‘红绵蜜柚’生长素诱导相关基因CgPCNT115的克隆及功能分析
发布时间:2022-01-01 16:29
‘红绵蜜柚’(Citrus grandis(L.)Osbeck.cv.‘Hongmianmiyou’)是近年从‘琯溪蜜柚’(C.grandis(L.)Osbeck.cv.‘Guanximiyou’)芽变株系中选育的优良蜜柚新品种,具有汁多化渣、酸甜适中、丰产性好等优点。在四川产区常用枳(Poncirus trifoliata)作为‘琯溪蜜柚’的砧木,而课题组在推广栽培‘红绵蜜柚’时发现,以枳为砧木时嫁接苗表现出接穗叶片黄化甚至死亡现象,以香橙(C.junos)为砧木时嫁接苗生长势良好,‘琯溪蜜柚’以枳为砧木同样可以正常生长发育。针对该现象,基于课题组前期转录组研究数据显示,CgPCNT115基因与生长素诱导相关,它可能与枳砧‘红绵蜜柚’幼苗黄化密切相关。生长素诱导蛋白PCNT115在许多植物中已经鉴定,其涉及的生理生化过程较多,但相关功能及机理并不清楚,因此,本研究以‘红绵蜜柚’为材料,克隆CgPCNT115基因及启动子序列,与‘琯溪蜜柚’克隆序列进行了比较分析。同时,对CgPCNT115在不同嫁接组合、叶片不同发育时期、不同组织中的表达特性进行了测定与分析;并对CgPCNT115基因...
【文章来源】:四川农业大学四川省 211工程院校
【文章页数】:61 页
【学位级别】:硕士
【部分图文】:
三个嫁接组合植株照片
‘红绵蜜柚’生长素诱导相关基因CgPCNT115的克隆及功能分析7图2IAA的生物合成及运输模式图注:蓝色标注属于IAA合成途径;黑色标注为中间产物;绿色标注属于IAA运输途径。Fig.2ThebiosynthesisandtransportmodelofIAANote:BluelabelingbelongstothesynthesispathwayofIAA;Blacklabelingistheintermediate;GreenlabelingbelongstoIAAtransportationway.1.3.2生长素的运输生长素的极性运输依赖于生长素运输载体,在植物生长发育过程中起着关键作用。生长素的极性运输载体包括输入载体AUX1、输出载体PIN以及兼有输入和输出载体功能的MDR/PGP蛋白[59]。IAA的生物合成及运输如图2所示。三种运输蛋白的部分编码基因已经在许多植物中得到功能验证,也进一步证实了该条途径的有效性。其中,值得关注的是两个输出载体PIN及PGP之间的关系以及是否存在互作。有研究通过共表达手段发现,PGP蛋白与PIN蛋白协同作用增强了对生长素的输出能力及对IAA的亲和性[60]。那么,除此之外,三种运输载体之间是否还存在互作是接下来迫切需要弄清楚的问题。另外,三个蛋白的编码基因家族在生长素极性运输过程中的具体表达模式以及他们之间的相互协调作用是如何进行的也将是后续研究的重要方向。1.3.3生长素的响应生长素的响应及信号转导过程较为复杂。生长素的信号转导过程的完成主要通过Aux/IAA、GH3以及SAUR这三个基因家族进行调控。除此之外,生长素响应因子(ARFs)作为一类特殊的转录因子,能够特异性结合生长素初期响应基因启动子中
‘红绵蜜柚’生长素诱导相关基因CgPCNT115的克隆及功能分析8的AuxRE元件,从而在生长素的信号转导过程中发挥激活或抑制作用。IAA信号转导模式如图3所示。图3IAA信号转导模式图注:红色标注属于IAA信号转导途径;绿色标注属于IAA运输途径;蓝色标注属于IAA生物合成途径。Fig.3TheIAAsignaltransductionmodediagramNote:RedlabelingbelongstoIAAsignaltransductionpathway;greenlabelingbelongstoIAAtransportpathway;andbluelabelingbelongstoIAAbiosynthesispathway.ARFs与其它转录因子一样具有该家族特殊的结构且拥有独立的功能,ARFs蛋白在不同的作物中其分子结构上具有一定的相似性,绝大部分ARF成员由三部分构成。包括N端的DNA结合结构区域B3-typeDBD、中间区域(middleregion)以及C端的二聚化结构区域(C-terminaldomain)[61]。B3-typeDBD区域能够直接特异性的结合生长素响应基因启动子中的顺式作用元件AuxRE,且主要是前面4个碱基TGTC。近些年通过基因组技术分析,越来越多植物中的ARFs家族被相继报道;主要包括模式植物、经济作物、果树等,如水稻、柑橘、番茄、大豆、玉米、香蕉、油菜等[62]。随着研究的不断深入,ARFs对植物生长发育的调控作用也被挖掘出来。首先,在叶和花的生长发育方面是最先被鉴定的[63-65],随后又鉴定出在种子的萌发及发育过程[63]以及果实的发育过程[66]具有调控作用。近些年,也有研究发现ARFs在响应生物和非生物胁迫上发挥重要作用[67-68]。近年来,研究者们对ARFs的作用方式及其保守域的功能给出了新的详细信息[69]。他们证实了ARFs对于生长素通路输出的关键作用,
【参考文献】:
期刊论文
[1]2个14-3-3蛋白基因在香蕉果实成熟过程中的表达分析[J]. 李美英,金志强,杨小亮,贾彩虹,夏启玉,郭静远,贺萍萍,徐碧玉. 热带作物学报. 2018(05)
[2]枳砧红绵蜜柚嫁接黄化苗的光合特性及其CgSGR基因克隆与表达分析[J]. 何文,王燕,陈清,徐世荣,汤浩茹,潘东明,王小蓉. 西北植物学报. 2018(05)
[3]生长素响应因子(ARF)与植物遗传育种[J]. 宋顺,黄东梅,马蔚红,王甲水,周兆禧,许奕. 分子植物育种. 2018(08)
[4]基于CRISPR/Cas9技术的水稻温敏不育基因tms5突变体的构建[J]. 黄忠明,周延彪,唐晓丹,赵新辉,周在为,符星学,王凯,史江伟,李艳锋,符辰建,杨远柱. 作物学报. 2018(06)
[5]苹果细胞分裂素响应因子基因MdCRF4的分离与功能鉴定[J]. 安建平,宋来庆,赵玲玲,由春香,王小非,郝玉金. 园艺学报. 2017(11)
[6]植物生长素响应因子ARF与生长发育[J]. 李艳林,高志红,宋娟,王万许,侍婷. 植物生理学报. 2017(10)
[7]基因瞬时表达技术在园艺植物上的应用研究进展[J]. 廖晶晶,牛聪聪,解群杰,邢巧娟,齐红岩. 园艺学报. 2017(09)
[8]YUCCA基因家族在拟南芥胚胎发育过程中的表达模式研究[J]. 刘华彬,张秦莹,门淑珍. 南开大学学报(自然科学版). 2017(04)
[9]外施GA、MeJA、IAA、SA和KT对番茄表皮毛发生的作用[J]. 刘金秋,陈凯,张珍珠,陈秀玲,王傲雪. 园艺学报. 2016(11)
[10]生长素调控种子的休眠与萌发[J]. 帅海威,孟永杰,罗晓峰,陈锋,戚颖,杨文钰,舒凯. 遗传. 2016(04)
博士论文
[1]生长素合成与转运相关基因在玉米雌花序发育过程中的表达分析[D]. 李文兰.山东农业大学 2014
[2]乙烯调控的生长素合成控制体细胞胚胎发生的分子机理[D]. 白波.山东农业大学 2013
硕士论文
[1]低温调控‘凤丹’牡丹种子下胚轴萌发机理的研究[D]. 任秀霞.中国农业科学院 2016
[2]菊花CmPCNT115基因的克隆及功能鉴定[D]. 郑晨.南京农业大学 2015
[3]拟南芥生长素合成YUC基因控制花药发育机理研究[D]. 田蕾.上海师范大学 2013
本文编号:3562438
【文章来源】:四川农业大学四川省 211工程院校
【文章页数】:61 页
【学位级别】:硕士
【部分图文】:
三个嫁接组合植株照片
‘红绵蜜柚’生长素诱导相关基因CgPCNT115的克隆及功能分析7图2IAA的生物合成及运输模式图注:蓝色标注属于IAA合成途径;黑色标注为中间产物;绿色标注属于IAA运输途径。Fig.2ThebiosynthesisandtransportmodelofIAANote:BluelabelingbelongstothesynthesispathwayofIAA;Blacklabelingistheintermediate;GreenlabelingbelongstoIAAtransportationway.1.3.2生长素的运输生长素的极性运输依赖于生长素运输载体,在植物生长发育过程中起着关键作用。生长素的极性运输载体包括输入载体AUX1、输出载体PIN以及兼有输入和输出载体功能的MDR/PGP蛋白[59]。IAA的生物合成及运输如图2所示。三种运输蛋白的部分编码基因已经在许多植物中得到功能验证,也进一步证实了该条途径的有效性。其中,值得关注的是两个输出载体PIN及PGP之间的关系以及是否存在互作。有研究通过共表达手段发现,PGP蛋白与PIN蛋白协同作用增强了对生长素的输出能力及对IAA的亲和性[60]。那么,除此之外,三种运输载体之间是否还存在互作是接下来迫切需要弄清楚的问题。另外,三个蛋白的编码基因家族在生长素极性运输过程中的具体表达模式以及他们之间的相互协调作用是如何进行的也将是后续研究的重要方向。1.3.3生长素的响应生长素的响应及信号转导过程较为复杂。生长素的信号转导过程的完成主要通过Aux/IAA、GH3以及SAUR这三个基因家族进行调控。除此之外,生长素响应因子(ARFs)作为一类特殊的转录因子,能够特异性结合生长素初期响应基因启动子中
‘红绵蜜柚’生长素诱导相关基因CgPCNT115的克隆及功能分析8的AuxRE元件,从而在生长素的信号转导过程中发挥激活或抑制作用。IAA信号转导模式如图3所示。图3IAA信号转导模式图注:红色标注属于IAA信号转导途径;绿色标注属于IAA运输途径;蓝色标注属于IAA生物合成途径。Fig.3TheIAAsignaltransductionmodediagramNote:RedlabelingbelongstoIAAsignaltransductionpathway;greenlabelingbelongstoIAAtransportpathway;andbluelabelingbelongstoIAAbiosynthesispathway.ARFs与其它转录因子一样具有该家族特殊的结构且拥有独立的功能,ARFs蛋白在不同的作物中其分子结构上具有一定的相似性,绝大部分ARF成员由三部分构成。包括N端的DNA结合结构区域B3-typeDBD、中间区域(middleregion)以及C端的二聚化结构区域(C-terminaldomain)[61]。B3-typeDBD区域能够直接特异性的结合生长素响应基因启动子中的顺式作用元件AuxRE,且主要是前面4个碱基TGTC。近些年通过基因组技术分析,越来越多植物中的ARFs家族被相继报道;主要包括模式植物、经济作物、果树等,如水稻、柑橘、番茄、大豆、玉米、香蕉、油菜等[62]。随着研究的不断深入,ARFs对植物生长发育的调控作用也被挖掘出来。首先,在叶和花的生长发育方面是最先被鉴定的[63-65],随后又鉴定出在种子的萌发及发育过程[63]以及果实的发育过程[66]具有调控作用。近些年,也有研究发现ARFs在响应生物和非生物胁迫上发挥重要作用[67-68]。近年来,研究者们对ARFs的作用方式及其保守域的功能给出了新的详细信息[69]。他们证实了ARFs对于生长素通路输出的关键作用,
【参考文献】:
期刊论文
[1]2个14-3-3蛋白基因在香蕉果实成熟过程中的表达分析[J]. 李美英,金志强,杨小亮,贾彩虹,夏启玉,郭静远,贺萍萍,徐碧玉. 热带作物学报. 2018(05)
[2]枳砧红绵蜜柚嫁接黄化苗的光合特性及其CgSGR基因克隆与表达分析[J]. 何文,王燕,陈清,徐世荣,汤浩茹,潘东明,王小蓉. 西北植物学报. 2018(05)
[3]生长素响应因子(ARF)与植物遗传育种[J]. 宋顺,黄东梅,马蔚红,王甲水,周兆禧,许奕. 分子植物育种. 2018(08)
[4]基于CRISPR/Cas9技术的水稻温敏不育基因tms5突变体的构建[J]. 黄忠明,周延彪,唐晓丹,赵新辉,周在为,符星学,王凯,史江伟,李艳锋,符辰建,杨远柱. 作物学报. 2018(06)
[5]苹果细胞分裂素响应因子基因MdCRF4的分离与功能鉴定[J]. 安建平,宋来庆,赵玲玲,由春香,王小非,郝玉金. 园艺学报. 2017(11)
[6]植物生长素响应因子ARF与生长发育[J]. 李艳林,高志红,宋娟,王万许,侍婷. 植物生理学报. 2017(10)
[7]基因瞬时表达技术在园艺植物上的应用研究进展[J]. 廖晶晶,牛聪聪,解群杰,邢巧娟,齐红岩. 园艺学报. 2017(09)
[8]YUCCA基因家族在拟南芥胚胎发育过程中的表达模式研究[J]. 刘华彬,张秦莹,门淑珍. 南开大学学报(自然科学版). 2017(04)
[9]外施GA、MeJA、IAA、SA和KT对番茄表皮毛发生的作用[J]. 刘金秋,陈凯,张珍珠,陈秀玲,王傲雪. 园艺学报. 2016(11)
[10]生长素调控种子的休眠与萌发[J]. 帅海威,孟永杰,罗晓峰,陈锋,戚颖,杨文钰,舒凯. 遗传. 2016(04)
博士论文
[1]生长素合成与转运相关基因在玉米雌花序发育过程中的表达分析[D]. 李文兰.山东农业大学 2014
[2]乙烯调控的生长素合成控制体细胞胚胎发生的分子机理[D]. 白波.山东农业大学 2013
硕士论文
[1]低温调控‘凤丹’牡丹种子下胚轴萌发机理的研究[D]. 任秀霞.中国农业科学院 2016
[2]菊花CmPCNT115基因的克隆及功能鉴定[D]. 郑晨.南京农业大学 2015
[3]拟南芥生长素合成YUC基因控制花药发育机理研究[D]. 田蕾.上海师范大学 2013
本文编号:3562438
本文链接:https://www.wllwen.com/kejilunwen/jiyingongcheng/3562438.html
最近更新
教材专著