甘蔗原生质体的分离与培养体系的建立和优化
发布时间:2021-10-10 08:49
为了获得高产优质的甘蔗原生质体细胞,为获得甘蔗原生质体再生植株打下基础,本研究以新台糖22号ROC22和桂糖28号GT28幼叶为材料,研究了甘蔗原生质体分离的影响因素、原生质体培养程序及相关的技术环节,对ROC22和GT28甘蔗原生质体的分离、纯化和培养条件进行优化,研究结果表明:1.酶解前质壁分离0.5h与质壁分离0h相比:GT28和ROC22原生质体的产量和活力分别增加了65.62%、2.08%和 105.94%、1.84%;2.在酶液组合0.5%果胶酶+2%纤维素酶+0.3%半纤维素酶+0.1%离析酶下,ROC22原生质体的产量和活力最高,分别为:2.55×107个·g-1和98.54%;GT28原生质体的产量和活力最高,分别为:2.05×107个·g-1和99.83%;3.不同酶解时间对原生质体产量影响差异显著,在酶解10 h时,ROC22和GT28原生质体的产量分别比酶解5 h时增加了 35.4%和89.81%,酶解10 h最适合甘蔗原生质体的分离;4.甘蔗原生质体纯化最适合的离心速率是800 rpm,GT28和ROC22原生质体的产量达到最高,分别为2.1×107个·g-1...
【文章来源】:广西大学广西壮族自治区 211工程院校
【文章页数】:70 页
【学位级别】:硕士
【部分图文】:
图2-1原生质体的三种培养方式??Fig.?2-1?Three?methods?of?protoplast?culture??
enzymatic?hydrolysis;?L.?Homogenization??在加入13%CPW质壁分离时,因13%CPW浓度较高,材料漂浮在液面之上(图??3-1-G),在质壁分离0.5h后,材料有的下沉至管底(图3-1-H),此时材料比质壁分??离前要松软(图3-1-1),在加入酶液后,材料都沉至管底(图3-1-J),酶解10?h后,??材料非常松散(图3-1-K),轻轻吹打就可以将材料打成均匀的糊状,此时原生质体的??酶解完成。??3.2原生质体纯化体系的构建??在原生质体的纯化过程中,将刚酶解完的原生质体(图3-2-A)先用细胞筛(图3-??2-B、C)去除大的没有酶解掉的组织,细胞筛过滤后原生质体滤液是非常均匀地液??体,没有肉眼可见的组织块(图3-2-D),离心后,原生质体沉在管底(图3-2-F),??打匀后,可见原生质体液颜色偏淡褐色(图3-2-G),在显微镜下可以看到边缘清晰,??大小均匀
广西大学硕士学位论文?甘鹿原生质休分商与培养体系的延立和优化??图3-3甘蔗原生质体培养体系的构建??Fig.3-3?Construction?of?protoplast?culture?system?of?sugarcane??注:A.加入酶液10?h后;B.分离的原生质体,bar=10?jim;?C.有活力的原生质体,bar=10?pm;?D.??液体培养;E.光照培养箱;F.微滴培养;G.原生质体第1次分裂;H.原生质体第2次分裂;I.原??生质体第3次分裂;J、K.小细胞团;L.小愈伤组织??Note:?A.?Enzymatic?hydrolysis?10?h;?B.?Protoplasts,?bai-10?}im;?C.?Viable?protoplasts,?bar=10?(im;?D.??Liquid?culture;?E.?Light?incubator?;?F.?Microdrop?culture;?G.?First?division?of?protoplast-derived?cell;?H.??Second?division?of?protoplast-derived?cell;?I.?Third?division?of?protoplast-derived?cell;J、K.?Cell?cluster??fomied?fi'om?protoplast-derived?cell;?L.?Microcalli?formed?from?protoplast-derived?cell??3.4原生质体分离和纯化体系的优化??3.4.1不同酶液组合对甘蔗原生质体产量的影响??
本文编号:3428051
【文章来源】:广西大学广西壮族自治区 211工程院校
【文章页数】:70 页
【学位级别】:硕士
【部分图文】:
图2-1原生质体的三种培养方式??Fig.?2-1?Three?methods?of?protoplast?culture??
enzymatic?hydrolysis;?L.?Homogenization??在加入13%CPW质壁分离时,因13%CPW浓度较高,材料漂浮在液面之上(图??3-1-G),在质壁分离0.5h后,材料有的下沉至管底(图3-1-H),此时材料比质壁分??离前要松软(图3-1-1),在加入酶液后,材料都沉至管底(图3-1-J),酶解10?h后,??材料非常松散(图3-1-K),轻轻吹打就可以将材料打成均匀的糊状,此时原生质体的??酶解完成。??3.2原生质体纯化体系的构建??在原生质体的纯化过程中,将刚酶解完的原生质体(图3-2-A)先用细胞筛(图3-??2-B、C)去除大的没有酶解掉的组织,细胞筛过滤后原生质体滤液是非常均匀地液??体,没有肉眼可见的组织块(图3-2-D),离心后,原生质体沉在管底(图3-2-F),??打匀后,可见原生质体液颜色偏淡褐色(图3-2-G),在显微镜下可以看到边缘清晰,??大小均匀
广西大学硕士学位论文?甘鹿原生质休分商与培养体系的延立和优化??图3-3甘蔗原生质体培养体系的构建??Fig.3-3?Construction?of?protoplast?culture?system?of?sugarcane??注:A.加入酶液10?h后;B.分离的原生质体,bar=10?jim;?C.有活力的原生质体,bar=10?pm;?D.??液体培养;E.光照培养箱;F.微滴培养;G.原生质体第1次分裂;H.原生质体第2次分裂;I.原??生质体第3次分裂;J、K.小细胞团;L.小愈伤组织??Note:?A.?Enzymatic?hydrolysis?10?h;?B.?Protoplasts,?bai-10?}im;?C.?Viable?protoplasts,?bar=10?(im;?D.??Liquid?culture;?E.?Light?incubator?;?F.?Microdrop?culture;?G.?First?division?of?protoplast-derived?cell;?H.??Second?division?of?protoplast-derived?cell;?I.?Third?division?of?protoplast-derived?cell;J、K.?Cell?cluster??fomied?fi'om?protoplast-derived?cell;?L.?Microcalli?formed?from?protoplast-derived?cell??3.4原生质体分离和纯化体系的优化??3.4.1不同酶液组合对甘蔗原生质体产量的影响??
本文编号:3428051
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