芥菜CMS系中线粒体反向调控基因GRFs的鉴定
发布时间:2021-09-04 00:19
线粒体到细胞核的信号传递通常被称作线粒体反向调控(Mitochondrial Retrograde Regulation,MRR),在植物、动物与微生物中普遍存在。高等植物线粒体反向调控信号受多种胁迫诱导,如各种生物胁迫与非生物胁迫,以及线粒体呼吸抑制剂(抗霉素A等)。核编码线粒体定位的交替氧化酶基因(Alternative oxidasela,AOX1a),被认为是植物线粒体反向信号调控的标记基因,能被抗霉素A诱导表达。近些年对模式植物拟南芥线粒体反向调控的研究中,鉴定到线粒体反向调控信号的一些关键因子,比如AtMYB29,AtNAC013。芥菜细胞质雄性不育系CMS是典型的线粒体DNA突变体,可以与其保持系MF、自然育性回复突变系REV系统作为试验材料来研究线粒体反向调控信号途径。实验室前期研究发现,拟南芥中与酵母14-3-3基因Bmh1/2高度同源的AtGRF3在线粒体反向调控中作为负调控因子起重要作用。此外,我们发现一些14-3-3基因在芥菜REV/CMS转录谱中存在显著表达差异。因此,本课题旨在研究芥菜14-3-3基因在线粒体反向调控信号途径中的作用,利用VIGS对候选基因进...
【文章来源】:浙江大学浙江省 211工程院校 985工程院校 教育部直属院校
【文章页数】:104 页
【学位级别】:博士
【部分图文】:
图1.1酵母中的一条线粒体反向调控途径(LiuZ.?andButowR.A.,2006)
?—?\??j?Mksip ̄n??图1.1酵母中的一条线粒体反向调控途径(LiuZ.?andButowR.A.,2006)。??Fig.?1.1?Mitochondrial?Retrograde?Signaling?in?Saccharomyces?cerevisiae?(Liu??Z.?and?Butow?R.A.,?2006).??1.1.2植物中的线粒体反向调控途径??在植物中,ALTERNATIVEOXIDASElaUQZ/a)是线粒体反向调控的标志??基因。JOZ/a能被线粒体与叶绿体功能障碍激活,受多种不同的环境胁迫条件所??诱导,比如营养缺乏,有毒物质,极端的温度,病原菌,渗透胁迫(Dojcinovicet??al”?2005;?Dahal?et?al.,?2014;?SchwarzlMnder?et?al.,2012;?De?Clercq?et?al.,2013?)〇?利??用呼吸抑制剂来抑制线粒体功能是研究反向信号的一种常用方法,比如抗霉素A??(antimycin?A,AA)?〇??13??
水杨酸与活性氧信号传递中起作用。除此之夕卜,rao7/myb29突变体表现??出对光与干旱胁迫更强的敏感性。这些结杲表明线粒体反向信号传递与调控芥子??油苷合成间存在相互作用,二者都被兄407/MT529调控(Zhangetal.,2017)。??在反向信号与生长素信号二者间存在相对的关系,生长素分配中的转运蛋白??(比如PIN1,BIG)缺失会促使线粒体在刺激中增强反向调控,当施以外源生长??素,反向信号途径就会被抑制(Ivanova?etal.,?2014;?Kerchevetal.,2014)。??另外,ROS在动物与植物中都参与了线粒体反向调控(Murphy,?2009;?Kim??etal.,2010;?Petrov?and?Van?Braeusegem,?2012),但是?ROS?通过何种方式传递到??细胞核激活核基因表达仍然是未知的,并且ROS能在多种细胞器里产生(M0ller??and?Sweetlove,?2010)。??研究表明,拟南芥的盐胁迫响应中,钙离子介导的质膜与线粒体联合交流信??号对的诱导很重要,这意味着钙离子可能在MRR中发挥作用??(Vanderauwera?et?al.,?2012)?〇??
本文编号:3382164
【文章来源】:浙江大学浙江省 211工程院校 985工程院校 教育部直属院校
【文章页数】:104 页
【学位级别】:博士
【部分图文】:
图1.1酵母中的一条线粒体反向调控途径(LiuZ.?andButowR.A.,2006)
?—?\??j?Mksip ̄n??图1.1酵母中的一条线粒体反向调控途径(LiuZ.?andButowR.A.,2006)。??Fig.?1.1?Mitochondrial?Retrograde?Signaling?in?Saccharomyces?cerevisiae?(Liu??Z.?and?Butow?R.A.,?2006).??1.1.2植物中的线粒体反向调控途径??在植物中,ALTERNATIVEOXIDASElaUQZ/a)是线粒体反向调控的标志??基因。JOZ/a能被线粒体与叶绿体功能障碍激活,受多种不同的环境胁迫条件所??诱导,比如营养缺乏,有毒物质,极端的温度,病原菌,渗透胁迫(Dojcinovicet??al”?2005;?Dahal?et?al.,?2014;?SchwarzlMnder?et?al.,2012;?De?Clercq?et?al.,2013?)〇?利??用呼吸抑制剂来抑制线粒体功能是研究反向信号的一种常用方法,比如抗霉素A??(antimycin?A,AA)?〇??13??
水杨酸与活性氧信号传递中起作用。除此之夕卜,rao7/myb29突变体表现??出对光与干旱胁迫更强的敏感性。这些结杲表明线粒体反向信号传递与调控芥子??油苷合成间存在相互作用,二者都被兄407/MT529调控(Zhangetal.,2017)。??在反向信号与生长素信号二者间存在相对的关系,生长素分配中的转运蛋白??(比如PIN1,BIG)缺失会促使线粒体在刺激中增强反向调控,当施以外源生长??素,反向信号途径就会被抑制(Ivanova?etal.,?2014;?Kerchevetal.,2014)。??另外,ROS在动物与植物中都参与了线粒体反向调控(Murphy,?2009;?Kim??etal.,2010;?Petrov?and?Van?Braeusegem,?2012),但是?ROS?通过何种方式传递到??细胞核激活核基因表达仍然是未知的,并且ROS能在多种细胞器里产生(M0ller??and?Sweetlove,?2010)。??研究表明,拟南芥的盐胁迫响应中,钙离子介导的质膜与线粒体联合交流信??号对的诱导很重要,这意味着钙离子可能在MRR中发挥作用??(Vanderauwera?et?al.,?2012)?〇??
本文编号:3382164
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