慢病毒介导的大鼠前强啡肽基因在骨髓间充质干细胞中的表达
本文选题:前强啡肽 + 强啡肽 ; 参考:《医学研究生学报》2017年02期
【摘要】:目的强啡肽镇痛效应强、安全性好、无呼吸抑制和成瘾性等优势,是目前生物镇痛研究的重点。探讨慢病毒介导的大鼠前强啡肽(PDYN)基因在骨髓间充质干细胞(BM-MSCs)中的表达,为后续研究大鼠癌痛模型的生物镇痛提供条件。方法采用贴壁筛选法分离和扩增BM-MSCs,流式细胞学和体外成脂、成骨细胞诱导分化实验鉴定。构建大鼠PDYN慢病毒载体并感染BM-MSCs,倒置荧光显微镜下观察绿色荧光蛋白的表达和Western blot法筛选最适感染复数(MOI);实验分为空白组(BM-MSCs)、实验组(PCDH-CMV-PDYN-EF1-cop GFP)、空载体组(PCDH-CMV-MCS-EF1-cop GFP),采用实时荧光定量聚合酶链反应(qPCR)和Western blot检测PDYN表达变化,采用免疫细胞化学染色法检测强啡肽蛋白表达。结果BM-MSCs呈长梭形纤维细胞样贴壁生长,多数表达CD29、CD44、CD90,少数表达CD45。成脂诱导培养后油红O染色为阳性;成骨诱导培养后出现矿化结节,经茜素红染色呈橘红色。流式细胞仪检测示BM-MSCs细胞中CD29、CD90、CD44、CD45阳性率分别为(99.80±0.19)%、(99.62±0.24)%、(96.86±1.27)%、(0.82±0.06)%,转染PDYN基因后BM-MSCs表面标记CD29、CD90、CD44、CD45阳性率分别为(99.59±0.34)%、(98.06±1.51)%、(95.23±0.71)%、(10.23±0.59)%,转染前后BM-MSCs干细胞特性差异无统计学意义(P0.05)。经PCR扩增克隆测序鉴定慢病毒载体PCDH-CMV-PDYN-EF1-cop GFP构建成功,重组慢病毒滴度为5×106IU/m L。绿色荧光蛋白的表达和Western blot结果示慢病毒MOI=100为最佳病毒感染复数。qPCR、Western blot检测到经慢病毒载体感染后的BM-MSCs中PDYN基因表达均上调(P0.05),免疫细胞化学染色检测显示强啡肽蛋白表达显著增强。结论成功培养BM-MSCs和构建大鼠PDYN基因过表达慢病毒载体,在BM-MSCs中能高效稳定表达PDYN基因和分泌强啡肽蛋白。
[Abstract]:Objective dynorphin has strong analgesic effect, good safety and no advantages of respiratory inhibition and addiction, so it is the focus of biological analgesia research. To investigate the expression of rat prodynorphin (PDYN) gene mediated by lentivirus in bone marrow mesenchymal stem cells (BM-MSCs), and to provide the conditions for further study on the biological analgesia of rat cancer pain model. Methods BM-MSCs were isolated and amplified by adherent screening, flow cytology and adipogenesis in vitro, and osteoblast induction and differentiation were identified. The rat PDYN lentivirus vector was constructed and infected with BM-MSCs, the expression of green fluorescent protein was observed under fluorescence microscope and the optimum number of infected moi was screened by Western blot method. The experiment was divided into blank group, experimental group, PCDH-CMV-PDYN-EF1-cop GFPV, empty vector group, PCDH-CMV-MCS-EF1-cop GFPA, and real-time fluorescence was used. The changes of PDYN expression were detected by light quantitative polymerase chain reaction (QPCR) and Western blot. The expression of dynorphin protein was detected by immunocytochemical staining. Results BM-MSCs grew like long fusiform fibroblasts, most of them expressed CD29, CD4 and CD90, and a few expressed CD45. Oil red O staining was positive after adipogenic culture, and mineralized nodules appeared after osteogenesis induction culture, which was orange by alizarin red staining. Flow cytometry showed that the positive rates of CD29, CD90, CD44, CD45 in BM-MSCs cells were 99.80 卤0.19 and 99.62 卤0.24, respectively. There was no significant difference in the characteristics of BM-MSCs stem cells before and after transfection of PDYN gene. The positive rates of CD2990, CD44 and CD45 were 99.59 卤0.34, 98.06 卤1.51 and 10.23 卤0.59, respectively. There was no significant difference in the characteristics of BM-MSCs stem cells before and after transfection. The construction of lentivirus vector PCDH-CMV-PDYN-EF1-cop GFP was confirmed by PCR amplification cloning and sequencing. The recombinant lentivirus titer was 5 脳 106IU/m L. The expression of green fluorescent protein and Western blot showed that lentivirus MOI=100 was the best viral infection complex number. QPCRN Western blot detected that the expression of PDYN gene in BM-MSCs infected by lentivirus vector was up-regulated (P0.05), and immunocytochemical staining showed dynorphin eggs. White expression was significantly enhanced. Conclusion BM-MSCs and rat PDYN gene overexpression vector can express PDYN gene and secrete dynorphin protein efficiently and stably in BM-MSCs.
【作者单位】: 汕头大学医学院;广东省人民医院(广东省医学科学院)麻醉科;
【基金】:广东省省级科技计划项目(2013B021800206)
【分类号】:R96
【参考文献】
相关期刊论文 前9条
1 陈宜恬;杜俊英;梁宜;吴赛飞;张荻;方剑乔;;电针对皮下肿瘤致痛大鼠的镇痛效应及对腰段脊髓背角前强啡肽原和前阿黑皮素原mRNA表达的干预[J];浙江中医药大学学报;2015年03期
2 龚隽;葛京平;杨斌;孙颖浩;;ALKBH2基因RNA干扰慢病毒载体的构建与鉴定[J];医学研究生学报;2014年05期
3 黄懿;丁留成;卫中庆;;间充质干细胞成平滑肌分化治疗应用的研究进展[J];医学研究生学报;2014年03期
4 杨慧菊;孙怡;赵国栋;;转前强啡肽基因修饰人骨髓间充质干细胞株的建立[J];实用疼痛学杂志;2012年04期
5 杨慧菊;孙怡;赵国栋;;鞘内注射前强啡肽基因修饰的骨髓干细胞对神经病理性痛大鼠的镇痛效应研究[J];实用疼痛学杂志;2012年04期
6 吴瑞鑫;樊荣;裴建明;;κ阿片受体与胰岛细胞功能调节的关系[J];心脏杂志;2012年03期
7 李荣春;叶达伟;周伶;丁得方;项红兵;;内源性强啡肽/κ受体系统在痛与镇痛领域的研究进展[J];广东医学;2012年08期
8 孟春晖;李福年;张佃良;;c-myc基因慢病毒载体的构建及其意义[J];中华实验外科杂志;2011年04期
9 于动震;吴红海;侯艳宁;;孕酮对吗啡精神依赖大鼠相关脑区中强啡肽A水平的影响[J];中国药物依赖性杂志;2008年03期
【共引文献】
相关期刊论文 前10条
1 张创强;孙柯;马珏;赵国栋;;慢病毒介导的大鼠前强啡肽基因在骨髓间充质干细胞中的表达[J];医学研究生学报;2017年02期
2 闵波;焦峰;赵一奇;邱亮;孙龙;;连续细胞培养诱导骨髓间充质干细胞分化[J];医学研究生学报;2016年03期
3 黄蓉;梁瑜祯;卢炳丰;;自体骨髓间充质干细胞移植促进缺血下肢血管新生的实验研究[J];医学研究生学报;2015年07期
4 冯文磊;张猛;徐芳洁;王艳杰;陈雪玲;吴向未;;共培养体系间充质干细胞对同源内皮祖细胞增殖和血管形成的影响[J];医学研究生学报;2015年03期
5 马卫列;丁航;李观强;肖娟;张志珍;;人β-COP-shRNA慢病毒载体构建及干扰效应检测[J];医学研究生学报;2015年02期
6 杨德林;霍倩;王乙水;杨旭升;王凯;王剑松;徐鸿毅;王海峰;;基质细胞衍生因子-1及其受体CXCR4对膀胱癌细胞侵袭能力及腔内种植的影响[J];医学研究生学报;2014年10期
7 田培超;刘玉峰;王怀立;罗强;陈铮;王越;;靶向人神经母细胞瘤MYCN基因慢病毒载体的构建及鉴定[J];中华实验外科杂志;2014年08期
8 刘香娟;李福年;孟春晖;姜丹丹;刘世海;;突变型与野生型c-myc在非p53依赖性通路中对Bim基因表达的影响[J];齐鲁医学杂志;2012年05期
9 杨慧菊;孙怡;赵国栋;;转前强啡肽基因修饰人骨髓间充质干细胞株的建立[J];实用疼痛学杂志;2012年04期
10 于动震;侯艳宁;;孕酮对吗啡精神依赖大鼠海马和纹状体中阿片受体水平的影响[J];中国药理学通报;2009年05期
【二级参考文献】
相关期刊论文 前10条
1 张静若;方芳;方剑乔;池细绿;吴丽娜;;鞘内注射MrgC抗体对电针干预CFA大鼠慢性炎性痛及脊髓背角NR1表达的影响[J];浙江中医药大学学报;2014年04期
2 陈立;钟国强;涂荣会;黎庆捷;何艳;;Cx43基因shRNA慢病毒载体的构建及其对大鼠心肌细胞Cx43基因的作用[J];山东医药;2013年21期
3 胡波;吴苏稼;;微小RNA在骨肉瘤中的研究进展[J];医学研究生学报;2013年05期
4 李红霞;周亚峰;蒋彬;陈弹;杨向军;蒋文平;;大鼠骨髓间充质干细胞转染GATA-4的表达及鉴定[J];医学研究生学报;2013年03期
5 陈伟;曹罡;董震;苏寒;蒋勇;张森林;;人Notch4基因RNAi慢病毒载体的构建及鉴定[J];医学研究生学报;2013年02期
6 王利平;包晓辰;魏玮;陈洁;邵宇;王健民;钱其军;;携带可诱导共刺激分子基因的重组腺病毒载体构建及其在小鼠间充质干细胞中的表达[J];医学研究生学报;2012年09期
7 孙懿;曾思聪;卢光t;林戈;;利用慢病毒载体构建稳定干扰β-catenin的人胚胎干细胞系[J];南方医科大学学报;2012年08期
8 彭杰;王文海;周荣耀;沈卫东;李佳;;针药并用治疗中重度癌性疼痛的临床研究[J];上海针灸杂志;2012年04期
9 陈帅;李浩博;李牧;杨耀琴;陶惠红;赵培林;;靶向树突状细胞的肿瘤疫苗OVA慢病毒载体构建及其体外抗肿瘤效应[J];同济大学学报(医学版);2012年01期
10 吴晓东;王微;周贺;樊荣;张丙芳;裴建明;;κ-阿片受体和缝隙连接蛋白Cx43与心律失常的关系[J];心脏杂志;2011年05期
【相似文献】
相关期刊论文 前10条
1 李振宇;慢病毒载体构建及结构优化[J];国外医学(分子生物学分册);2002年05期
2 主鸿鹄;慢病毒载体及其对低分裂潜能细胞的基因转移[J];白血病.淋巴瘤;2003年01期
3 杨宇娟,裴冬生,徐开林,潘秀英,何徐彭,张成静;survivin反义RNA的克隆及慢病毒载体的构建[J];徐州医学院学报;2005年06期
4 焦伊胜;王永来;张淑兰;王桂玲;;凋亡蛋白抑制因子Livin shRNA慢病毒载体的构建与鉴定[J];中国现代医学杂志;2008年24期
5 褚波;黄雪峰;唐云明;;慢病毒载体及其应用进展[J];生物医学工程学杂志;2008年01期
6 毛颖佳;郑源强;石艳春;;慢病毒载体及其应用的研究进展[J];中国生物制品学杂志;2009年02期
7 曾锦芳;王少元;;慢病毒载体及其在血液病研究中的应用进展[J];医学综述;2011年08期
8 马强;舒文;李明;吴英松;;一种新型慢病毒载体制备体系的改进[J];热带医学杂志;2011年08期
9 张薇;赵志英;张坤;;慢病毒载体及应用研究进展[J];包头医学院学报;2011年05期
10 何佳平;方_g聃;张帆;孙凤强;王娟;张敬之;;慢病毒载体转录通读率检测方法的建立[J];生物工程学报;2013年07期
相关会议论文 前10条
1 冯东福;毕永延;陈二涛;王永志;楚胜华;;小鼠pLVX-Wnt3a-IRES-ZsGreen1慢病毒载体的构建及神经干细胞转染[A];中华医学会神经外科学分会第九次学术会议论文汇编[C];2010年
2 李振宇;徐开林;潘秀英;陈香梅;鹿群先;主鸿鹄;李慧;陈海英;何徐彭;;慢病毒载体的构建及其包装细胞系的建立[A];中华医学会第八次全国血液学学术会议论文汇编[C];2004年
3 王海彬;;雌激素相关受体α基因超表达慢病毒载体的构建[A];中华医学会第六次全国骨质疏松和骨矿盐疾病学术会议暨中华医学会骨质疏松和骨矿盐疾病分会成立十周年论文汇编[C];2011年
4 张晓宇;秦宜德;王超;张文晓;王巍;何晓光;;牛乳铁蛋白肽基因的慢病毒载体构建[A];华东六省一市生物化学与分子生物学会2010年学术交流会论文集[C];2010年
5 李振宇;徐开林;潘秀英;鹿群先;;慢病毒载体的构建、改造及其包装细胞系的建立[A];2005年华东六省一市血液病学学术会议暨浙江省血液病学学术年会论文汇编[C];2005年
6 王玉兰;任振华;;感染食蟹猴骨髓间充质干细胞的病毒载体研究[A];第十三次全国临床药理学学术大会论文汇编[C];2012年
7 黄新凤;叶金波;蒋英芝;任晓虎;黄培武;刘建军;;SET shRNA慢病毒载体的构建及其在肝细胞中的表达鉴定[A];中国科协第十四届年会第十七分会场环境危害与健康防护研讨会论文集[C];2012年
8 杨龙江;侯健;;构建含有人血小板因子4和其片段的慢病毒载体[A];第12届全国实验血液学会议论文摘要[C];2009年
9 李振宇;徐开林;潘秀英;鹿群先;孙海英;主鸿鹄;陈香梅;何徐彭;;慢病毒载体的构建、改造及其包装细胞系的建立[A];第九届全国实验血液学会议论文摘要汇编[C];2003年
10 刘峰;肖兴鹏;田玉科;;大鼠蛋白激酶Cγ可控shRNA慢病毒的构建与鉴定[A];2011年全国医药学术论坛交流会暨临床药学与药学服务研究进展培训班论文集[C];2011年
相关博士学位论文 前10条
1 原莉莉;慢病毒载体介导的HSP47 siRNA抑制PVR的研究[D];天津医科大学;2015年
2 张志强;辐射诱导型SOD2过表达慢病毒载体的构建及其在结肠癌放疗中的辐射防护和放疗增敏效应[D];重庆医科大学;2016年
3 杨玉芳;用LMP1构建重组慢病毒载体及建立转基因小鼠模型[D];第一军医大学;2004年
4 徐世永;慢病毒载体法高效转基因鸡制备技术研究[D];南京农业大学;2007年
5 王玉梅;人PTEN基因RNAi和RESC慢病毒载体的构建及其功能的相关性研究[D];郑州大学;2011年
6 吴福国;表达Cdc42-shRNA重组慢病毒载体的构建及其对膀胱癌细胞影响的实验研究[D];兰州大学;2007年
7 马强;肿瘤翻译调控蛋白(TCTP)对结肠癌细胞LoVo的生物学特性影响及安全型慢病毒载体构建探索[D];南方医科大学;2009年
8 郝又国;携带Rab9 cDNA的慢病毒对C型Niemann-Pick病小鼠的神经保护作用[D];华中科技大学;2009年
9 杨欢;慢病毒介导中国人产甲酸草酸杆菌中草酸分解基因FRC和OXC转染肝干细胞的实验研究[D];华中科技大学;2011年
10 张文卿;HCMV pp150表达及E1-pp65慢病毒载体刺激T细胞免疫应答的研究[D];山东大学;2006年
相关硕士学位论文 前10条
1 熊冬兰;白细胞介素-18基因慢病毒表达载体抗肺癌作用的研究[D];福建医科大学;2015年
2 许媛;TWEAK慢病毒载体的构建及在肝癌细胞中的表达与功能初步研究[D];川北医学院;2015年
3 邓乃刚;p.93K-T QDPR基因慢病毒过表达载体的构建[D];河北联合大学;2014年
4 徐小隔;Let-7d慢病毒载体对体外骨髓间充质干细胞向神经细胞分化的影响[D];郑州大学;2015年
5 王硕;慢病毒介导BMPR Ⅱ基因沉默对人肝癌移植瘤生长的影响[D];南昌大学医学院;2015年
6 操储云;4个沉默鸡Ii基因慢病毒载体的构建及其效果比较[D];安徽农业大学;2014年
7 杨碧慧;RNA干扰靶向沉默SPAG6基因对人MDS细胞体内外生长的影响[D];重庆医科大学;2015年
8 王旋;SIRT2调节HSP90活性的分子机制[D];河南大学;2015年
9 张U,
本文编号:1967778
本文链接:https://www.wllwen.com/kejilunwen/jiyingongcheng/1967778.html