紫花苜蓿赤霉素受体基因MsGID1b的克隆及功能分析
发布时间：2021-06-07 03:57
紫花苜蓿（Medicago sativa L.）作为一种优质多年生豆科牧草,提高其产量一直是其主要的育种目标之一。赤霉素是影响植物生物量的主要因子,过表达其合成途径和信号途径的主要组分能有效提高植物生物量。赤霉素受体是介导赤霉素信号转导途径的重要组分,直接影响着赤霉素对植物体效应的发挥。本研究利用同源克隆的方法,首次从紫花苜蓿中克隆得到一个赤霉素受体基因,命名为MsGID1b。序列分析结果表明,该基因的开放阅读框长度为1053 bp,编码350个氨基酸,推测其蛋白质分子量为39.839 kDa,是一个无信号肽和跨膜结构的亲水性蛋白。蛋白质亚细胞定位服务器预测MsGID1b主要定位于细胞质和微体。序列比对结果表明,该基因与蒺藜苜蓿MtGID1b基因的核苷酸序列相似度为98%,氨基酸序列相似度为99%,且具有HSL家族典型的HGG和GXSXG保守结构域及GA、DELLA蛋白的结合位点。荧光定量PCR分析结果表明,该基因在紫花苜蓿各组织中的表达丰度依次为:根>盛花>初花>茎>叶>荚果;经GA3、ABA、NaCl、PEG和黑暗诱导后该基因表达...
【文章来源】：中国农业科学院北京市
【文章页数】：61 页
【学位级别】：硕士
【部分图文】：
GA的生物合成途径Fig1.1BiosynthesispathwayofGAinplants.From(Sakamoto,etal.2004)
的信号转导途径转导途径由多个组分共同参与。其中，GA 受体、DELLA 蛋白调控因子。当 GA 大量存在时，它可与其受体 GIBBEREL1）结合，然后和 DELLA 蛋白形成 GA-GID1-DELLA 的三元结LY1泛素复合体的 SLY1 元件能与 DELLA 蛋白上的 GARS 结多泛素化，最终被 26S 蛋白酶体降解，继而引发 GA 的响应(S图 1.2 GA 的失活途径Fig 1.2 Deactivation pathway of GAFrom (Yamaguchi 2008)
1.2.4 赤霉素的信号转导途径赤霉素信号转导途径由多个组分共同参与。其中，GA 受体、DELLA 蛋白和 F-box 蛋白是最为关键的三个调控因子。当 GA 大量存在时，它可与其受体 GIBBERELLIN INSENSITIVEDWARF1（GID1）结合，然后和 DELLA 蛋白形成 GA-GID1-DELLA 的三元结构，引起其构象的变化，使 SCFSLY1泛素复合体的 SLY1 元件能与 DELLA 蛋白上的 GARS 结构域结合，从而使DELLA 蛋白被多泛素化，最终被 26S 蛋白酶体降解，继而引发 GA 的响应(Sun. ,2008)。图 1.2 GA 的失活途径Fig 1.2 Deactivation pathway of GAFrom (Yamaguchi 2008)
【参考文献】：
期刊论文
[1]短枝型苹果赤霉素受体基因MdGID1a及其启动子克隆和表达分析[J]. 宋杨,张艳敏,吴树敬,冯守千,王传增,陈学森. 园艺学报. 2013(11)
[2]葡萄赤霉素受体基因VvGID1A的分离、亚细胞定位及表达分析[J]. 王西成,吴伟民,房经贵,钱亚明,王晨,宋长年,赵密珍. 园艺学报. 2013(05)
[3]茶树赤霉素受体基因CsGID1a的克隆与表达分析[J]. 岳川,曾建明,曹红利,郝心愿,章志芳,王新超,杨亚军. 作物学报. 2013(04)
[4]转基因苜蓿的研究进展[J]. 李静,薛鑫,吴金霞. 生物技术通报. 2012(11)
[5]板栗赤霉素缺陷型短雄花序芽变的初步鉴定及CmGID1基因的表达分析[J]. 李兴亮,郭献平,沈元月,曹庆芹,冯永庆,秦岭. 园艺学报. 2011(07)
[6]甘蓝型油菜赤霉素受体基因的克隆与表达[J]. 刘洋,张艺琼,刘冠财,任彩霞,王茂林. 西北植物学报. 2011(05)
[7]BnGID1基因过量表达对甘蓝型油菜矮化突变体NDF-1株高的恢复[J]. 李晓晨,李华鹏,邓喜,马欣荣,王茂林. 应用与环境生物学报. 2010(02)
[8]赤霉素的应用研究进展[J]. 王彦波,鲜开梅,张永华,刘慧英. 北方园艺. 2007(06)
[9]赤霉素生物合成及其分子机理研究进展[J]. 石琰璟,沙广利,束怀瑞. 西北植物学报. 2006(07)
博士论文
[1]东方山羊豆赤霉素受体和水通道蛋白基因功能研究[D]. 李俊.中国农业科学院 2014
硕士论文
[1]花生荚果发育初期赤霉素合成和信号传导关键基因的研究[D]. 王成祥.山东师范大学 2013
本文编号：3215804
【文章来源】：中国农业科学院北京市
【文章页数】：61 页
【学位级别】：硕士
【部分图文】：
GA的生物合成途径Fig1.1BiosynthesispathwayofGAinplants.From(Sakamoto,etal.2004)
的信号转导途径转导途径由多个组分共同参与。其中，GA 受体、DELLA 蛋白调控因子。当 GA 大量存在时，它可与其受体 GIBBEREL1）结合，然后和 DELLA 蛋白形成 GA-GID1-DELLA 的三元结LY1泛素复合体的 SLY1 元件能与 DELLA 蛋白上的 GARS 结多泛素化，最终被 26S 蛋白酶体降解，继而引发 GA 的响应(S图 1.2 GA 的失活途径Fig 1.2 Deactivation pathway of GAFrom (Yamaguchi 2008)
1.2.4 赤霉素的信号转导途径赤霉素信号转导途径由多个组分共同参与。其中，GA 受体、DELLA 蛋白和 F-box 蛋白是最为关键的三个调控因子。当 GA 大量存在时，它可与其受体 GIBBERELLIN INSENSITIVEDWARF1（GID1）结合，然后和 DELLA 蛋白形成 GA-GID1-DELLA 的三元结构，引起其构象的变化，使 SCFSLY1泛素复合体的 SLY1 元件能与 DELLA 蛋白上的 GARS 结构域结合，从而使DELLA 蛋白被多泛素化，最终被 26S 蛋白酶体降解，继而引发 GA 的响应(Sun. ,2008)。图 1.2 GA 的失活途径Fig 1.2 Deactivation pathway of GAFrom (Yamaguchi 2008)
【参考文献】：
期刊论文
[1]短枝型苹果赤霉素受体基因MdGID1a及其启动子克隆和表达分析[J]. 宋杨,张艳敏,吴树敬,冯守千,王传增,陈学森. 园艺学报. 2013(11)
[2]葡萄赤霉素受体基因VvGID1A的分离、亚细胞定位及表达分析[J]. 王西成,吴伟民,房经贵,钱亚明,王晨,宋长年,赵密珍. 园艺学报. 2013(05)
[3]茶树赤霉素受体基因CsGID1a的克隆与表达分析[J]. 岳川,曾建明,曹红利,郝心愿,章志芳,王新超,杨亚军. 作物学报. 2013(04)
[4]转基因苜蓿的研究进展[J]. 李静,薛鑫,吴金霞. 生物技术通报. 2012(11)
[5]板栗赤霉素缺陷型短雄花序芽变的初步鉴定及CmGID1基因的表达分析[J]. 李兴亮,郭献平,沈元月,曹庆芹,冯永庆,秦岭. 园艺学报. 2011(07)
[6]甘蓝型油菜赤霉素受体基因的克隆与表达[J]. 刘洋,张艺琼,刘冠财,任彩霞,王茂林. 西北植物学报. 2011(05)
[7]BnGID1基因过量表达对甘蓝型油菜矮化突变体NDF-1株高的恢复[J]. 李晓晨,李华鹏,邓喜,马欣荣,王茂林. 应用与环境生物学报. 2010(02)
[8]赤霉素的应用研究进展[J]. 王彦波,鲜开梅,张永华,刘慧英. 北方园艺. 2007(06)
[9]赤霉素生物合成及其分子机理研究进展[J]. 石琰璟,沙广利,束怀瑞. 西北植物学报. 2006(07)
博士论文
[1]东方山羊豆赤霉素受体和水通道蛋白基因功能研究[D]. 李俊.中国农业科学院 2014
硕士论文
[1]花生荚果发育初期赤霉素合成和信号传导关键基因的研究[D]. 王成祥.山东师范大学 2013
本文编号：3215804
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