十一届全国神经病学学术会议论文汇编[C];2008年
4 ;High CHIP Expression Is Associated With The Generation Of Esophageal Carcinoma[A];第六届全国化学生物学学术会议论文摘要集[C];2009年
5 徐夏莲;辛宏;李琳钰;任芳丽;王银银;傅新元;常智杰;;CHIP通过泛素化作用调解TGF-β信号通路[A];中国细胞生物学学会2005年学术大会、青年学术研讨会论文摘要集[C];2005年
6 付小兵;常智杰;孙同柱;;CHIP活性片断C_(483)蛋白在不同修复组织中的表达特征及其与创面愈合结局关系的初步研究[A];全国烧伤创面处理、感染专题研讨会论文汇编[C];2004年
7 王青山;谢克勤;;CHIP在正己烷中毒性神经病神经丝含量下降中的作用[A];中国毒理学会第五次全国学术大会论文集[C];2009年
8 ;ANALYSIS OF THE TOOL-CHIP CONTACT LENGTH INCORPORATING THE EFFECTS OF SHEAR STRAIN[A];2006年中国机械工程学会年会暨中国工程院机械与运载工程学部首届年会论文集[C];2006年
9 ;Carboxyl terminus of Hsp70-interacting protein (CHIP) contributes to human glioma oncogenesis[A];2011中华医学会神经外科学学术会议论文汇编[C];2011年
10 董飞侠;张新志;吴锋;黄迪;何立群;;CHIP调节UUO再通大鼠肾组织TGF-β1/Smads信号通路的研究[A];首届“之江中医药论坛”暨浙江省中医药学会2011年学术年会论文集[C];2011年
相关重要报纸文章 前5条
1 虹;冲浪与CHIP携手[N];中国电脑教育报;2000年
2 水真;乱排行扰乱软件市场[N];经济日报;2000年
3 宁佳;IT产品评测的清风[N];中国企业报;2002年
4 郗峻;IT媒体评测出新枝[N];国际经贸消息;2002年
5 ;荒诞评测为哪般[N];科技日报;2000年
相关博士学位论文 前10条
1 姜碧杰;CHIP介导NF-κB-inducing Kinase(NIK)降解并有效缓解NIK过表达引起的肝损伤[D];西北农林科技大学;2015年
2 郑惠玲;CHIP蛋白对小鼠前成骨细胞增殖与分化的调控[D];西北农林科技大学;2004年
3 李珊;CHIP在骨发生及肝癌中的作用[D];清华大学;2014年
4 吴徐明;CHIP在胃癌血管生成中的作用及分子机制研究[D];南京医科大学;2012年
5 杨坤;泛素E3连接酶CHIP抑制血管紧张素Ⅱ诱导心脏重塑的作用机制[D];北京协和医学院;2012年
6 郭俊伟;miR-764-5p通过抑制CHIP/STUB1表达促进成骨细胞分化[D];清华大学;2012年
7 魏巍;E3泛素连接酶CHIP介导HIF-1α降解的机制探讨[D];中国人民解放军军事医学科学院;2008年
8 杨明金;E3泛素连接酶CHIP和Nrdp1在免疫应答反应中的调控作用及其机制研究[D];浙江大学;2012年
9 谢平;CHIP促进心肌素泛素化和降解及抑制平滑肌细胞分化的分子机理[D];中国协和医科大学;2009年
10 王华南;CHIP在犬乳腺肿瘤的预后分析及5-FU和NVP-BEZ235抗癌作用机制研究[D];中国农业大学;2015年
相关硕士学位论文 前10条
1 刘菲;E3泛素化连接酶CHIP在胃癌发生发展中的作用及机制研究[D];苏州大学;2015年
2 易雪莲;CHIP与PS1的相互作用[D];厦门大学;2007年
3 石燕滨;CHIP和PS1相互作用的研究[D];厦门大学;2009年
4 李腊;热激下CHIP与PS1的相互作用[D];厦门大学;2009年
5 赵永浩;CHIP对PS1稳定性影响的研究[D];厦门大学;2009年
6 洪亮;CHIP蛋白在食管癌发生中的作用研究[D];华中科技大学;2009年
7 高莹;过表达E3泛素连接酶CHIP诱导K562细胞有丝分裂灾变[D];中国人民解放军军事医学科学院;2008年
8 甘蕾;胃癌癌组织中CHIP的表达下调及其临床意义[D];华中科技大学;2013年
9 张新民;MG-132对心肌缺血再灌注大鼠心脏结构功能及HSP70/CHIP的影响[D];遵义医学院;2010年
10 张晓清;PC-1协同CHIP调控前列腺癌细胞中AR蛋白稳定性的分子机制研究[D];中国人民解放军军事医学科学院;2014年
,本文编号:1632426
本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/zlx/1632426.html