SlIDA在番茄中的表达分析以及对花粉发育的影响
【学位单位】:沈阳农业大学
【学位级别】:硕士
【学位年份】:2018
【中图分类】:S641.2
【部分图文】:
图 1 花器官脱落的网络模式图(引自 Bin Liu et al., 2013)Fig.1 Model for networks controlling floral organ abscission (Cited from Bin Liu et al., 2013)1.1.2 IDA 与侧根发育的研究侧根的产生与脱落过程一样,可以分为不同的阶段。首个发现侧根原基起始于中柱鞘细胞的学者将拟南芥侧根的发生过程分为八个阶段(Malamy and Benfey, 1997):I,建成细胞垂周分裂阶段;II,两细胞层的侧根原基阶段;III,三细胞层的侧根原基阶段;IV,四细胞层的侧根原基阶段;V,内皮层侧根原基阶段;VI,皮层侧根原基阶段;VII,接近突破表皮的侧根原基阶段;VIII,侧根露出表皮伸长阶段。这是目前最普遍、最容易接受的一种划分方式(刘大同等, 2013)。侧根发生过程必须经过内皮层、皮层和表皮细胞(Malamy and Benfey, 1997)。侧根的出现就像器官脱落一样,需要溶解相邻细胞的中间层。细胞壁水解(CWR)候选基因的定量表达被用来分析 IDA 信号如何影响侧根发生过程中 CWR 基因的表达。对于 XTH 和 EXP 基因家族成员,比如 XTH23/XTR6 和 EXP17(Laskowski et al., 2006; Gonzalez-Carranza et al., 2007; 2012; Swarup et al., 2008)在侧根原基表达,在 hae hsl2 双突变体而不是 hae 或 hsl2 单突变体中发现转录水平显著下降(Kumpf et al., 2013)。然而,PG 家族的两个基因 PGLR 和 PGAZAT/ADPG2(Swarupet al.,
2 IDA-HAE/HSL2 信号调控侧根发生模式图(引自 Kumpf et al., 2013l of IDA-HAE/HSL2 signaling regulates LR emergence (Cited from Kump长素的相关研究累在侧根原基(LRPs)的中央细胞,之后积累在 LRP 的顶端,一个关键调节因子(Peret et al., 2009)。假设生长素从侧根原在皮层中会诱导生长素内流载体 LIKE AUX1-3(LAX3)的表素进一步导入到皮层和表皮细胞层。在这些组织里,由生OOT1(SLR1)/IAA14 的降解释放 AUXIN RESPONSE FACTO录因子,导致细胞壁水解(CWR)基因的表达,如 EXP17、 et al., 2006; Swarup et al., 2008)。过程中,IDA 的表达依赖于生长素。证据来源于对 IDAS)在皮层和表皮细胞通过外施 IAA 或 NAA(1 μM)被激活的 IAA 之后的 6-24 h IDA 的表达水平增加 100 倍以上。在 arf水平被降低;而在 arf7 突变体中正常 IDA 感应被完全消除 ARF7 的下游(Kumpf et al., 2013)。但是没有证据说明 IDA并且生长素对 IDA 表达水平的影响可能是间接的。HAE 和 H
IDA::GUS 表达载体的构建 利用软件分析 SlIDA 启动子序列中的限制性,pBGWFS7.0 双元表达载体有多个克隆位点,选择合适的限制性内切不能切割目的片段,并在引物 5'末端添加酶切位点。引物为A-pro-F1:5'-TTTAACCATCTGATATCCGATTCT-3',A-pro-R2:5'-ATGAAAGGATTATATTTTCTTGAATTTT-3'。以稀释 100 倍的质粒为模板进行 PCR,按照纯化试剂盒说明书将 PCR对纯化后的 TA 克隆重组质粒 SlIDA-pro-T 及载体 pBGWFS7.0 质粒 P酶切反应体系如下:表 5 酶切反应体系Table 5 Enzymereaction system组成成分Components体积VolumeSlIDA-pro-T 1 μLBamH 1 μLNco 1 1 μL10×Reaction Buffer 2 μLRNase-free 15 μLTotal 20 μL
【相似文献】
相关期刊论文 前10条
1 孙春丽;潘延云;;拟南芥花粉活力的测定及其在花粉发育研究中的应用[J];植物学通报;2008年03期
2 钱存呜,周朝飞,夏穗生,马兆祉;早熟小麦后期发育特性研究——Ⅰ.低温对不同小麦品种花粉发育的影响[J];作物学报;1986年03期
3 张潞生;潘季淑;郑开文;;桃和山桃远缘杂种花粉发育时期的特殊性及其利用价值[J];中国果树;1988年04期
4 赵世绪;;γ射线对春小麦花粉发育的影响[J];北京农业大学学报;1988年02期
5 C.M.Qian;杨文钰;;低温和基因型对小麦花粉发育的影响[J];麦类作物学报;1988年03期
6 郭洁,陈睦传,洪维廉,汪德耀;甜菊花粉发育的超微结构及细胞化学[J];厦门大学学报(自然科学版);1989年06期
7 刘德琼;;花粉原生质体的分离与培养[J];长沙水电师院学报(自然科学版);1989年06期
8 李胜国,刘玉乐,田波;植物花粉发育的分子生物学研究进展[J];生物工程进展;1997年02期
9 王强生,石荫坪,王金政,隋从义;桃的花粉发育[J];落叶果树;1994年02期
10 张正海;张悦;李玉环;李爱民;;五味子花粉发育时期与花外部形态相关性研究[J];北方园艺;2013年02期
相关博士学位论文 前10条
1 戴晓燕;玉米中类似于mRNA的非编码基因ZM401 cDNA的克隆及其在玉米花粉发育中的作用[D];中国农业大学;2003年
2 朱金根;拟南芥Annexin5和ADF5在花粉发育和生长中的功能研究[D];兰州大学;2014年
3 魏兵强;辣椒胞质雄性不育育性恢复的遗传与候选基因鉴定[D];甘肃农业大学;2017年
4 蒋晶晶;白菜花粉发育和授粉受精相关基因的表达分析与功能验证[D];浙江大学;2012年
5 陈倪;拟南芥花粉和胚胎两个突变体的筛选和分子遗传研究[D];兰州大学;2009年
6 董衡;白菜组蛋白赖氨酸甲基化相关SDG家族的演化与在花粉发育中的作用分析[D];浙江大学;2016年
7 胡继宏;水稻同核异质系的基因组与转录组研究[D];武汉大学;2013年
8 林苏娥;白菜花粉壁发育相关的四个多糖代谢基因的表达分析与功能鉴定[D];浙江大学;2014年
9 康博;OsCYP2参与Aux/IAA蛋白降解并调控水稻侧根发生和花粉发育的功能研究[D];浙江大学;2011年
10 周雪;大白菜细胞核雄性不育相关基因挖掘与鉴定[D];沈阳农业大学;2017年
相关硕士学位论文 前10条
1 张风苹;SlIDA在番茄中的表达分析以及对花粉发育的影响[D];沈阳农业大学;2018年
2 张威通;拟南芥VAC14调控花粉发育的机理研究[D];山东农业大学;2018年
3 苏立娟;百合科(Liliaceae)植物花粉形态及花粉发育的研究[D];首都师范大学;2006年
4 彭真;高温影响番茄花粉发育的细胞学研究及花药差异表达分析[D];浙江大学;2012年
5 杜娟;拟南芥AtPLC1、AtPLC6基因参与花粉发育及花粉管极性生长过程的研究[D];河北农业大学;2009年
6 张芳;白菜花粉发育和授粉受精相关长链非编码RNA的鉴定方法[D];浙江大学;2015年
7 马小定;棉花双隐性细胞核雄性不育系与保持系花粉发育期差异表达基因分析[D];中国农业科学院;2007年
8 严峥;影响辣椒花粉活力和结实率的光温条件研究[D];湖南农业大学;2004年
9 俞竹青;水稻育性相关基因的克隆及功能分析[D];上海师范大学;2006年
10 王跃跃;瘿椒树两性花的花粉发育异常的研究[D];西北大学;2015年
本文编号:2894530
本文链接:https://www.wllwen.com/nykjlw/yylw/2894530.html