当前位置:主页 > 农业论文 > 水产渔业论文 >

PGC-1α在斑马鱼细胞冷应激过程中的功能探究

发布时间:2020-11-15 04:44
   过氧化物酶体增殖物激活受体γ(peroxisome proliferator activated receptorγ,PPARγ)辅助激活因子1α(PPARγcoactivator-1α,PGC-1α)是一个重要的能量调节因子,不仅能调控生命活动基本的代谢活动如脂质和糖类的代谢,同时也能调节线粒体的生物合成并行使正常的功能。PGC-1α的分布范围十分广泛,在(brown adipose tissue,BAT)褐色脂肪组织、心脏、大脑、肝脏、肌肉等多个组织中均能检测到其表达,且在不同类型组织中具有不同的表达量。PGC-1α基因的结构包含C端的转录激活域、中间的转录抑制域、一个富含丝氨酸及精氨酸残基的模体结构以及N端的RNA结合域。作为一个参与各个生理生化过程的关键调控分子,PGC-1α被认为是机体或细胞外部信号的主要感受器。它能被诸多因素激活:1.活性氧类和活性氮类物质(ROS)和(RNS)。这两者均为细胞内源性的代谢副产物,当细胞受到应激时,上述两种活性物质的含量均上升;2.低温诱导。当机体暴露在冷环境中,PGC-1α的表达量显著性上升,通过促进机体的适应性产热以适应低温环境造成的影响;3.锻炼、长时间的耐力型训练均能引起PGC-1α的表达量升高。此外还有多种重要的信号通路参与调控PGC-1α的转录和表达。PGC-1α最初被发现是由于其在寒冷暴露下,在棕色脂肪中作为一个冷诱导调控因子能增加适应性产热。哺乳动物暴露在寒冷环境中,其作为恒温动物主要通过骨骼肌颤栗、增加有氧呼吸产生ATP和热量以维持低温下正常的生理活动;当植物暴露于寒冷环境中,蛋白质和核酸构象发生改变、细胞膜的流动性降低,主要通过增加冷诱导蛋白的表达量从而引起下游信号通路以适应低温。关于PGC-1α在机体受到低温刺激过程中所起作用的相关的研究主要集中于哺乳动物模型,而其功能在鱼类中鲜有报道。因此本研究以斑马鱼胚胎成纤维细胞ZF4细胞为实验模型,通过构建慢病毒载体并转染ZF4细胞,以干扰细胞内源性的PGC-1α的表达量;并利用嘌呤霉素筛选获得PGC-1α敲降的稳转细胞系,并给与其18°C、10°C不同程度和不同时间的低温刺激,以探究PGC-1α在ZF4冷应激过程中所起的功能。野生型的斑马鱼ZF4细胞18°C 1~7 d的低温处理后,PGC-1α的mRNA表达量较28°C正常温度下生长的细胞显著性上升。以上证实低温刺激诱导ZF4细胞内PGC-1α的表达量升高。为探究低温刺激下PGC-1α对ZF4细胞所起的功能,本研究根据NCBI网站上斑马鱼PGC-1α基因的编码区序列设计了PGC-1α的4个shRNA:分别对应其CDS区第165、457、1486、2487位碱基起始长度为21 bp的片段。转染慢病毒质粒后,ZF4细胞中PGC-1α的表达量进行检测发现,4个敲降位点对应的敲降比例分别为43%、38%、25%和50%,故选择转染PGC-1α-shRNA4的细胞作为后续的实验组。本研究分为三组:空白对照组(pLKO.DEST.EGFP)、阴性对照组(pLKO.1-shNC)和实验组(pLKO.1-shRNA)。将以上三组细胞分别在18°C和10°C处理1d、4d、7d后用,通过CM-H2DCFDA探针染色后流式细胞仪检测对照组、PGC-1α-shNC和PGC-1α-sh4三组细胞内的ROS水平发现,在28°C时,PGC-1α敲降不影响细胞内ROS的含量;而给予ZF4细胞18°C不同时间的低温刺激后,PGC-1α敲降组(PGC-1α-sh4)细胞内的ROS含量高于空白对照组和阴性对照组:18°C 1 d(0.93±0.03 vs 0.79±0.03,p0.001)、18°C4 d(2.10±0.15 vs 1.24±0.06,p0.01)和18°C 7 d(4.00±0.16 vs 2.87±0.15,p0.01)。ZF4细胞10°C处理1 d、4 d、7 d后,ROS的表达量增加并且随着冷处理时间的延长,ROS在细胞内有累积的趋势。这也从侧面反应在低温刺激下,PGC-1α能使体内ROS含量维持在相对稳定的水平范围内,从而减缓低温下产生的ROS对细胞造成的损伤。线粒体有氧呼吸伴随着ROS的产生,如果ROS在细胞内大量的积累,那么首先会危害到产生ROS的场所——线粒体。因此,我们又采用JC-1染色,通过BD C6流式细胞仪检测到PGC-1α敲降后的ZF4细胞经冷处理后其线粒体膜电位(MMP)发生显著性降低。正常情况下,膜电位正常的细胞占所有细胞的99%以上,而低温处理后,细胞的膜电位会发生一定程度的下降,PGC-1α敲除后细胞的膜电位下降加剧。同时,PGC-1α敲降的细胞在MMP下降后继而导致细胞发生凋亡的现象,其中早期凋亡的细胞所占的比例较PGC-1α未敲除的细胞显著性上升。另一方面,bax(促进细胞发生凋亡的蛋白)和bcl-2(抵抗细胞凋亡发生的蛋白)两者的比率在PGC-1α敲降的细胞中显著性减小,bax的蛋白水平显著性升高,与之相反bcl-2的蛋白水平显著性降低,说明PGC-1α敲降后给予ZF4细胞低温刺激继而引发细胞凋亡。综上所述,冷应激过程中PGC-1α的敲降会引起细胞内ROS水平升高,线粒体中MMP下降,bax蛋白的表达升高而bcl-2的表达降低,引发内源性的由线粒体为中心而引发的细胞凋亡通路。这也从另一个角度证明了PGC-1α在ZF4细胞受到冷刺激后能保护其免受低温的危害,能通过维持ZF4细胞内的ROS水平和MMP以适应冷应激产生的一系列应答反应。
【学位单位】:上海海洋大学
【学位级别】:硕士
【学位年份】:2018
【中图分类】:S917.4
【部分图文】:

家族,中共,结构域,区域


图 1-1 PGC-1 家族中共激活因子的结构和功能[18]家族中 PGC-1α、PGC-1β 和 PRC 的序列相似性比较。三种 PGC-1 家结构域:标注红色的为激活区域,标注黄色的为富含 Arg / Ser 结bingding domin。 PGC-1α 和 PGC-1β 具有相似的结构域,这些区域活区域(40%)、中间的转录区域(35%)和 C 端的 RNA 结合区域(48C-1α 结合的蛋白质复合物。 PGC-1α 分别在氨基和羧基末端与 HA复合物结合。 SirT1 和 p160 与阻遏结构域结合,其还包含三个 p磷酸化位点。Figure 1-1 Structure and function of coactivators in the PGC-1 family.son of sequence similarities of PGC-1α, PGC-1β, and PRC in the PGC-1 PGC-1 family members have the following three domains: the red-labelellow-enriched Arg/Ser domain, and the purple-labeled RNA-binding doβ have similar domains, and these regions are mainly the N-terminal actintermediate transcription region (35%) and the C-terminal RNAbindingB) Protein complexes that bind to PGC-1α. PGC-1α binds to the HAT an/intermediator complexes at the amino and carboxyl ends, respectively. Sression domain that also contains three p38 MAP kinase phosphorylation

家族,脊椎动物,保守性,线粒体


图 1-2 PGC-1 家族在几种重要的脊椎动物中的保守性[18](Clustal)对 GenBank 中目前 PGC-1 家族中存在的已知的氨在某些物种中缺少某些成员可能是由于可用数据库中缺乏全长 ure 1-2 Conservation of PGC-1 Family in Several Important Verteblustal software to compare the sequence of known amino acids pres in GenBank. The lack of certain members in some species may be dfull-length cDNAsequences in available databases. 的功能α 与线粒体生物合成 DNA 复制和增殖受到 PGC-1α 的直接调控。有研究发位表达 PGC-1α,能直接促进线粒体生物合成的增加。另吸转录激活因子 1 和 2(Nuclear respiratoryfactor1 and

线粒体,小鼠,生理应激,心肌细胞


上海海洋大学硕士学位论文 PGC-1α 的小鼠中,心肌细胞中的线粒体数目明显增多。此外,PG活并提高 NRF-1 的表达量,通过介导 UCP-2 的合成促进心肌细胞中成。虽然在 PGC-1α 过表达的组织中存在着线粒体数量显著上升的现因子与这些关键转录因子之间发生互作,PGC-1α 的敲除小鼠仍然存常的线粒体丰度[26]。因此,PGC-1α 对于小鼠线粒体的正常发育不是当置于生理压力下时,与具有正常水平的 PGC-1α 的小鼠相比,这些受性降低[27]。类似地,在 PGC-1β 破坏的基因敲除小鼠中,小鼠显体功能正常水平,并且适应生理应激的能力降低。然而,PGC-1α/β 产生了大多数在 24 小时内因心脏组织线粒体缺陷而导致死亡的小鼠结果说明 PGC-1α 和 PGC-1β 两者单独敲除后不影响细胞执行线粒体力,但它们能够在生理应激期间相互补偿以获得最佳的线粒体数量
【相似文献】

相关期刊论文 前10条

1 ;高通量细胞转染设备获全球创新百大奖[J];泰州科技;2012年08期

2 唐蓓;;一种稳定且高效的磷酸钙293T细胞转染法[J];生物技术;2011年01期

3 徐海明;蒋稼欢;;微流控技术在细胞转染中的应用[J];生物工程学报;2011年10期

4 张荣华;王冰;;哺乳动物细胞转染技术概述[J];大家健康(学术版);2013年17期

5 姜云霞;王冰;崔韶晖;赵轶男;杨宝灵;段艳;王秀武;张树彪;;阳离子脂质体基因载体的细胞转染研究[J];安徽农业科学;2009年17期

6 黎万玲;王槐志;倪兵;姜曼;吴玉章;;磁转联合脂质体实现高效细胞转染[J];免疫学杂志;2005年06期

7 哈小琴,吴祖泽,张庆林,吴彬,吕同德;质粒超螺旋比例对其细胞转染效率及表达的影响[J];生物技术通讯;2005年04期

8 雷撼,吴国明,周向东,黄桂君,钱桂生,徐长荣,蒋文,郑辉;新型细胞转染素—N~4-精胺胆固醇羰酰氨的合成[J];第三军医大学学报;2003年04期

9 刘燕;朱吉海;孙伟;赵珺;;细胞转染中单克隆与混克隆干扰基因效率的比较[J];青海医学院学报;2016年04期

10 邱烨;;提高Lipofectamine2000对PC12细胞转染效率的研究[J];中国医药导报;2014年03期


相关博士学位论文 前10条

1 林晓岐;人IL-2基因的克隆及哺乳动物细胞转染的研究[D];中国协和医科大学;1991年

2 刘世洲;TopBP1蛋白在细胞DNA损伤中的作用机制[D];中国医科大学;2006年

3 韩婕;体外实验探讨miR-638对脂质代谢的影响[D];中国人民解放军医学院;2017年

4 吴雄辉;非病毒型载体介导SOD1基因体外细胞转染及表达的实验研究[D];中南大学;2011年

5 赵梦丹;靶向纳米载体介导基因治疗子宫内膜异位症的疗效及机制研究[D];浙江大学;2017年

6 孙爱;大黄鱼(Pseudosciaena crocea)三种组织细胞系的建立、鉴定及其应用的初步研究[D];中国海洋大学;2010年

7 吴运东;阳离子聚合物基因载体的合成及其性能研究[D];湖南大学;2013年

8 陈景波;小鼠神经干细胞移植治疗去神经节巨结肠实验研究[D];华中科技大学;2009年

9 王保祥;Gadd45 α 异常甲基化在食管鳞癌中的研究[D];中南大学;2012年

10 李万胜;人IL-8基因在卵巢上皮性癌浸润转移中作用机制的研究[D];河北医科大学;2008年


相关硕士学位论文 前10条

1 胡成枫;PGC-1α在斑马鱼细胞冷应激过程中的功能探究[D];上海海洋大学;2018年

2 甘利鹏;LncRNA TCONS_00179042对PRRSV在Marc-145细胞中复制的影响[D];中国农业科学院;2018年

3 马骁;衔接蛋白在狂犬病毒入侵细胞过程中作用的研究[D];中国农业科学院;2018年

4 华艳芳;降低SFRS10基因表达对小鼠AML-12细胞中SIRT1和Lipin-1表达水平的影响[D];河北医科大学;2017年

5 张庆慧;PAM14的细胞转染表达和定位[D];安徽医科大学;2008年

6 闫巧霞;纳米载体携载外源基因进行体外细胞转染的实验研究[D];吉林大学;2015年

7 孙达权;山羊乳腺特异性载体的构建及细胞转染[D];西北农林科技大学;2008年

8 徐娟;成年山羊乳腺上皮细胞转染人乳铁蛋白基因及细胞株的建立[D];扬州大学;2006年

9 张频;鸡TIA-1和G3BP1在应激颗粒形成和抗病毒反应过程中的作用[D];山东农业大学;2017年

10 王君实;沉默PLIN1基因与杨梅素联合作用对3T3-L1细胞脂解的影响及机制探究[D];山西医科大学;2017年



本文编号:2884358

资料下载
论文发表

本文链接:https://www.wllwen.com/nykjlw/scyylw/2884358.html


Copyright(c)文论论文网All Rights Reserved | 网站地图 |

版权申明:资料由用户b2e9a***提供,本站仅收录摘要或目录,作者需要删除请E-mail邮箱bigeng88@qq.com