草鱼TLR8基因的克隆及其功能表达的研究
发布时间：2021-07-19 11:24
草鱼（Ctenopharyngodon idella）属硬骨鱼纲、鲤形目、鲤科、雅罗鱼亚科的草鱼属，为我国重要的淡水养殖鱼类之一。随着养殖的高密度、集约化的发展，疾病的频繁暴发严重影响了草鱼养殖的经济效益。由草鱼呼肠孤病毒（Grass carp reovirus, GCRV）引起的草鱼出血病是草鱼的主要疾病之一。草鱼出血病发病迅速，死亡率高，抗药性强，病程比较长。消毒剂和中草药对病毒的抑制并没有很有效的作用，目前，免疫预防是一种有效的防治方法。TLR8（Toll-like receptor8）基因是TLR家族成员之一。TLR8属于Ⅰ型跨膜蛋白受体，其分子结构由胞外区（LRR功能域）、跨膜区和胞内区（TIR功能域）组成。LRR功能域的主要职能是识别病原体表层的PAMPs，TIR功能域主要负责有机体相应的信号传导。TLR8是典型地胞内成员之一，能识别ssRNA病毒、小dsRNA病毒、寡核糖核苷酸和一系列合成的化学激动剂。作为TLR家族抗病毒受体之一，TLR8基因及其作用机制的探究将有助于了解草鱼的先天免疫机制并将其应用于草鱼的养殖和病害防治。取得的主要研究结果和结论包括：1.通过同源克隆、...
【文章来源】：西北农林科技大学陕西省 211工程院校 985工程院校 教育部直属院校
【文章页数】：64 页
【学位级别】：硕士
【部分图文】：
部分模式识别受体信息(ZhuLetal.2013)
位于胞内的细胞器（如内质网、溶酶体等），如 TLR3、TLR7、TLR8 和 TLR9 能识别外源 DNA 及 RNA (Underhill et al., 1999)，如下图 1-2。TLRs 分布广泛，在多种细胞上均有表达。大多数 TLRs 在造血干细胞来源的细胞（如巨噬细胞、白细胞和树突状细胞等）表达，在非造血干细胞源性的细胞（如上皮细胞、内皮细胞）选择性表达 (张琪和周兵2010)。
图 1-3 TLRs 及其应答途径(Kawai andAkira, 2011)Fig.1-3 The signaling cascade of TLRs (Kawai and Akira, 2011)1.2.2.2 RLR 家族RIG-I 样受体家族由三个成员组成：RIG-I 基因(retinoic acid induced gene I)、MDA基因(melanoma differentiation-associated gene 5)和 LGP2 基因(laboratory of genetics anphysiology 2)。它们都属于含有 DExD/H 框结构域的同源 RNA 螺旋酶，能够识别胞内病毒 RNA。RIG-I 和 MDA5 包含 N 端的两个串联的 CARD 结构域、一个 DExD/H 框 RNA解旋酶结构域和 C 端的 RD 结构域，而 LGP2 缺少两个串联的 CARD 结构域(Yoneyamet al., 2004)。RIG-I 和 MDA5 的研究表明它们在 RNA 病毒识别中发挥重要的作用，而 LGP2 被认为在病毒识别和信号转导中没有发挥作用，很可能扮演的是 RIG-I 和 MDA5 信号通路的调控基因(Yoneyama et al., 2005)。RIG-I 能够识别 5’三磷酸化末端和包含二级模块的RNA 序列，比如多尿嘧啶和小 dsRNA，而 MDA5 能够识别 poly I:C 和长 dsRNA (Hornunet al., 2006; Kato et al., 2008; Saito et al., 2008)。虽然 RIG-I 和 MDA5 识别不同的病毒，但是它们参与相同的信号通路（图 1-4），激活 NF-κB、IRF3 和 IRF7，诱导促炎症细胞
【参考文献】：
期刊论文
[1]草鱼出血病防治的研究进展[J]. 徐东日,吴苏敏,胡文娟,李莲芳. 江西水产科技. 2013(02)
[2]草鱼出血病的综合防治措施[J]. 韩晓峰. 农业与技术. 2013(05)
[3]草鱼TLR9基因全长cDNA的克隆及特征分析[J]. 杨春荣,苏建国,彭丽敏,董捷. 水产学报. 2011(05)
[4]Toll样受体研究进展[J]. 张琪,周兵. 国际耳鼻咽喉头颈外科杂志. 2010 (03)
[5]Toll样受体研究进展[J]. 赵文华,夏雪山. 动物医学进展. 2007(10)
[6]草鱼病毒性出血病研究进展[J]. 王方华,李安兴. 南方水产. 2006(03)
[7]水生呼肠孤病毒研究进展[J]. 方勤,朱作言. 中国病毒学. 2003(01)
[8]草鱼出血病的病原研究[J]. 毛树坚,邵健忠,杭绮,张念慈. 水产学报. 1989(01)
本文编号：3290613
【文章来源】：西北农林科技大学陕西省 211工程院校 985工程院校 教育部直属院校
【文章页数】：64 页
【学位级别】：硕士
【部分图文】：
部分模式识别受体信息(ZhuLetal.2013)
位于胞内的细胞器（如内质网、溶酶体等），如 TLR3、TLR7、TLR8 和 TLR9 能识别外源 DNA 及 RNA (Underhill et al., 1999)，如下图 1-2。TLRs 分布广泛，在多种细胞上均有表达。大多数 TLRs 在造血干细胞来源的细胞（如巨噬细胞、白细胞和树突状细胞等）表达，在非造血干细胞源性的细胞（如上皮细胞、内皮细胞）选择性表达 (张琪和周兵2010)。
图 1-3 TLRs 及其应答途径(Kawai andAkira, 2011)Fig.1-3 The signaling cascade of TLRs (Kawai and Akira, 2011)1.2.2.2 RLR 家族RIG-I 样受体家族由三个成员组成：RIG-I 基因(retinoic acid induced gene I)、MDA基因(melanoma differentiation-associated gene 5)和 LGP2 基因(laboratory of genetics anphysiology 2)。它们都属于含有 DExD/H 框结构域的同源 RNA 螺旋酶，能够识别胞内病毒 RNA。RIG-I 和 MDA5 包含 N 端的两个串联的 CARD 结构域、一个 DExD/H 框 RNA解旋酶结构域和 C 端的 RD 结构域，而 LGP2 缺少两个串联的 CARD 结构域(Yoneyamet al., 2004)。RIG-I 和 MDA5 的研究表明它们在 RNA 病毒识别中发挥重要的作用，而 LGP2 被认为在病毒识别和信号转导中没有发挥作用，很可能扮演的是 RIG-I 和 MDA5 信号通路的调控基因(Yoneyama et al., 2005)。RIG-I 能够识别 5’三磷酸化末端和包含二级模块的RNA 序列，比如多尿嘧啶和小 dsRNA，而 MDA5 能够识别 poly I:C 和长 dsRNA (Hornunet al., 2006; Kato et al., 2008; Saito et al., 2008)。虽然 RIG-I 和 MDA5 识别不同的病毒，但是它们参与相同的信号通路（图 1-4），激活 NF-κB、IRF3 和 IRF7，诱导促炎症细胞
【参考文献】：
期刊论文
[1]草鱼出血病防治的研究进展[J]. 徐东日,吴苏敏,胡文娟,李莲芳. 江西水产科技. 2013(02)
[2]草鱼出血病的综合防治措施[J]. 韩晓峰. 农业与技术. 2013(05)
[3]草鱼TLR9基因全长cDNA的克隆及特征分析[J]. 杨春荣,苏建国,彭丽敏,董捷. 水产学报. 2011(05)
[4]Toll样受体研究进展[J]. 张琪,周兵. 国际耳鼻咽喉头颈外科杂志. 2010 (03)
[5]Toll样受体研究进展[J]. 赵文华,夏雪山. 动物医学进展. 2007(10)
[6]草鱼病毒性出血病研究进展[J]. 王方华,李安兴. 南方水产. 2006(03)
[7]水生呼肠孤病毒研究进展[J]. 方勤,朱作言. 中国病毒学. 2003(01)
[8]草鱼出血病的病原研究[J]. 毛树坚,邵健忠,杭绮,张念慈. 水产学报. 1989(01)
本文编号：3290613
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