CRISPR/Cas9结合loxP-Cre技术制备肝特异性G6PC基因缺陷小鼠的实验研究
发布时间:2021-04-09 21:49
目的建立肝特异性G6PC基因纯合缺陷的Ia型糖原累积症(glycogen storage disease Ia, GSD Ia)小鼠模型。方法通过CRISPR/Cas9基因重组技术使C57BL/6J小鼠受精卵中G6PC基因外显子2两侧分别插入1个loxP原件,产仔后经鉴定打靶成功的小鼠通过扩繁、兄妹交配及与Alb-Cre小鼠交配,最终产生G6PC-loxP+/+、Alb-Cre共表达的肝特异性G6PC基因2号外显子纯合敲除的GSD Ia小鼠模型。通过监测模型鼠及背景鼠的餐后0~12 h的血糖来验证模型是否成功。结果经PCR鉴定F0及F1代小鼠成功于G6PC基因2号外显子两侧插入loxP原件并可稳定遗传;最终成功建立G6PC-loxP+/+、Alb-Cre共表达的GSD Ia小鼠,检测餐后1~12 h血糖均低于背景鼠,说明造模成功。结论应用CRISPR/Cas9基因重组技术及loxP-Cre系统可建立肝特异性G6PC基因缺陷的GSD Ia小鼠,可用于该病的病理研究及药物研发。
【文章来源】:北京医学. 2020,42(11)
【文章页数】:5 页
【部分图文】:
中靶载体示意图
Lei等[3]于1996年报道了全身型G6PC基因3号外显子敲除纯合缺陷小鼠的制备过程,但该小鼠病情严重,寿命过短,大多数存活至断奶,存活超过5周龄的小鼠不足12%,不适于药物研发及长期观察。2009年,Peng等[4]报道了应用胚胎干细胞DNA同源重组技术,利用EIIa-Cre-loxP与FLPe-Frt策略制备的G6PC3号外显子条件无效小鼠模型;可引起肾、肝特异性缺乏G6P,存活时间可长达10~20个月[5]。2010年,Mutel等[6]应用ERT2-Cre-loxP系统制备了肝特异性G6PC 3号外显子条件无效小鼠模型,存活超过18个月。条件无效小鼠模型存活时间长,较适于药物研发。本研究团队曾经尝试应用文献中报道的Cre-loxP策略复制条件无效小鼠模型,但造模失败。最终选择应用CRISPR/Cas9技术在G6PC基因中插入loxP元件,进而通过Alb-Cre-loxP策略制备了肝特异性G6PC 2号外显子纯合敲除的GSD Ia小鼠。图3 G6Pase LKO小鼠及背景鼠禁食后血糖-时间监测图
G6Pase LKO小鼠及背景鼠禁食后血糖-时间监测图
本文编号:3128372
【文章来源】:北京医学. 2020,42(11)
【文章页数】:5 页
【部分图文】:
中靶载体示意图
Lei等[3]于1996年报道了全身型G6PC基因3号外显子敲除纯合缺陷小鼠的制备过程,但该小鼠病情严重,寿命过短,大多数存活至断奶,存活超过5周龄的小鼠不足12%,不适于药物研发及长期观察。2009年,Peng等[4]报道了应用胚胎干细胞DNA同源重组技术,利用EIIa-Cre-loxP与FLPe-Frt策略制备的G6PC3号外显子条件无效小鼠模型;可引起肾、肝特异性缺乏G6P,存活时间可长达10~20个月[5]。2010年,Mutel等[6]应用ERT2-Cre-loxP系统制备了肝特异性G6PC 3号外显子条件无效小鼠模型,存活超过18个月。条件无效小鼠模型存活时间长,较适于药物研发。本研究团队曾经尝试应用文献中报道的Cre-loxP策略复制条件无效小鼠模型,但造模失败。最终选择应用CRISPR/Cas9技术在G6PC基因中插入loxP元件,进而通过Alb-Cre-loxP策略制备了肝特异性G6PC 2号外显子纯合敲除的GSD Ia小鼠。图3 G6Pase LKO小鼠及背景鼠禁食后血糖-时间监测图
G6Pase LKO小鼠及背景鼠禁食后血糖-时间监测图
本文编号:3128372
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