LAT在T系白血病裸鼠CD59介导的T细胞活化信号转导中的作用研究
本文关键词:LAT在T系白血病裸鼠CD59介导的T细胞活化信号转导中的作用研究,由笔耕文化传播整理发布。
【摘要】:目的:利用T系Jurkat白血病细胞建立裸鼠动物模型,对其进行生物学鉴定,研究T细胞活化衔接蛋白(LAT)及其棕榈酰化,在CD59分子介导T淋巴细胞活化信号转导中的作用。方法:体外培养人Jurkat细胞,构建LAT-EGFP(LAT分子高表达)、LAT-M-EGFP(LAT分子棕榈酰化位点突变)的慢病毒载体,转染入Jurkat细胞,从而建立稳定表达目的基因的细胞株。BALB/C纯系雌性裸鼠24只,编号后随机抽取,分为空白对照组1组,以及实验组3组:LAT组、LAT-M组和正常Jurkat组,每组6只。第一、第二天通过腹腔注射定量的环磷酰胺,第三天用尾静脉注射的方法,实验组小鼠分别接种Jurkat细胞株5×106个/只,空白对照组小鼠则尾静脉注射等量无菌PBS溶液,注射定时定量,连续两天。观察小鼠发病一般体征,分别于移植后第1周(7d)、第2周(14d)、第3周(21d)、第4周(28d)监测体质量及外周血白细胞数量变化;并用ELISA检测模型小鼠外周血中IL-2表达水平;取肝脾组织进行HE染色观察;流式细胞术(FCM)检测骨髓白血病细胞增殖率;免疫组化染色法检测肝组织中细胞凋亡调控蛋白Bcl-2、Caspase-3的表达水平;血涂片于激光共聚焦显微镜下观察CD59单克隆抗体活化前后LAT在细胞膜上的定位。结果:静脉移植Jurkat细胞后,实验组小鼠逐渐出现病态体征,表现为嗜睡、食欲减退、体质量减轻、精神萎靡、弓背、后肢瘫痪等症状,外周血WBC计数呈增高趋势,生存时间较对照组明显缩短,肝脾组织HE染色及骨髓涂片光镜下观察均可见肿瘤细胞浸润,建模成功,对照组小鼠活力正常均存活。实验组中LAT组小鼠第四周即出现濒死状态,伴脊柱侧弯,呈恶病质,WBC计数高于其他各组。ELISA检测结果示LAT组血清中IL-2表达水平高于LAT-M组和Jurkat组。促凋亡因子Caspase-3在LAT-M组中的表达高于LAT组和Jurkat组,促进细胞活化的Bcl-2蛋白,在LAT组中的表达高于LAT-M组和Jurkat组,且LAT-M组表达水平低于Jurkat组。流式细胞术检测到LAT组白血病细胞增殖率高于LAT-M组和Jurkat组。通过激光共聚焦显微镜观察LAT组提示,于细胞膜上可见LAT分布且点簇状聚集于脂筏,经CD59单抗交联后,点簇状聚集较刺激前更为明显;而在LAT-M组中,可见LAT分子散在分布,未见点簇状聚集,CD59抗体作用后无明显变化。结论:成功建立T系Jurkat白血病细胞裸鼠动物模型。从体内实验证实LAT分子及其棕榈酰化在T细胞活化信号转导中的正向激活作用;CD59分子通过向LAT提供棕榈酰基团,进而共同定位于脂筏,介导T细胞的信号转导。
【关键词】:T淋巴细胞 裸鼠模型 LAT棕榈酰化 CD59
【学位授予单位】:青岛大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2016
【分类号】:R733.7
【目录】:
- 摘要2-3
- Abstract3-7
- 引言7-9
- 技术路线9-10
- 第一章 材料与方法10-20
- 1.1 材料10-11
- 1.1.1 主要实验仪器10
- 1.1.2 病毒与细胞株10
- 1.1.3 实验动物10-11
- 1.1.4 主要实验试剂11
- 1.2 方法11-20
- 1.2.1 Jurkat细胞的培养11-12
- 1.2.2 慢病毒载体转染Jurkat细胞12-13
- 1.2.3 建立Jurkat细胞裸鼠动物模型13-14
- 1.2.4 动物模型各项指标检测14-19
- 1.2.4.1 ELISA检测外周血IL-2 表达水平14-16
- 1.2.4.2 骨髓涂片免疫荧光16
- 1.2.4.3 肝脾组织苏木精-伊红(HE)染色16-17
- 1.2.4.4 免疫组化法检测Caspase-3、Bcl-2 的表达17-18
- 1.2.4.5 流式细胞术(FCM)检测骨髓中肿瘤细胞18
- 1.2.4.6 激光共聚焦显微镜观察LAT分子定位18-19
- 1.2.5 统计学分析19-20
- 第二章 实验结果20-32
- 2.1 细胞的培养慢病毒转染后的Jurkat细胞20-21
- 2.2 建模后小鼠发病一般状况21-24
- 2.2.1 体质量及生存时间21-22
- 2.2.2 外周血白细胞计数22-24
- 2.3 骨髓涂片免疫荧光24-25
- 2.4 肝脾组织HE染色25-26
- 2.5 免疫组化检测肝组织中Caspase-3、Bcl-2 的表达26-27
- 2.6 流式细胞术检测骨髓中阳性肿瘤细胞27-29
- 2.7 ELISA检测血清IL-2 表达29-30
- 2.8 激光共聚焦显微镜观察LAT分子定位30-32
- 第三章 讨论32-35
- 结论35-36
- 参考文献36-38
- 综述38-49
- 综述参考文献45-49
- 攻读学位期间的研究成果49-50
- 附录50-52
- 致谢52-53
【相似文献】
中国期刊全文数据库 前10条
1 ;检测细胞活化的新方法[J];食品科学;2004年07期
2 杨琳;郭明秋;;成熟和衰老T细胞活化后钙信号的研究进展[J];中国免疫学杂志;2006年02期
3 李宪昌;L3T4分子对L3T4~+细胞在体内功能的重要性[J];上海免疫学杂志;1989年04期
4 刘];CD_3/TCR介导JurkatT细胞产生IL-2的差异[J];国外医学(免疫学分册);1991年02期
5 夏海滨,金伯泉;T细胞活化机理研究的最新进展[J];国外医学(免疫学分册);1992年05期
6 张雷,孙尔维,葛琪,曾耀英,高伟;凋亡细胞体外抑制T细胞活化[J];中国免疫学杂志;2000年08期
7 杨吉明;白细胞间介素[J];微生物学免疫学译刊;1984年02期
8 薛彬,Edeman A,Thorbecke GJ;介绍一种用颜色显示法测细胞的生长及增殖[J];北京医科大学学报;1987年02期
9 Gerry G.B.klaus;耿排力;;B细胞控制的阐明[J];青海医学院学报;1988年01期
10 汪群英;徐芸;;原发性胆汁性肝硬化患者外周血T细胞亚群的变化研究[J];山东医药;2008年13期
中国重要会议论文全文数据库 前10条
1 徐yN欣;李晓曦;马玲;侯亚义;;17-β雌二醇增强TLR9信号引起的B细胞活化[A];华东六省一市生物化学与分子生物学会2008年学术交流会论文摘要汇编[C];2008年
2 何贤辉;曾耀英;徐丽慧;邱海霞;蔡小嫦;;黄连素对T细胞体外活化的抑制作用[A];中国免疫学会第四届学术大会会议议程及论文摘要集[C];2002年
3 李一;闫立安;于春雷;;NF-κB诱导激酶(NIK)在TCR/CD3受体交联的T细胞活化中的作用[A];中国免疫学会第四届学术大会会议议程及论文摘要集[C];2002年
4 陈薪伊;李锴;傅开元;;辛伐他汀抑制福尔马林诱发的脊髓小胶质细胞活化及疼痛行为[A];第九次全国颞下颌关节病学及(牙合)学研讨会论文汇编[C];2012年
5 蒋廷旺;邓安梅;韩志君;唐裕杰;仲人前;;原发性胆汁性肝硬化模型中细胞增殖及活化诱导凋亡研究[A];全国临床免疫检验研讨会暨第六届全国临床免疫学术会议论文汇编[C];2009年
6 靳昌忠;冯磊;李杰;姚航平;冯婷婷;吴南屏;;长期HAART对AIDS患者CD8+T细胞活化分子CD38和HLA-DR水平的影响[A];中华医学会第四次全国艾滋病、病毒性丙型肝炎暨全国热带病学术会议论文汇编[C];2009年
7 靳昌忠;冯磊;李杰;姚航平;冯婷婷;吴南屏;;长期HAART对AIDS患者CD8+T细胞活化分子CD38和HLA-DR水平的影响[A];浙江省医学会医学微生物与免疫学及医学病毒学学术年会论文汇编[C];2009年
8 靳昌忠;冯磊;李杰;姚航平;冯婷婷;吴南屏;;长期HAART对AIDS患者CD8+T细胞活化分子CD38和HLA-DR水平的影响[A];第二届传染病诊治高峰论坛暨2009年浙江省感染病、肝病学术年会论文汇编[C];2009年
9 孙大康;李柏青;;PKCθ在γδ~+T细胞经TCR途径活化中的作用[A];第6次全国微生物学与免疫学大会论文摘要汇编[C];2004年
10 孙凯;金伯泉;冯琦;朱勇;杨琨;刘雪松;张建平;;血小板/T细胞活化抗原PTA1配体的初步鉴定[A];面向21世纪的科技进步与社会经济发展(下册)[C];1999年
中国重要报纸全文数据库 前8条
1 胡德荣;炎症过度反应与白细胞活化有关[N];健康报;2007年
2 ;外调内养 立体健康[N];上海科技报;2008年
3 实习生 李晗;解开人类衰老的密码[N];经济参考报;2010年
4 记者 白毅;SAP-PIX通路调节T细胞活化[N];中国医药报;2006年
5 欣文;“学习疗法”可使大脑细胞活化[N];医药经济报;2002年
6 本报记者 杨朝晖;中医疗法提高癌症患者生活质量[N];科技日报;2009年
7 郭玉华 宁新荣 周为琴;维生素E促进免疫的途径及机制[N];中国畜牧兽医报;2005年
8 本报记者 杨朝晖;用现代科学给阿胶“验明正身”[N];科技日报;2009年
中国博士学位论文全文数据库 前10条
1 李凤娥;Treg细胞与前列腺癌冷冻免疫反应关系[D];天津医科大学;2015年
2 王秋举;L-肉碱对H_2O_2诱导氧化应激的两种鱼细胞抗氧化功能影响及其机理研究[D];吉林农业大学;2015年
3 姜毅楠;可溶性CD22作为B细胞活化标志物的临床意义及机制研究[D];华中科技大学;2015年
4 梁薇;EphB2在B细胞活化中的作用和机制研究[D];华中科技大学;2015年
5 臧淑妃;NE在非酒精性脂肪性肝炎kupffer细胞活化中的作用和机制以及黄连素对其影响[D];浙江中医药大学;2016年
6 张子英;TCA对TGR5介导的NR8383细胞TNF-α和IL-1β信号通路的影响[D];内蒙古农业大学;2015年
7 郭婧;转录因子Zfp281参与调控CD4~+ T细胞活化及其机制研究[D];浙江大学;2016年
8 刘永安;MiR-155调控T细胞活化的机制研究[D];第二军医大学;2011年
9 李昊文;T细胞活化连接蛋白LAT分子参与外周T细胞活化和分化的调节机制探讨[D];上海交通大学;2012年
10 傅占江;Alpha-黑素细胞刺激素调节T细胞活化的分子机制[D];第二军医大学;2007年
中国硕士学位论文全文数据库 前10条
1 李逸;PMA+Iono和Z-VRPR-FMK对侵袭性B细胞淋巴瘤细胞生长的影响[D];贵阳医学院;2015年
2 谢国丽;慢性HBV感染者外周血中CD4+T细胞和CD8+T细胞上PD-1的表达情况及其与相关临床指标的研究[D];成都中医药大学;2015年
3 杨密清;小鼠免疫细胞对HepG2细胞糖代谢及其水平的影响[D];福州大学;2014年
4 李建辉;蛋白4.1R对CD8~+T细胞活化信号转导的调控[D];郑州大学;2016年
5 张敏锐;LAT在T系白血病裸鼠CD59介导的T细胞活化信号转导中的作用研究[D];青岛大学;2016年
6 成功;雷帕霉素对小鼠记忆T细胞的体外作用[D];南京医科大学;2008年
7 刘艳平;BTLA信号在T细胞活化启动和早期阶段的调节作用[D];苏州大学;2012年
8 刘敏;DANCE作为体内外细胞的病理反应及其机制的研究[D];暨南大学;2015年
9 戴树人;氧化低密度脂蛋白诱导人淋巴细胞活化及雷公藤多甙的干预研究[D];重庆医科大学;2010年
10 岑治宏;B10细胞在急性病毒性心肌炎小鼠中的变化[D];广西医科大学;2015年
本文关键词:LAT在T系白血病裸鼠CD59介导的T细胞活化信号转导中的作用研究,由笔耕文化传播整理发布。
,本文编号:501103
本文链接:https://www.wllwen.com/yixuelunwen/zlx/501103.html