黑曲霉磷脂酶D基因的克隆表达与生化特征解析
【学位单位】:天津科技大学
【学位级别】:硕士
【学位年份】:2018
【中图分类】:Q78;Q55
【部分图文】:
革兰氏阳性菌;G_,革兰氏阴性菌??1.1.3磷脂酶D的反应机理??磷脂酶D—般可以催化两种反应(图1-1):其一,水解磷脂分子中的磷酸和有??机碱(如乙醇胺、胆碱等)羟基成酯键,生成磷脂酸(Phosphatidic?acid,PA)和有??机碱。PLD水解反应的主要底物是磷脂酰胆碱(Phosphatidylcholine,PC),在某些生物??体中PLD也可以水解磷脂酰乙醇胺(Phosphatidylethanolamine,?PE)[44]和磷脂酰肌醇??(Phosphatidylinositol,PI)[45]。其二,PLD还可以催化各种羟基化合物与磷脂碱基结??合形成新的憐脂,这一重要特性称为PLD的碱基交换反应(Base?exchange??reaction),也称转磷脂反应(Transphosphatidylation)?[46]。但也有报道称极少数??PLD只有水解活性[47,48]。利用PLD的碱基交换活性可以合成稀有磷脂和单一磷脂,??比如磷脂酰丝氨酸(Phosphatidylserine
?—18S??图3-3总RNA的提取结果??Fig.?3-3?The?extraction?of?total?RNA??3.2.2磷脂酶D目的基因的扩增??以黑曲霉的总RNA反转录生成的cDNA为模板,以表2-1两组引物进行目的基??因的扩增。使用0.8%的琼脂糖凝胶检测PCR产物。电泳结果如图3-4所示,所扩增??的;?/以和;?W5的片段大小分别为2.5?kb和3.6?kb,与其预期大小(分别是2499和??3645?bp)相符。而且条带单一、清晰,表明基因克隆成功。??M?1?M?2??擊,制??國??图3-4目的基因PCR产物电泳图??Fig.?3-4?Agarose?gel?electrophoresis?analysis?of?PCR?products??M:?GeneRuler?1?kb?Plus?DNA?Ladder;?1:鱗脂酶基因p/以,??2:鱗脂酶基因尸/必??3.3磷脂酶D重组菌的构建与表达??3.3.1重组质粒的构建??将PCR获得的目的基因片段用ATwI进行酶切,经纯化回收后,用T4DNA连接??酶将其与经过1和II双酶切的质粒pPIC9K进行连接。重组质粒构建方式如??图3-5所示。??29??
3.2.2磷脂酶D目的基因的扩增??以黑曲霉的总RNA反转录生成的cDNA为模板,以表2-1两组引物进行目的基??因的扩增。使用0.8%的琼脂糖凝胶检测PCR产物。电泳结果如图3-4所示,所扩增??的;?/以和;?W5的片段大小分别为2.5?kb和3.6?kb,与其预期大小(分别是2499和??3645?bp)相符。而且条带单一、清晰,表明基因克隆成功。??M?1?M?2??擊,制??國??图3-4目的基因PCR产物电泳图??Fig.?3-4?Agarose?gel?electrophoresis?analysis?of?PCR?products??M:?GeneRuler?1?kb?Plus?DNA?Ladder;?1:鱗脂酶基因p/以,??2:鱗脂酶基因尸/必??3.3磷脂酶D重组菌的构建与表达??3.3.1重组质粒的构建??将PCR获得的目的基因片段用ATwI进行酶切,经纯化回收后,用T4DNA连接??酶将其与经过1和II双酶切的质粒pPIC9K进行连接。重组质粒构建方式如??图3-5所示。??29??
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