《南方医科大学》2012年硕士论文

发布时间：2016-09-30 15:04

  本文关键词：miRNA-125b-1对乳腺癌SKBR-3细胞放化疗敏感性的影响，，由笔耕文化传播整理发布。

《南方医科大学》 2012年

miRNA-125b-1对乳腺癌SKBR-3细胞放化疗敏感性的影响

胡斌  

【摘要】：研究背景 乳腺癌(breast cancer)是指发生于乳腺导管上皮细胞的恶性肿瘤,是女性常见的肿瘤之一,约占全身恶性肿瘤的7%-10%。全世界每年新发乳腺癌约150万例,死亡约57万例。北美、欧洲等西方发达国家为高发区,其发病率为亚、非、拉地区的4倍左右。我国虽属乳腺癌低发区的国家,但近20年来发病率有增高趋势,特别是在北京、上海、广州等经济发达地区,乳腺癌已成为威胁女性健康的重要危害,有可能超过宫颈癌而居女性恶性肿瘤的首位。乳腺癌的发生是一个复杂的生物学过程,发生机制涉及多基因的突变,包括癌基因激活、抑癌基因失活以及其它相关调节基因的突变,从而使细胞基因组失去稳定性,最终导致肿瘤的发生。又由于女性乳房淋巴管网,回流静脉之间吻合丰富,乳腺癌早期即可发生转移至肺、骨肝、脑等,致使治疗变得更加困难,死亡率大大增加。乳腺癌治疗主要以传统的手术治疗为主,术后辅以局部或全身的放射治疗、化疗及内分泌治疗。近年来,随着分子生物学和分子免疫学研究的迅速进展,以及肿瘤发生基因学说研究的突飞猛进,给乳腺癌的早期诊断带来新的希望。乳腺癌在基因治疗方面的研究包括抑制原癌基因的功能、恢复抑癌基因的功能、基因免疫治疗、自杀基因治疗、多药耐药基因治疗、抗肿瘤血管形成基因治疗、凋亡基因治疗、使用溶瘤病毒等。 在对线虫(C. elegans)的研究中取得的令人振奋的发现之一就是鉴定出一类调控发育的微小RNA (microRNA,miRNA)。在1993年,miRNA首次在秀丽隐杆线虫中被发现。现在已知miRNA广泛存在于真核生物细胞内,是最大的基因家族之一,大约占到整个基因组的1%,每个miRNA可以调节上百个基因的表达,而多个miRNAs可能以同一的方式同时作用于一个靶点来下调多种蛋白质表达。在精细调控基因表达及生物生长发育过程方面发挥着重要作用。miRNA是一类长约22nt的非编码功能小RNA,它在许多生物中都有表达。miRNA原初转录本(Pri-miRNA)经过核内和胞质中一系列的加工修饰后形成成熟的miRNA.首先,miRNA基因在RNA polymeraseⅡ作用下,转录生成pri-miRNA;然后在内切酶Drosha作用下,pri-miRNA释放出60-70nt的前体(Pre-miRNA),后者具有不完美的发卡结构；最后,Pre-miRNA在exportin5作用下进入胞质,经DICER切割形成成熟miRNA。成熟的miRNA通过与靶基因3'非翻译区(3'UTR区)形成不完全配对,从而抑制靶基因翻译,或形成接近完全的配对,导致靶mRNA降解。最近发现在人类基因组中,大约有533个miRNA基因座位,数目大约为蛋白编码基因的1%,但可以调控大约1/3的人类基因,说明miRNA是一个调控网络。miRNA在很多生物的生理和病理过程中发挥重要作用,影响细胞发育、凋亡和增殖,并与疾病发生相关。越来越多的证据表明,许多肿瘤的发生与发展与miRNA的异常表达相关,例如乳腺癌、脑癌、慢性粒细胞自血病、结肠癌、肝癌和肺癌等。所以一些miRNAs可能在细胞增殖、分化、凋亡等生物进化过程中起重要作用。Esquela-Kerscher,A等报道,使用miRNAs的基因治疗可能是抑制肿瘤细胞增殖的有效方法。如let-7已被证实可以抑制RAS癌基因,miR-15和miR-16可以抑制BCL2基因活性。人类大多数miRNAs位于mRNA蛋白质编码或非编码内含子区。其他miRNAs可能远离染色体转录区,在mRNA非编码外显子内或者在mRNA3UTRs非编码区,或与其他miRNAs聚集在一起(如在19号染色体上聚集有54个新发现的miRNAs)。 miRNA-125b-1就是miRNA其中一员,并且在大多数乳腺癌细胞系表达下降,推测其发挥抑癌作用。 Scott, G K等研究发现,miRNA-125b-1可通过靶向作用于HER2和HER3mRNA和蛋白质水平,抑制乳腺癌细胞生长。Hofmann, M (?)等通过MDA-MA-435细胞研究发现,miRNA-125b-1可以靶向作用于c-raf-1mRNA3'UTR区,使得C-Raf蛋白以及下游靶点细胞周期蛋白D1含量下降。Li,W等报道,在乳腺癌细胞系,miRNA-125b-1表达增加可以抑制ERKl/2的磷酸化,减低细胞的转移和侵袭性。并且miRNA-125b-1的靶点有：ras相关蛋白Rab-13(RAB13)、丝苏氨酸蛋白激酶13(AURKC)、酪氨酸蛋白激酶受体Tie-1前体(TIE1)、磷酸肌酸3激酶调节亚基5(PIK3R5)等,这些结果显示,miRNA-125b-1通过蛋白激酶途径抑制细胞增生。在其他方面,Komagata S等,miRNA-125b-1前体在MCF-7细胞中可引起维生素D3羟化酶(CYP24)含量下降,推测癌组织中CYP24高表达与miRNA-125b-1含量下降相关。Smirnov, D A等研究显示,ATM基因通过调节使转录因子CDX2含量增加,后者作用于miRNA-125b-1使其含量下降,而miRNA-125b-1以TNFSF4为作用靶点。ATM-CDX2-(miRNA-125b-1)-TNFSF4信号通路可能是乳腺癌等疾病患病风险增加的调节机制。另外,Iorio,M V等,miRNA-125b-1的靶点有癌基因YES, ETS1、 TEL、 AKT3、生长因子受体FGFR2、丝裂素活化信号转移途径分支：VTS58653,MAP3K10, MAPK14等。 在前列腺癌,雄激素可以诱导前列腺癌细胞miRNA-125b-1表达增加,后者可以抑制Bakl(凋亡诱导因子)基因的表达,最终刺激癌细胞的生长。miRNA-125b-1在前列腺癌的发生过程中起癌性作用。而前列腺癌细胞中miRNA-125b-1含量的变化报道不一。 在神经系统,在神经胶质瘤细胞系,miRNA-125b-1可以下调细胞周期蛋白CDK6、CDC25A,起到抑制细胞增殖的作用,亦可以靶向作用于DGAT1和SGPL1,并对一些凋亡基因有负性调节,例如可以使BMF(细胞凋亡相关蛋白Bcl-2修复因子)含量下降进而引起Bcl-2表达增加,诱导细胞凋亡。另外,很多学者在探讨miRNAs在阿尔茨海默病以及神经元分化过程中的作用,其中有miRNA-125b-1的参与。如Wu,L等在诱导鼠P19胚胎细胞分化为神经细胞过程中,miR-125a和miRNA-125b-1通过lin-28癌基因的3'非转录区的两个保守反应区,可引起lin-28癌基因表达抑制。 在血液系统,miRNA-125b-1在巨噬细胞分化成熟方面起重要作用,例如,Androulidaki,A等,LPS作用于巨噬细胞后,可以通过LPS-(PI3K／AKT)-mi RNAs-TNF来起作用,miRNA-125b-1也参与其中。由此,我们亦可以在乳腺癌细胞系中对此信号通路进行研究。另外,在儿童急性髓细胞性白血病(AML)、小儿急性淋巴细胞白血病、骨髓增生异常综合症(MDS)和急性髓性白血病等方面都有学者探讨miRNAs在发病过程中所起的作用。 在头颈部鳞癌、未分化甲状腺癌、肝癌、肺癌、膀胱癌、泌尿道上皮癌、卵巢癌、子宫内膜异位症、牛皮癣、21三体综合症等方面都有miRNAs(包含miRNA-125b-1)的研究。 国内在乳腺癌对于miRNA-125b-1研究很少。沈淑蓉等,使用Realtime RT-PCR方法检测42例乳腺浸润性导管癌及癌旁非肿瘤乳腺组织中miRNA-125b-1的表达,发现miRNA-125b-1在乳腺浸润性导管癌中表达异常,可能和乳腺癌的侵袭转移等恶性生物学行为有关。 c-erbB-2原癌基因,又称HER-2/neu基因,定位于人染色体17q21,编码一种具有酪氨酸蛋白激酶(TPK)活性的物质p185蛋白,即HER-2/neu蛋白。研究发现P185蛋白与表皮生长因子受体(EGFR)有高度的同源性,它可能与未知配体结合后,通过增加蛋白激酶的活性,促进细胞的分裂、增殖和转化。C-erbB2/HER-2/neu基因的扩增和p185erbB2蛋白的过度表达见于多种恶性肿瘤,包括乳腺癌、卵巢癌、结肠癌、子宫内膜癌、胃癌、前列腺癌和肺腺癌。在大多数乳腺癌患者体中,HER-2/neu呈高表达。因此,以HER-2/neu为靶标进行肿瘤治疗已受到广泛关注。在HER-2/neu蛋白质水平上,Genentech公司开发出针对erbB2的抗体herceptin已经被美国FDA批准在临床应用,对erbB2过表达的肿瘤具有很好的治疗效果,herceptin单药对转移性乳腺癌的有效率约15％, herceptin能诱导erbB2过表达的乳腺癌SKBR3细胞停止于G0/Gl期,对SKBR3细胞增殖抑制率达63%。Herceptin被证实具有拮抗生长信号系统、趋化免疫细胞以攻击肿瘤细胞及增强化疗诱导的细胞毒等作用因此,erbB2受体已成为一个新的抗肿瘤靶点。在HER-2/neu基因水平,有人通过RNA干扰(RNAinterference,RNAi)基因阻断技术,有人通过癌基因反义寡脱氧核苷酸技术,都能诱导乳腺癌细胞SKBR-3的凋亡,细胞活力减低,使p185蛋白表达降低。但对miRNA-125b-1作用于HER-2/neu癌基因的研究非常少。传统抗ErbB2单克隆抗体herceptin与ErbB2受体胞外结合域进行特异结合,抑制ErbB2同源二聚化,达到阻断下游信号传导的目的。但这种方法对于缺乏细胞外配体结合域的受体(P95ErbB2)以及ErbB2异源二聚体(ErbB2/ErbB3、ErBl/ErbB2、 ErBI/ErbB3)无效。而miRNA-125b-1可与c-erbB-2癌基因mRNA3' UTR区特异性结合,在转录和翻译水平抑制ERBB2. 本研究通过使用miRNA-125b-1作用于SKBR-3细胞(Her2阳性),来探讨miRNA-125b-1对Her2基因表达及对细胞放化疗敏感性的影响。全新的作用机制决定了miRNA-125b-1更能从mRNA水平阻断ErbB2受体信号传到通路,达到抑制肿瘤细胞的作用。这为我们对ErbB2阳性的乳腺癌的治疗提供了新方法。本研究拟合成miRNA-125b-1,利用脂质体将miRNA-125b-1导入乳腺癌SKBR-3细胞中,抑制或封闭ErbB2基因的表达,从而达到抑制肿瘤的生长、增值、分化和诱导其凋亡的目的。同时检测miRNA-125b-1是否能够提高乳腺癌对放疗的敏感性。另外,miRNA-125b-1具有增强化疗效果的作用,应用针对Her2的miRNA-125b-1,同时应用紫杉醇等化疗药物,检测是否能够提高乳腺癌对紫杉醇等化疗药物的敏感性。这种肿瘤治疗方法把小干扰RNA同放化疗进行了完美的结合,具有极大的临床研究价值。对miRNA-125b-1应用于Her2阳性的乳腺肿瘤提供了理论基础,也为应用于其他实体肿瘤的治疗提供重要的参考价值。 目的 探讨miRNA-125b-1对乳腺癌SKBR-3细胞放化疗敏感性的影响,及其对靶基因HER-2蛋白表达的影响。 方法 合成miRNA-125b-1并通过lipofectamineTM2000转染SKBR-3细胞,分别用逆转录-聚合酶链反应(reverse transcription-polymerase chain reaction,RT-PCR)和Western Blot法检测IER-2mRNA和蛋白质表达水平的变化；流式细胞仪检测细胞周期；四甲基偶氮唑蓝(methyl thiazolyl tetrazolium, MTT)法检测细胞增殖抑制率；经不同剂量X线照射后,平板克隆形成实验计算细胞存活率,用单击多靶数学模型进行曲线拟合作图,求曲线参数D0、Dq和N。值,比较细胞放射敏感性的变化。MTT法观察miRNA-125b-1-1对紫杉醇作用于SKBR-3细胞增殖的抑制情况。应用SPSS13.0统计软件进行统计学分析。计量资料用x±s表示,使用Shapiro Wilk法进行正态分布检验,P0.05为满足正态分布；使用Leven'test进行方差齐性检验,PO.05为满足方差齐性；在方差不齐时,选择近似F检验Welch法方差分析。对细胞周期实验结果做秩和检验后再调整检验水准做两两比较；细胞增殖实验结果使用Mauchly's test of sepericity进行球形检验,球形检验统计量PO.05不拒绝球形假设,并采用重复测量方差分析；RT-PCR和Western blot定量结果采用单因素方差分析,P0.05为差异有统计学意义。 结果 miRNA-125b-1转染后的SKBR-3细胞中HER-2mRNA (F=447.779, P=0.000)和蛋白质水平显著下降(F=10.073,P=0.012)；转染后的SKBR-3细胞出现了G2M期阻滞；miRNA-125b-1组细胞增殖抑制率与阴性对照组相比,差异有显著性(F=139.590,P=0.000)；曲线拟合后显示,转染后的细胞(D0=1.866, Dq=2.681, N=4.207)与对照组(D0=2.513, Dq=4.097, N=5.107)相比D0,Dq和N值均下降(SER=1.347),提示细胞放射敏感性增加。用miRNA-125b-1处理组细胞的IC50与未处理组相比下降2.69倍(P0.05),由此表明,miRNA-125b-1可增加乳腺癌SKBR-3细胞对紫杉醇的敏感性。 结论 miRNA-125b-1可使乳腺癌SKBR-3细胞的放射敏感性增加,miRNA-125b-1可增强乳腺癌SKBR-3细胞对紫杉醇的化疗敏感性。为HER-2阳性的乳腺癌提供新的治疗方法。

【关键词】：
【学位授予单位】：南方医科大学
【学位级别】：硕士
【学位授予年份】：2012
【分类号】：R737.9
【目录】：

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1 杨才明,夏淑君;HER-2/neu基因蛋白、BRCA1和BRCA2基因突变检测在乳腺癌诊断和治疗中的临床意义[J];标记免疫分析与临床;2005年01期

2 钟国成;敬新蓉;赵碧;李硕;徐明;孙薏;闵敏;廖皓;张鹤腾;陈健;;HER-2/neu胞外配体第2结构域致敏的DC与CIK共培养对高表达HER-2/neu乳腺癌细胞杀伤作用的研究[J];中国输血杂志;2008年04期

3 姜北海,刘文斌,孟麟,吴健,寿成超;抗人p185~(erbB2)人-鼠嵌合抗体真核表达载体的构建表达及活性测定[J];北京大学学报(医学版);2004年05期

4 高玲;李峰生;陈肖华;董波;张军权;饶亚岚;丛悦;毛秉智;;ErbB2 RNA干扰联合~(60)Co γ照射对U251细胞增殖及凋亡的影响[J];辐射研究与辐射工艺学报;2007年05期

5 刘方欣,谢娟,李少林,张玉诺;EGF受体介导c-erbB2癌基因反义寡核苷酸对p185蛋白表达的影响[J];贵州医药;2005年01期

6 郎海滨;糜漫天;朱俊东;;Herceptin联合9-顺式视黄酸对ErbB2阳性乳腺癌细胞的抑制作用及其相关分子机制的研究[J];免疫学杂志;2007年06期

7 付晶鑫;沈建根;;乳腺癌基因治疗研究进展[J];实用肿瘤杂志;2007年02期

8 张树庸;2002年诺贝尔生理学、医学奖[J];实验动物科学与管理;2003年02期

9 沈淑蓉;沈贤;朱仁武;姜阳贵;施俊义;;乳腺浸润性导管癌中miR-125b的表达及其临床意义[J];温州医学院学报;2009年03期

10 许华;;乳腺癌基因治疗的新进展[J];医学研究通讯;2005年03期

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1 朱孝峰,刘宗潮,谢冰芬,蔡丽玲,杨大俊;SUCI02选择性抑制HER-2/neu受体酪氨酸激酶磷酸化及其对HER-2/neu过表达乳腺癌细胞生长的影响[J];癌症;2003年08期

2 陈健;钟国成;郭坤元;;过继免疫细胞治疗进展[J];中国输血杂志;2008年10期

3 赵东利;党诚学;隋燕霞;;C-erbB2基因siRNA质粒的构建、鉴定及转染[J];南方医科大学学报;2009年09期

4 陈伟;王留兴;樊青霞;赵培荣;王瑞林;陆士新;;三氧化二砷和肼苯哒嗪体外诱导雌激素受体α表达强弱的比较[J];肿瘤基础与临床;2007年03期

5 杨双宁;王丽萍;张毅;;肺癌免疫治疗现状[J];肿瘤基础与临床;2010年05期

6 宋卫;陆肖玮;丁云;毛锦峰;;绝经后乳腺癌C-erbB-2、ER和PR表达及预后相关分析[J];海南医学院学报;2010年07期

7 汪冉冉;刘东波;罗婷;;雌激素饥饿增强TRAIL诱导乳腺癌细胞凋亡[J];华西医学;2009年04期

8 周桂娥;韦汉荣;李文庄;;乳腺癌等中心1/4切线野照射技术分析[J];中外医疗;2008年18期

9 江永青;熊向阳;余乐涵;;大蒜素对人乳腺癌细胞株的抑制作用[J];实用临床医学;2008年05期

10 何志贤;倪启超;陈锦鹏;;乳腺癌132例术后局部复发因素探讨[J];南通医学院学报;2009年04期

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1 陈韶蕊;7位含氧/含氮甾体芳香酶抑制剂的合成研究[D];天津大学;2010年

2 王可人;乳腺癌与DNA修复基因多态性的相关性分析[D];吉林大学;2008年

3 仇玮祎;雌激素受体共调节因子RSRC1的生物学功能研究[D];中国人民解放军军事医学科学院;2009年

4 郭晓芳;表皮生长因子受体EGFR和HER2配体寡肽与力达霉素组成的双特异性强化融合蛋白的构建与抗肿瘤活性研究[D];中国协和医科大学;2009年

5 叶晓丹;孤立肺结节MDCT动态增强及临床应用[D];第二军医大学;2009年

6 李凡;凋亡抑制蛋白Livin在人乳腺癌中作用的研究[D];重庆医科大学;2009年

7 陶冀;红花多糖抑制人乳腺癌细胞MCF-7增殖及对其转移能力的影响[D];黑龙江中医药大学;2012年

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1 刘竞;散发性乳腺癌组织EMSY基因突变的研究[D];广西医科大学;2011年

2 原晓勇;女性乳腺癌患者血中性激素水平变化的研究[D];泸州医学院;2011年

3 王艳杰;乳积方预防激素受体阴性乳腺癌术后复发转移的研究[D];广州中医药大学;2011年

4 单玉洁;中危乳腺癌患者预后影响因素及辅助化疗方案的疗效分析[D];河北医科大学;2011年

5 杨雅洁;胸苷激酶1在乳腺癌中的表达及其临床意义[D];南昌大学;2011年

6 钟琰;短发夹RNA沉默PRL-3基因表达对乳腺癌MCF-7细胞生长抑制作用[D];南方医科大学;2011年

7 朱宇熹;去甲长春碱同步增敏放射治疗非小细胞肺癌的实验及临床研究[D];重庆医科大学;2002年

8 武艳;亚甲基四氢叶酸还原酶基因C677T多态性与乳腺癌、卵巢癌易感性关系的探讨[D];吉林大学;2007年

9 赵百捷;肿瘤血管靶向的长循环阿霉素微乳的药动学研究[D];吉林大学;2008年

10 范秀丽;乳腺密度、血清瘦素水平等相关因素在乳腺癌发病机制中的研究[D];山西医科大学;2009年

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1 毛志达,蔡光龙,黄燕坤,庄承海,董家权,管迅行,胡伟汉,黄惠英;羧甲基茯苓多醣配合放射治疗鼻咽癌近期效应观察[J];癌症;1987年01期

2 谷化平,尚培中,李志钢,李全华,苏红;CD15、c-erbB-2、PCNA和组织蛋白酶D在食管癌中的表达及相关性研究[J];癌症;2000年05期

3 朱孝峰,曾益新,杨大俊;计算机辅助设计HER2/neu酪氨酸激酶小分子抑制剂及其生物活性研究[J];癌症;2001年04期

4 刘剑勇,张春燕,赵荫农,唐凯,张力图,李挺;树突细胞对肿瘤浸润淋巴细胞抗乳腺癌免疫活性影响的研究[J];癌症;2003年10期

5 韩梅,姜北海,吴健,寿成超;抗p185~(erbB2)单抗的制备及其生物学活性[J];北京大学学报(医学版);2003年02期

6 鲍依稀,许相儒;C-erbB-2癌基因及其表达产物的检测在临床上的应用[J];国外医学(临床生物化学与检验学分册);1998年01期

7 袁守军,汤仲明;反义药物药理学的研究进展[J];国外医学.药学分册;1998年05期

8 谢娟,郭坤亮,李少林;叶酸受体介导~(99m)Tc标记c-erbB2癌基因反义寡核苷酸的乳腺癌细胞摄取率[J];贵州医药;2005年01期

9 谢娟,刘方欣,王颖,李少林;~(99)Tc~m-EC-ASODN反义探针的合成和标记[J];核技术;2005年06期

10 宋辉,沈波,徐健;人乳腺癌C-erbB-2及nm23基因表达及临床意义[J];河南肿瘤学杂志;2003年02期

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1 赵苏瑛;李岷;;miRNA与乳腺癌的关系及其研究进展[J];检验医学与临床;2010年18期

2 王洁;陈忠平;;miRNA在胶质瘤化疗耐药中的研究进展[J];中国神经肿瘤杂志;2011年02期

3 孔燕;梁志清;;miRNA与肿瘤及子宫颈癌的研究进展[J];重庆医学;2008年16期

4 张博;孙强;杨晓;尉承泽;;MicroRNAs与乳腺癌研究[J];现代生物医学进展;2009年07期

5 易伟峰;;Micro RNA在胶质瘤组织表达差异谱的研究[J];中国现代医学杂志;2009年08期

6 曹锴;狄建彬;魏文祥;庞智;;miRNA在结肠癌早期诊断和筛选中的作用[J];世界华人消化杂志;2009年35期

7 云天洋;刘阳;;肿瘤相关microRNA及其表观遗传学调控机制[J];军医进修学院学报;2010年02期

8 宗飒;张绪超;吴一龙;;miRNAs及其基因启动子DNA甲基化在肿瘤研究中的进展[J];肿瘤防治研究;2010年12期

9 吴修胤;佟冬冬;张风河;;微小RNA与口腔鳞状细胞癌[J];生物医学工程研究;2011年01期

10 郑玉姝;赵朴;赵宏坤;;microRNA及其在癌症和病毒感染治疗中的应用潜力[J];国外医学(药学分册);2006年06期

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1 成海兰;姜孝成;;miRNA与水稻种子活力的相关性研究[A];第二届全国种子科学与技术学术研讨会论文摘要集[C];2011年

2 付彦;吴徐行;杨德英;谢跃;古小彬;王淑贤;杨光友;;犬恶丝虫成虫miRNA的研究[A];中国畜牧兽医学会家畜寄生虫学分会第六次代表大会暨第十一次学术研讨会论文集[C];2011年

3 李霞;;MiRNA-miRNA Synergistic and Subpathway Network[A];第四届全国生物信息学与系统生物学学术大会论文集[C];2010年

4 何卓晶;洪艳;;病毒miRNA研究进展概述[A];2011年浙江省医学会医学病毒学分会、医学微生物与免疫学分会学术年会论文汇编[C];2011年

5 邹丰;刘丽江;;miRNA在肿瘤转移中的研究进展[A];第九届全国肿瘤转移学术大会暨2011年黑龙江省医学会肿瘤学年会摘要集[C];2011年

6 陈黎;李宁;;miRNA在猪卵母细胞成熟过程中作用[A];“基因、进化与生理功能多样性”海内外学术研讨会暨中国生理学会第七届比较生理学学术会议论文摘要[C];2009年

7 王星果;郁建锋;龚道清;顾志良;;鸡脂肪组织和骨骼肌miRNA的筛选和表达研究[A];第十二次全国畜禽遗传标记研讨会论文集[C];2010年

8 杨子学;陈宝安;;miRNA在淋巴造血和急性淋巴细胞白血病中的作用[A];第13届全国实验血液学会议论文摘要[C];2011年

9 吴徐行;付彦;杨德英;谢跃;古小彬;王淑贤;杨光友;;多头带绦虫miRNA测序研究[A];中国畜牧兽医学会家畜寄生虫学分会第六次代表大会暨第十一次学术研讨会论文集[C];2011年

10 刘奔;王涛;郑红;李海欣;张丽娜;陈可欣;杨达;张微;;利用miRNA芯片研究胃癌发病相关的miRNA及下游信号通路分析[A];全国肿瘤流行病学和肿瘤病因学学术会议论文集[C];2011年

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1 实习生 蒋洪涛　王昊魁;[N];科技日报;2010年

2 记者 张晔;[N];科技日报;2010年

3 记者 杨步月;[N];新华每日电讯;2008年

4 记者 包颖;[N];中国社会报;2008年

5 健康时报特约记者 吴志;[N];健康时报;2009年

6 本报记者 李冰 通讯员 朱丽丽;[N];中国人口报;2010年

7 记者 姬薇;[N];工人日报;2010年

8 中国抗癌协会乳腺癌专业委员会副主任委员 徐兵河;[N];光明日报;2010年

9 记者 顾泳;[N];解放日报;2010年

10 张献怀;[N];健康报;2010年

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1 张忱;大鼠癫痫持续状态后海马miRNA表达谱的研究[D];中南大学;2010年

2 卢韶华;肺癌患者组织及血浆miRNA肿瘤标记物的发现及验证[D];复旦大学;2010年

3 何艳;肝细胞肝癌相关基因中miRNA结合靶点内多态的筛选及功能分析[D];苏州大学;2010年

4 李帅;miRNA-101和miRNA-122功能研究[D];中国人民解放军军事医学科学院;2010年

5 夏伟;临床肿瘤标本中差异miRNA的检测及mir-200b功能研究[D];中国人民解放军军事医学科学院;2010年

6 刘伟;SAMP8小鼠海马异常表达miRNA的鉴定和初步功能研究[D];中国协和医科大学;2009年

7 罗红春;胃癌miRNA表达谱及胃癌中显著下调的miR-9和miR-433的功能研究[D];重庆医科大学;2010年

8 茅凌翔;肠道病毒71型分子流行病学调查及miRNA抑制肠道病毒71型体外复制的研究[D];江苏大学;2011年

9 张文辉;胃远端腺癌miRNA表达谱及miR-204调控机制的初步研究[D];中国人民解放军军医进修学院;2010年

10 阴祖军;胁迫诱导棉花microRNA的差异表达分析[D];山东农业大学;2011年

中国硕士学位论文全文数据库 前10条

1 赵百慧;油松胚珠游离核分裂期miRNA的克隆与初步鉴定[D];北京林业大学;2010年

2 张坤山;调控过氧化物酶体生物合成与增殖的miRNA分析与鉴定[D];南昌大学;2010年

3 黎媚媚;内含子27碱基miRNA对内皮一氧化氮合酶调控机制的研究[D];南华大学;2010年

4 尤昊;抑制miRNA-21的表达对胆管癌细胞增殖、凋亡、侵袭的影响及其靶基因的探讨[D];安徽医科大学;2011年

5 杨文征;马铃薯保守性miRNAs的预测与验证[D];浙江理工大学;2010年

6 郑培明;白纹伊蚊miRNA的测序、鉴定及表达谱的初步分析[D];南方医科大学;2010年

7 黄宝春;内含子miRNA反馈调节其宿主基因表达和功能的研究[D];中国人民解放军军事医学科学院;2010年

8 罗荣;DmiR：小RNA转录组深度测序的miRNA预测[D];福建农林大学;2011年

9 薄维平;木薯耐寒相关microRNA的差异表达分析[D];海南大学;2010年

10 周鹏方;猪和甲型流感病毒microRNA预测软件系统[D];西北农林科技大学;2010年

  本文关键词：miRNA-125b-1对乳腺癌SKBR-3细胞放化疗敏感性的影响，由笔耕文化传播整理发布。

本文编号：127282