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小麦穗发育异常相关基因TaSDA1的定位研究

发布时间:2017-05-20 15:09

  本文关键词:小麦穗发育异常相关基因TaSDA1的定位研究,,由笔耕文化传播整理发布。


【摘要】:小麦(Triticum astivum L.)是世界上种植面积最大的粮食作物,其生产能力直接影响全球粮食安全。当前,随着人口数量的增加和消费水平的提高,对小麦产量潜力的要求越来越高。小麦产量构成三因素是单位面积穗数、穗粒数和千粒重,这些产量性状的优劣都取决于小麦穗部的发育状况。所以,研究发掘与穗部发育相关的基因,对于小麦产量性状的遗传改良具有重要意义。目前研究小麦穗部发育相关基因的报道较少。利用突变体来研究穗部发育相关基因,有利于探明穗部发育的遗传机理,从而为应用分子育种提升小麦产量潜力奠定理论基础。本研究所用的试验材料是在育种试验田发现的穗发育畸形突变体(SDA1),由隐性多效性单基因(TaSDA1)控制,表现为穗部发育萎缩、雄蕊完全败育、雌蕊活力极低、很难结实、叶片变窄、植株变矮等。对基因TaSDA1的定位研究包括:调查SDA1与野生型的主要农艺性状差异;分析SDA1与野生型的叶片差异蛋白;利用由突变杂合体与“陕麦94”杂交构建的F2群体开展基因定位研究。研究内容与结果如下:1、对SDA1与野生型的主要农艺性状的调查包括小麦的株高、抽穗期、旗叶长与宽、穗长、小穗数等。对数据结果进行独立样本t测验,发现SDA1穗色变浅,小穗数变少、穗长变短,小花发育异常,雄蕊完全败育、雌蕊萎缩,很难结实;植株发育变缓,抽穗期推迟,株高变矮,旗叶变窄。2、利用SSR微卫星标记,通过混合分离分析(BSA)和群体连锁分析对F2分离群体进行基因定位。确定基因Ta SDA1位于小麦6B染色体分子标记barc136和SWES181之间,分别为24.49cM和11.08cM的遗传距离。3、利用双向电泳技术对SDA1与其野生型材料的抽穗期叶片总蛋白进行双向电泳,并对差异的蛋白质点做质谱。质谱图用软件PDQuest8.0.1分析,共得出27个差异点蛋白,其中23质谱检测成功,与野生型相比,SDA1有6个表现缺失,17个蛋白表达下调。这些差异蛋白参与植物的光合作用、抗氧胁迫、能量代谢、抗逆境胁迫、mRNA编辑过程以及蛋白合成等过程。从另一方面证明TaSDA1基因具有多效性。4、对获得的差异蛋白进行荧光定量PCR验证。发现核酮糖1,5二磷酸羧化酶大亚基蛋白(SSP2)、叶绿体PtrTox结合蛋白(SSP6)、翻译延伸因子(SSP15)、磷酸丙糖异构酶(SSP12)在转录水平与蛋白表达结果一致。表明这些表达差异蛋白的基因的转录水平与蛋白表达的结果一致。
【关键词】:小麦(Triticum aestivum L) 穗突变体 基因定位 差异蛋白
【学位授予单位】:西北农林科技大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2016
【分类号】:S512.1
【目录】:
  • 摘要5-7
  • ABSTRACT7-11
  • 第一章 文献综述11-20
  • 1.1 小麦产量相关性状11-12
  • 1.1.1 植物穗部相关性状的研究进展11-12
  • 1.1.2 小麦穗部性状的研究12
  • 1.2 蛋白质组学的基因定位应用12-15
  • 1.2.1 双向电泳技术应用及发展12-13
  • 1.2.2 质谱技术( Mass Spectrometry, MS)13
  • 1.2.3 双向电泳技术在植物基因组中的应用13-15
  • 1.2.4 利用双向电泳技术研究小麦旗叶叶片与穗部发育研究进展15
  • 1.3 分子标记技术在基因定位中的应用15-16
  • 1.4 荧光定量技术16-18
  • 1.4.1 荧光定量技术的定量分析方法17-18
  • 1.4.2 荧光定量PCR技术在实践中的应用18
  • 1.5 本研究目的意义18-19
  • 1.6 研究路线19-20
  • 第二章 突变体与野生型主要农艺性状的研究20-22
  • 2.1 材料与方法20-21
  • 2.1.1 供试小麦材料20
  • 2.1.2 调查分析方法20-21
  • 2.2 结果与分析21
  • 2.3 讨论21-22
  • 第三章 TaSDA1基因定位22-26
  • 3.1 试验材料22
  • 3.2 基因定位方法22-23
  • 3.2.1 CTAB提取DNA方法22-23
  • 3.3 PCR扩增和标记检测23-24
  • 3.3.1 PCR扩增23
  • 3.3.2 聚丙烯酰氨凝胶电泳23-24
  • 3.4 结果与分析24-25
  • 3.5 讨论25-26
  • 第四章 突变体与野生型叶片差异蛋白分析与荧光定量验证26-35
  • 4.1 试验材料26
  • 4.2 叶片蛋白双向电泳26-28
  • 4.2.1 TCA/丙酮沉淀法提取叶片蛋白26
  • 4.2.2 浓度的测定26
  • 4.2.3 双向电泳26-27
  • 4.2.4 凝胶染色27
  • 4.2.5 凝胶图谱分析27
  • 4.2.6 蛋白质谱27
  • 4.2.7 差异蛋白的Q-PCR分析27-28
  • 4.2.8 差异表达蛋白质的功能分析28
  • 4.3 叶片蛋白双向电泳结果28-31
  • 4.3.1 叶片总蛋白 2-DE凝胶图28-29
  • 4.3.2 差异蛋白的分析29-30
  • 4.3.3 差异表达蛋白荧光定量分析30-31
  • 4.4 讨论31-35
  • 4.4.1 SDA1光合作用蛋白表达下调31-32
  • 4.4.2 SDA1植株的抗氧能力有所下降32
  • 4.4.3 SDA1植株在能量代谢方面下降32-33
  • 4.4.4 SDA1抗胁迫能力代谢下降33
  • 4.4.5 SDA1的m RNA编辑及蛋白合成过程受阻33-34
  • 4.4.6 SDA1中其他蛋白变化34-35
  • 第五章 结论35-36
  • 5.1 突变体SDA1与野生型的农艺性状差异35
  • 5.2 TaSDA1基因定位结果35
  • 5.3 突变体SDA1与野生型蛋白差异35-36
  • 参考文献36-42
  • 附表42-46
  • 致谢46-47
  • 作者简介47

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本文编号:381985

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