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低强度加压抗阻训练对SHR心脏功能的影响及机制研究

发布时间:2022-01-04 10:33
  研究目的:本研究旨在探讨低强度加压抗阻训练对自发性高血压大鼠心脏功能的影响及其可能存在的机制,为今后进一步应用此运动模式代替高强度抗阻训练干预治疗高血压提供可靠依据。研究方法:选取4周龄雄性自发性高血压大鼠,随机分为对照组(高血压安静组SHR-SED)、低强度训练组(LLRT)、加压训练组(BFRT)和高强度训练组(HLRT),每组15只,共60只。低强度训练组进行35%-55%1RM递进式低强度抗阻爬梯训练,加压训练组进行30%-40%血流受限伴35%-55%1RM递进式低强度抗阻爬梯训练,高强度训练组进行55%-75%1RM递进式高强度抗阻爬梯训练。使用智能无创血压测试仪BP-2000检测大鼠训练前、训练4周及训练8周后三个时间段BP及HR,使用高频彩色超声检测训练前后大鼠心脏功能,使用Elisa检测血液中VEGF、ET-1及NOS,使用Western blot检测心肌中信号蛋白Pi3kp85、akt、p-akt、eNOS、TGFβ-1、TGFBR1、TGFBR2的表达量,使用HE染色检测心肌中新生毛细血管数及肌纤维数,使用PSR染色检测心肌组织纤维化程度。研究结果:生理指标检测:... 

【文章来源】:南京体育学院江苏省

【文章页数】:57 页

【学位级别】:硕士

【部分图文】:

低强度加压抗阻训练对SHR心脏功能的影响及机制研究


加压训练组大鼠爬梯过程与右下肢环扎部位示意图

自发性高血压大鼠,下肢,超声检测,受限


第9页a.环扎前b.环扎时c.间歇时d.再次环扎时图2自发性高血压大鼠右下肢血流受限的超声检测注:箭头标记为自发性高血压大鼠右下肢大腿肌肉血流受限部位,标记处出现红蓝色亮斑为有效缺血,图片左侧为监测数据。低强度抗阻训练:每周训练5天,第1-2周:最大负荷的30-40%;第3-5周:最大负荷的40-50%;第6-8周:最大负荷的40-60%。高强度抗阻训练:每周训练5天,第1-2周:最大负荷的50-60%;第3-5周:最大负荷的60-70%;第6-8周:最大负荷的70-80%(表2)。表2:抗阻训练方案[76]周次爬梯次数/天间歇时间负重(1RM百分比)适应性训练一周HLRTLLRTBFRTHLRTLLRTBFRTHLRTLLRTBFRT11515151min1min1min50%35%35%21515151min1min1min50%35%35%31515151min1min1min65%45%45%41515151min1min1min65%45%45%51515151min1min1min65%45%45%61515151min1min1min75%55%55%71515151min1min1min75%55%55%81515151min1min1min75%55%55%

标准曲线,自发性高血压大鼠,标准曲线,血清


第13页a.VEGF标准曲线b.ET-1标准曲线c.NOS标准曲线图3自发性高血压大鼠血清中VEGF、ET-1、NOS的标准曲线2.2.4.5样本石蜡切片制备将心肌从4%多聚甲醛溶液中取出,置于双蒸水中冲洗,并用滤纸吸干组织表面水分,然后进行石蜡切片制备,具体步骤如下:(1)脱水:将组织置于包埋盒内并编号,依次在75%酒精中浸泡1h,然后在95%酒精中浸泡6~8h,再在100%酒精Ⅰ中浸泡2h,100%酒精Ⅱ中浸泡3h,二甲苯Ⅰ中浸泡20min,二甲苯Ⅱ中浸泡40min,软蜡30min,硬蜡30min;(2)包埋:将融化的石蜡倒入铝制包埋框,然后取出浸过硬蜡的组织块,按照切面垂直朝下的方向放入包埋框,并在蜡块上做好标记;(3)切片:待蜡块完全凝固后,将其从包埋盒中取出,将其放于冰板上预冷,后置于石蜡切片机上,切5μm厚的组织切片,在48℃恒温水浴中充分展片后用洁净载玻片捞片,于电热干燥箱中(60℃)烤片12h以上,冷却后室温保存。2.2.4.6HE染色取出制备好的石蜡切片,进行如下操作:(1)脱蜡及水化:将石蜡切片放于56℃烤箱中烘烤1h,然后将切片依次浸泡在二甲苯溶液Ⅰ中5min,二甲苯溶液Ⅱ中5min,100%乙醇Ⅰ中5min,100%乙醇Ⅱ中5min,95%乙醇Ⅰ中5min,75%乙醇Ⅱ中5min,最后用0.01M的PBS洗三次,每次5min;(2)染色:使用苏木素染液染色3min,流水冲洗10min,75%盐酸酒精分化5s,流水冲洗10min,伊红染液染色2min;(3)脱水透明:依次浸入75%乙醇5s,95%乙醇5s,100%乙醇Ⅰ、Ⅱ各5min,最后二甲苯Ⅰ、Ⅱ透明各5min;(4)封片:滴加中性树胶进行封片,于通风处晾干,最后进行拍照。(5)毛细血管计算:镜下观察细胞形状,当发现单层扁平内皮细胞形成条索状、窦状,以及单个单层扁平内皮细胞围绕成印戎状,为新生毛细血管[80],进行计数。

【参考文献】:
期刊论文
[1]Chronic Intermittent Hypobaric Hypoxia Ameliorates Renal Vascular Hypertension Through Up-regulating NOS in Nucleus Tractus Solitarii[J]. Na Li,Yue Guan,Yan-Ming Tian,Hui-Jie Ma,Xiangjian Zhang,Yi Zhang,Sheng Wang.  Neuroscience Bulletin. 2019(01)
[2]PI3K/Akt-eNOS信号通路在甘木通总黄酮后处理减轻大鼠心肌缺血再灌注损伤作用[J]. 聂阳,丁立,黄海潮,许良葵,赵晋,杨燕军.  中国中药杂志. 2018(23)
[3]有氧运动对自发性高血压大鼠骨骼肌毛细血管稀疏的影响[J]. 吴聪,吴迎,马珮冬,朱绎桦,李彦锦,石丽君.  中国动脉硬化杂志. 2018(07)
[4]铁皮石斛复方对“饮食不节”致高血压大鼠的药效及PI3K/AKT/eNOS信号通路的影响[J]. 尹超,徐俞悦,陈国杨,李波,何茂,施秋秋,王婷,吕圭源,陈素红.  中国中药杂志. 2018(11)
[5]PI3K/Akt和MAPK信号通路平衡在运动调控高血压血管平滑肌表型转换中的作用[J]. 张琳,吴迎,曾凡星,石丽君.  中国体育科技. 2017(06)
[6]增龄和高血压经PI3K/Akt和MAPK信号通路间平衡介导调控血管平滑肌细胞的表型转换[J]. 张琳,廖静雯,吴迎,曾凡星,石丽君.  中国动脉硬化杂志. 2017(09)
[7]TGF-β1受体1和2在TGF-β1调节细胞增殖中的作用[J]. 王秋实,李平.  中国生物化学与分子生物学报. 2017(02)
[8]不同强度运动对自发性高血压大鼠血管内皮结构及功能影响的氧化应激机制[J]. 叶芳,柏平,曾凡星,石丽君.  体育科学. 2016(12)
[9]PI3K-Akt-eNOS信号通路在SDG抑制去卵巢大鼠心肌缺血再灌注损伤中的调控作用[J]. 王君实,马敏,赵志武,张少华,燕炯.  临床心血管病杂志. 2016(08)
[10]枸杞多糖通过调控PI3K/Akt/eNOS信号通路对去卵巢大鼠心肌产生抗氧化作用[J]. 于宁,杨芳,冷雪,张妮,王俊岩,宋囡.  中国病理生理杂志. 2016(08)



本文编号:3568177

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