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Lux发光基因标记大肠杆菌模型的构建及其生物膜的研究

发布时间:2017-09-13 04:03

  本文关键词:Lux发光基因标记大肠杆菌模型的构建及其生物膜的研究


  更多相关文章: lux基因 大肠杆菌 生物膜 D-甘露糖


【摘要】:Lux发光基因可编码合成荧光素酶,进而催化底物进行发光反应,产生波长约为450-490nm的可见蓝绿光,其作为报告基因被迅速地应用于在线观测、环境监测、食品安全控制、活体动物检测等多种研究领域。细菌生物膜是细菌对恶劣环境产生的应激反应而形成的一种自我保护状态,细菌形成生物膜后难以被除杀灭,给食品加工、医疗卫生等领域带来危害和难题。本研究将质粒pHSG396-P.luxCDABE(携带发光光杆状菌lux基因片段)导入大肠杆菌DH5α,以检测发光情况和酶切电泳验证等手段,筛选出成功表达发光的重组大肠杆菌,成功构建形成生物膜能力良好的重组发光大肠杆菌模型。对重组发光大肠杆菌的生理特性及生物膜与发光强度的关系进行了深入研究,试验得出以下结论:1.重组发光大肠杆菌的生理特性:(1)以新鲜LB液体培养基培养重组发光大肠杆菌,测定其生长曲线和发光曲线。结果显示,重组发光大肠杆菌在培养的0-3 h为调整期,4-8 h为对数期,第9 h进入稳定期;在调整期和对数期初期发光微弱,进入对数期后,发光强度快速增长,在第9 h达到培养阶段的最大发光值2510 RLU,进入稳定期后,发光强度逐渐减弱。(2)不同的培养环境(IPTG浓度、pH、Cml浓度、癸醛浓度、温度)下,测定重组发光大肠杆菌的生长OD600nm值和发光强度。结果显示,IPTG加入量小于0.2 mg/mL时,对发光强度的促进作用微弱,超过这个量则对发光强度起到了抑制作用;其在pH 5-9范围内能够发光,pH 7时生长和发光强度最大,pH 8弱碱性环境中发光强度高于pH 6弱酸性环境(生长浓度相同);Cml添加量为0-37.5μg/mL时,对其生长和发光强度影响微弱,超过此范围,则对生长有一定抑制作用;癸醛的添加对发光强度无促进作用;在37℃下,其生长和发光强度达到最大值,最高耐受温度为43℃;室温下,前15 min发光强度呈下降趋势,之后趋于平缓,在2 h内,发光强度始终处于400 RLU以上。2.重组发光大肠杆菌生物膜与发光强度的关系:(1)在四种因素(pH、D-甘露糖、菌悬液浓度、Cml浓度)条件下培养重组发光大肠杆菌生物膜,以结晶紫染色法和测定发光强度法对生物膜的生成量进行测定。结果显示,pH 8的弱碱性条件比pH 7的中性条件更利于生物膜的生长;D-甘露糖为培养重组发光大肠杆菌生物膜所必需,添加量为2.0%时,生物膜形成量最大;菌悬液OD600nm值为0.3时,为最佳配比,最利于生物膜的形成,过高或过低均不利于生物膜的生长;Cml浓度为12.5μg/mL时,为本次试验培养重组发光大肠杆菌生物膜的最适浓度。(2)将发光强度法得到的数据与结晶紫染色法数据进行回归分析。结果显示,两种方法得到的数据线性相关性良好(R-Sq90%),说明在适宜的培养条件下,发光强度法同样可以衡量细菌生物膜的生成量。
【关键词】:lux基因 大肠杆菌 生物膜 D-甘露糖
【学位授予单位】:西北农林科技大学
【学位级别】:硕士
【学位授予年份】:2016
【分类号】:Q78
【目录】:
  • 摘要5-7
  • ABSTRACT7-12
  • 第一章 文献综述12-23
  • 1.1 生物发光12-13
  • 1.1.1 发光细菌12
  • 1.1.2 发光细菌发光机理12-13
  • 1.1.3 发光细菌的lux系统13
  • 1.2 细菌生物膜13-16
  • 1.2.1 细菌生物膜的特点14
  • 1.2.2 生物膜的形成14-16
  • 1.3 Lux发光基因和细菌生物膜的研究现状16-21
  • 1.3.1 lux发光系统的发展16
  • 1.3.2 lux基因的应用特性研究16-18
  • 1.3.3 lux基因作为标记基因和报告基因的应用18-19
  • 1.3.4 lux基因与其他报告基因的比较19
  • 1.3.5 lux系统的优缺点19-20
  • 1.3.6 细菌生物膜的体外研究现状20-21
  • 1.4 目的意义和研究内容21-23
  • 1.4.1 研究目的意义21
  • 1.4.2 研究内容21-22
  • 1.4.3 技术路线22-23
  • 第二章 产生物膜大肠杆菌的筛选和重组发光大肠杆菌模型的构建及验证23-29
  • 2.1 引言23
  • 2.2 材料与方法23-27
  • 2.2.1 供试菌株与质粒23-24
  • 2.2.2 酶、试剂、材料和培养基24
  • 2.2.3 主要试验仪器与设备24-25
  • 2.2.4 试验方法25-27
  • 2.3 结果分析27-28
  • 2.3.1 产生物膜大肠杆菌的选择27
  • 2.3.2 重组发光大肠杆菌的验证27-28
  • 2.4 小结28-29
  • 第三章 Lux发光基因大肠杆菌模型生理特性研究29-37
  • 3.1 引言29
  • 3.2 材料与方法29-31
  • 3.2.1 试验菌株与试剂29
  • 3.2.2 主要试验仪器与设备29-30
  • 3.2.3 试验方法30-31
  • 3.3 结果分析31-35
  • 3.3.1 重组发光大肠杆菌生长曲线与发光曲线的测定31-32
  • 3.3.2 IPTG对重组发光大肠杆菌生长和发光强度的影响32
  • 3.3.3 pH对重组发光大肠杆菌生长和发光强度的影响32-33
  • 3.3.4 Cml浓度对重组发光大肠杆菌生长和发光强度的影响33
  • 3.3.5 癸醛浓度对重组发光大肠杆菌发光强度的影响33-34
  • 3.3.6 温度对重组发光大肠杆菌生长和发光强度的影响34-35
  • 3.3.7 重组发光大肠杆菌发光稳定性测定35
  • 3.4 小结35-37
  • 第四章 Lux发光基因大肠杆菌模型生物膜产生量和发光强度关系研究37-46
  • 4.1 引言37
  • 4.2 材料与试剂37-38
  • 4.2.1 试验材料37-38
  • 4.2.2 主要仪器与设备38
  • 4.3 试验方法38-40
  • 4.3.1 大肠杆菌生物膜的培养38-39
  • 4.3.2 测定生物膜发光强度39
  • 4.3.3 结晶紫染色法测定生物膜39
  • 4.3.4 不同培养条件对大肠杆菌生物膜的影响39-40
  • 4.4 结果与分析40-44
  • 4.4.1 pH对大肠杆菌生物膜的影响40-41
  • 4.4.2 D-甘露糖添加量对大肠杆菌生物膜的影响41-42
  • 4.4.3 菌悬液浓度对大肠杆菌生物膜的影响42-43
  • 4.4.4 Cml浓度对大肠杆菌生物膜的影响43-44
  • 4.4.5 结晶紫染色法和发光强度法回归分析44
  • 4.5 小结44-46
  • 第五章 结论与展望46-47
  • 5.1 结论46
  • 5.2 论文创新点46
  • 5.3 展望46-47
  • 参考文献47-51
  • 附录51-52
  • 致谢52-53
  • 作者简介53

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