海州香薷耐铜性转录组学研究及其完整叶绿体基因组解读
【学位单位】:浙江大学
【学位级别】:硕士
【学位年份】:2019
【中图分类】:Q943.2
【部分图文】:
用Illumina二代测序平台,pair-endl50bp测序策略,获得转录组数据,进而进行??后续数据分析。??本研究的技术路线如图1.2所示。??野生海州香薷????^一?? ̄>??种I子?新鲜jh片??水培.铜胁迫处理幼苗?提取DNA,?_代丨丨lumina平台,PE150测序??提取RN’A,二代丨lljmina平台,PE丨50测序?髙通U数据??转??转录纟j■数据??Perl,novoplasty?基??录料组?甚差基?5差分典?”?因??^?装?|?异因?男异备算?海州香裔完整叶绿体基因沮序列?组??-"I—藝—S巻?|?s?◎学??^?量?基量?路基?转?因?学的唇?统??评?因估分0?|?组?分比形?t??\?f?I?ixt?析|?因?慧?析|??1?析?分子?传?基其?4??获得锢胁迫下海州香薷?|?k?、丨?1&?因他?化??转录组序列?铜耐性机制1?有奐的基因、?>-?--T?-分??代谢通路?'转运蛋白?
采取的数据过滤条件为(i)去除接头污染的Reads;?(ii)去除低质量的Reads;?(iii)??去除N比例大于5%的Reads。过滤得到的干净数据(CleanData)(附图1),本??实验所测的12个转录组数据质控后,其Q30均在94%以上(附图2),测序碱基??分布无AT、GC的分离(附图3)。因此,原始下机数据过滤后的干净数据(clean??data)可用于转录本的组装。??2.3.1.2转录组数据组装及组装质量控制与评估??利用Trinity组装上步得到的数据,相关命令行见表2.2。组装后得到的初步结??果分别进行组装结果基本信息统计、比对率分析、均一性分析、准确性评估、注??释比例评估、嵌合体比例评估、核心蛋白比对率评估、注释完整性评估等(相关??数据见附图)。图2.1A说明组装的contig长度分布,组装的N50长度为2,007bp?,??组装的平均长度为1,280?bp;?2.1B显示组装unigene的长度分布,其中N50为??l,840bp;?2.1C表示测序的核酸序列的随机程度即均一性。从该图中可看出当前测??序深度下,潜在转录本的均一性较好。图2.1D说明过滤的数据中78.4%的数据映??射到了组装的contig上,从以上数据可以看出本次的12个样品转录组组装质量较??好
序列的似然函数的log值大于0;选取6个ORF中得分最高的;当一个ORF完全??包含另一个,输出最长的一个。对预测出来的ORF序列统计其长度分布,其结果??如图2.2所示。通过上文描述方法在丨2个海州香薷样品的imigene寻找ORF,共找??到33,853条序列,长度从297bp到16,176bp不等,平均长度为914bp,其中N50??是?l,182bp,N90?是?429bp。??ORF?Length?Distribution??〇?J ̄9??min?length:?297??max?length:?16176??_?.?N50:?1182??N90:?429??〇)?〇?,?mean?length:?914??I?2????3??Z?:??§§?:??5????S*?\??10??〇?\??s?V??o?’??0?5000?10000?15000??ORF?Length??图2.2?ORF长度分布??Figure?2.2?ORF?Length?Distributions??15??
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