Toll样受体在厚壳贻贝免疫和发育中的作用研究
发布时间：2021-07-07 11:08
厚壳贻贝（Mytilus coruscus）是我国重要的水产养殖品种之一,近年来随着海洋环境不断恶化,海洋贝类微生物污染越来越普遍,严重影响了贻贝健康养殖的需求。此外,微生物病原菌（例如海洋弧菌等）引起的贝类疾病时常发生,从而造成巨大的经济损失。从厚壳贻贝的免疫系统着手,深入研究厚壳贻贝免疫预防机制,探讨提高贻贝抗病能力的有效方法,是保持厚壳贻贝养殖业健康发展的必经之路。Toll样受体（Toll-like receptors,TLR）是无脊椎动物重要的模式识别受体之一,可识别多种病原微生物及其他非己物质,而髓样分化因子88（myeloid differentiation factor 88,MyD88）是TLR信号通路中与TLR直接作用的接头分子,两者在激活后续的一系列免疫反应中有重要作用。本研究基于厚壳贻贝外套膜转录组数据,鉴定了54个TLR基因并对其进行初步分析;克隆了两个TLR基因和一个MyD88基因cDNA全长,对它们的具体结构和功能进行了研究;此外,探索了两个TLR基因在厚壳贻贝发育过程中的作用。主要结果如下:1.从厚壳贻贝外套膜转录组中鉴定TLR基因及其初步分析厚壳贻贝外套...
【文章来源】：上海海洋大学上海市
【文章页数】：83 页
【学位级别】：硕士
【部分图文】：
TLR家族识别配体概要[24]
6图 1-2 Toll 受体信号通路[27]Fig. 1-2 Toll-like Receptor signaling pathway.1 MyD88 依赖的 TLR 信号通路MyD88 依赖的 TLR 信号通路是 Toll 样受体信号转导中的共同通路，几乎R 都可通过 MyD88 依赖途径完成信号转导。MyD88 最初是作为髓样细胞因被分离，MyD88 的 N 端为死亡结构域（DD），与它 C-末端的 TIR 结构域一段短的连接序列分辨开。后来，MyD88 作为一个接头分子被克隆得到， IL-1 刺激后募集 IRAK 结合 IL-1 受体复合物[26]。 当细胞膜的 Toll 样受体刺激后，MyD88 与 TLR（除 TLR3）TIR 域相结合，并将 IRAK（IL-1 receociated kinase）家族成员招募到 TLR 中。IRAK 随后通过磷酸化被激活，并适配器 TRAF6 (tumor necrosis factor receptor-associated factor 6)结合。从而
Fig. 2-1 Phylognetic tree of the TIR domain of toll-like receptors of M. coruscus inferred through amaximum-likelihood analysis. The predicted protein domains are shown on the right side.2.3.2 厚壳贻贝 TLR 的表达模式分析为了解 McTLR 的时空表达模式，我们从系统进化树每个分支中随机选取了一个TLR 基因，通过 RT-qPCR 检测其在厚壳贻贝不同发育阶段和成体各组织中的表达情况。如图 2-2 所示，TLR5 在担轮幼虫和 D 型幼虫阶段未检测到，直到壳顶幼虫才有表达；TLR29 和 TLR31 在 D 型幼虫阶段开始有表达，而 TLR8、TLR12 和 TLR14在五个发育阶段均有表达。但 TLR5、TLR8、TLR12、TLR14、TLR29 和 TLR31 都在稚贝阶段表达量最高（P<0.05）。成体各组织中的表达情况如图 2-3 所示。TLR5在血细胞中表达量最高（P<0.05），在足中表达量最低（P<0.05）；TLR8 表达量在各组织间无明显差异（P>0.05）；TLR12 和 TLR14 分布在闭壳肌和外套膜中表达量最高（P<0.05）；TLR29 和 TLR31 都在鳃中表达量最高（P<0.05），而 TLR31 在足中未检测到。
【参考文献】：
期刊论文
[1]miRNA调控Toll样受体4参与神经系统缺血缺氧性损伤的研究进展[J]. 何丽,杨俊娜,徐陶,徐瑞,许阿香,杨帆,曾俊伟. 神经解剖学杂志. 2018(02)
[2]Toll样受体信号转导通路参与神经损伤修复的研究进展[J]. 丁煜萌,邝芳,游思维,魏晓燕. 细胞与分子免疫学杂志. 2016(11)
[3]欧洲鳗鲡MyD88基因的克隆及其免疫功能分析[J]. 姚志刚,冯建军,王艺磊,郭松林,林鹏,张子平,张在鹏. 水产学报. 2015(03)
[4]半滑舌鳎髓样分化因子的克隆和表达分析[J]. 沙珍霞,王娜,王启龙,徐田军,王磊,董晓丽,陈松林. 中国水产科学. 2010(04)
硕士论文
[1]中国明对虾Toll样受体基因的克隆和表达分析[D]. 杨昌健.中国科学院研究生院（海洋研究所） 2008
本文编号：3269522
【文章来源】：上海海洋大学上海市
【文章页数】：83 页
【学位级别】：硕士
【部分图文】：
TLR家族识别配体概要[24]
6图 1-2 Toll 受体信号通路[27]Fig. 1-2 Toll-like Receptor signaling pathway.1 MyD88 依赖的 TLR 信号通路MyD88 依赖的 TLR 信号通路是 Toll 样受体信号转导中的共同通路，几乎R 都可通过 MyD88 依赖途径完成信号转导。MyD88 最初是作为髓样细胞因被分离，MyD88 的 N 端为死亡结构域（DD），与它 C-末端的 TIR 结构域一段短的连接序列分辨开。后来，MyD88 作为一个接头分子被克隆得到， IL-1 刺激后募集 IRAK 结合 IL-1 受体复合物[26]。 当细胞膜的 Toll 样受体刺激后，MyD88 与 TLR（除 TLR3）TIR 域相结合，并将 IRAK（IL-1 receociated kinase）家族成员招募到 TLR 中。IRAK 随后通过磷酸化被激活，并适配器 TRAF6 (tumor necrosis factor receptor-associated factor 6)结合。从而
Fig. 2-1 Phylognetic tree of the TIR domain of toll-like receptors of M. coruscus inferred through amaximum-likelihood analysis. The predicted protein domains are shown on the right side.2.3.2 厚壳贻贝 TLR 的表达模式分析为了解 McTLR 的时空表达模式，我们从系统进化树每个分支中随机选取了一个TLR 基因，通过 RT-qPCR 检测其在厚壳贻贝不同发育阶段和成体各组织中的表达情况。如图 2-2 所示，TLR5 在担轮幼虫和 D 型幼虫阶段未检测到，直到壳顶幼虫才有表达；TLR29 和 TLR31 在 D 型幼虫阶段开始有表达，而 TLR8、TLR12 和 TLR14在五个发育阶段均有表达。但 TLR5、TLR8、TLR12、TLR14、TLR29 和 TLR31 都在稚贝阶段表达量最高（P<0.05）。成体各组织中的表达情况如图 2-3 所示。TLR5在血细胞中表达量最高（P<0.05），在足中表达量最低（P<0.05）；TLR8 表达量在各组织间无明显差异（P>0.05）；TLR12 和 TLR14 分布在闭壳肌和外套膜中表达量最高（P<0.05）；TLR29 和 TLR31 都在鳃中表达量最高（P<0.05），而 TLR31 在足中未检测到。
【参考文献】：
期刊论文
[1]miRNA调控Toll样受体4参与神经系统缺血缺氧性损伤的研究进展[J]. 何丽,杨俊娜,徐陶,徐瑞,许阿香,杨帆,曾俊伟. 神经解剖学杂志. 2018(02)
[2]Toll样受体信号转导通路参与神经损伤修复的研究进展[J]. 丁煜萌,邝芳,游思维,魏晓燕. 细胞与分子免疫学杂志. 2016(11)
[3]欧洲鳗鲡MyD88基因的克隆及其免疫功能分析[J]. 姚志刚,冯建军,王艺磊,郭松林,林鹏,张子平,张在鹏. 水产学报. 2015(03)
[4]半滑舌鳎髓样分化因子的克隆和表达分析[J]. 沙珍霞,王娜,王启龙,徐田军,王磊,董晓丽,陈松林. 中国水产科学. 2010(04)
硕士论文
[1]中国明对虾Toll样受体基因的克隆和表达分析[D]. 杨昌健.中国科学院研究生院（海洋研究所） 2008
本文编号：3269522
本文链接：https://www.wllwen.com/nykjlw/scyylw/3269522.html
