GAPCs在细胞自噬和植物免疫中的功能研究

发布时间:2017-10-13 23:42

  本文关键词:GAPCs在细胞自噬和植物免疫中的功能研究


  更多相关文章: 细胞自噬 GAPCs ATG3 ROS 细胞死亡


【摘要】:细胞自噬是保守的细胞内代谢途径,参与多种生理过程,例如营养物质循环、发育、衰老、非生物逆境胁迫和抗病反应等。在植物中,细胞自噬能够受到活性氧(ROS)诱导而上调,参与胁迫相关的氧化蛋白的降解过程。目前并不清楚细胞自噬响应氧化胁迫受ROS调控的机制。ATG3蛋白是参与细胞自噬重要的酶,催化关键步骤ATG8的脂化。植物中ATG3不仅是细胞自噬通路中的关键组分,也参与免疫相关的细胞死亡的调控。本论文通过标签纯化串联质谱鉴定策略筛选ATG3在植物体内的互作蛋白,并通过生理、生化和遗传实验研究ATG3互作蛋白参与细胞自噬和影响植物抗病反应的分子机制。植物中,胞质定位的三磷酸甘油醛脱氢酶(GAPCs)有多个同源蛋白,除了在糖酵解中发挥生化酶活功能外,也参与胚胎发育、花粉管发育、根系生长、脂类代谢、种子油脂积累、ABA信号传导和ROS信号传导等其他多种生理过程。本论文首先鉴定了本生烟草中与ATG3互作的蛋白GAPCs。使用体内、体外多种互作实验证明了ATG3与GAPCs的特异互作。同时,我们发现氧化胁迫能够抑制ATG3与GAPCs的互作。沉默GAPCs能够组成型激活ATG3依赖的细胞自噬。瞬时表达实验显示,ATG3的过表达能够在烟草中激活细胞自噬,GAPCs的过表达可以抑制ATG3过表达诱导的细胞自噬;同样,过表达GAPCs也可以抑制ROS诱导的细胞自噬。另外,本论文研究了GAPCs在植物的免疫反应中的作用。沉默GAPCs可以增强N基因介导的细胞死亡,增强植物对不亲和病原Tobacco mosaic virus(TMV)和Pseudomonas syringae pvtomato DC3000(Pst DC3000)的抗性,同时还能增强烟草对亲和病原细菌P.syringae pv tabaci的抗性。本文揭示了ATG3互作蛋白GAPCs在细胞自噬和植物免疫反应中具有的多种作用。
【关键词】:细胞自噬 GAPCs ATG3 ROS 细胞死亡
【学位授予单位】:清华大学
【学位级别】:博士
【学位授予年份】:2015
【分类号】:Q946
【目录】:
  • 摘要3-4
  • Abstract4-11
  • 第1章 前言11-27
  • 1.1 细胞自噬11
  • 1.2 植物细胞自噬的分子机制11-16
  • 1.2.1 参与植物细胞自噬的保守基因11-13
  • 1.2.2 参与细胞自噬的形成的蛋白组分13-16
  • 1.3 植物细胞自噬的生理功能16-23
  • 1.3.1 植物细胞自噬在植物的生长发育中的功能16-17
  • 1.3.2 植物细胞自噬在植物的衰老中的功能17-18
  • 1.3.3 植物细胞自噬在植物响应非生物胁迫中的功能18-20
  • 1.3.4 植物细胞自噬在植物响应生物胁迫中的功能20-23
  • 1.4 GAPDH是重要的多功能蛋白23-24
  • 1.5 植物中GAPDH的功能研究24-27
  • 第2章 材料与方法27-45
  • 2.1 植物材料和生长条件27
  • 2.2 载体构建27-29
  • 2.2.1 功能载体的构建27-28
  • 2.2.2 LIC载体构建28-29
  • 2.3 培养基29
  • 2.4 碱裂解法提取质粒29
  • 2.5 植物DNA的提取29-30
  • 2.6 琼脂糖凝胶回收纯化DNA30
  • 2.7 大肠杆菌感受态的制备30
  • 2.8 大肠杆菌的热激转化30-31
  • 2.9 农杆菌GV3101感受态的制备31
  • 2.10 农杆菌感受态的冻融转化31
  • 2.11 免疫杂交31-32
  • 2.12 烟草总蛋白Pull Down及互作蛋白质谱鉴定32-34
  • 2.12.1 烟草总蛋白Pull Down32
  • 2.12.2 SDS-PAGE胶蛋白电泳32
  • 2.12.3 银染32-33
  • 2.12.4 胶内酶切33
  • 2.12.5 质谱鉴定分析33-34
  • 2.13 荧光素酶互补实验34
  • 2.14 蛋白表达验证以及免疫共沉淀(Co-IP)实验34-35
  • 2.15 体外互作验证(Pull-down)实验35-36
  • 2.16 双分子荧光互补(BiFC)实验36
  • 2.17 细胞自噬观察36-37
  • 2.17.1 CFP-NbATG8f分子标记观察36
  • 2.17.2 MDC染色36-37
  • 2.17.3 电镜观察37
  • 2.17.4 细胞自噬小体的计数37
  • 2.18 植物RNA提取、反转录PCR和实时定量PCR37-38
  • 2.19 MV注射38
  • 2.20 ROS检测38-39
  • 2.20.1 NBT染色38-39
  • 2.20.2 DAB染色39
  • 2.21 病毒诱导基因沉默(VIGS)39
  • 2.22 病毒侵染及荧光拍照39-40
  • 2.23 病原菌生长检测40
  • 2.24 细胞死亡实验40-41
  • 2.24.1 细胞死亡诱导40
  • 2.24.2 台盼蓝染色观察40-41
  • 2.25 引物序列41-45
  • 第3章 ATG3体内互作蛋白的筛选45-50
  • 3.1 本章引言45
  • 3.2 结果与分析45-48
  • 3.2.1 ATG3体内互作蛋白筛选与分类45-47
  • 3.2.2 GAPC是ATG3特异的互作蛋白之一47-48
  • 3.3 讨论48-50
  • 第4章 ROS负调控GAPCs与ATG3互作50-62
  • 4.1 本章引言50
  • 4.2 结果与分析50-61
  • 4.2.1 GAPCs与ATG3均主要定位在胞质50-51
  • 4.2.2 GAPCs与ATG3存在体内互作51-53
  • 4.2.3 GAPCs与ATG3存在体外直接互作53-54
  • 4.2.4 GAPCs与ATG3互作位于胞质中54-57
  • 4.2.5 GAPCs与ATG3互作受ROS负调控57-61
  • 4.3 讨论61-62
  • 第5章 沉默GAPCs激活细胞自噬62-72
  • 5.1 本章引言62-63
  • 5.2 结果分析63-71
  • 5.2.1 本生烟草中沉默GAPCs载体构建和表型观察63
  • 5.2.2 VIGS基因沉默效率检测63-66
  • 5.2.3 在本生烟中沉默GAPCs能够激活细胞自噬66-69
  • 5.2.4 gapc拟南芥突变体中能够观察到细胞自噬激活69-71
  • 5.3 讨论71-72
  • 第6章 GAPCs负调控ATG3以及ROS诱导的细胞自噬72-82
  • 6.1 本章引言72
  • 6.2 结果与分析72-81
  • 6.2.1 过表达ATG3可以激活细胞自噬72-76
  • 6.2.2 过表达GAPCs可以抑制ATG3激活的细胞自噬76-77
  • 6.2.3 过表达GAPCs可以抑制ROS激活的细胞自噬77-80
  • 6.2.4 MV处理不影响ATG3的mRNA水平80-81
  • 6.3 讨论81-82
  • 第7章 GAPCs参与植物免疫反应82-88
  • 7.1 本章引言82
  • 7.2 结果与分析82-86
  • 7.2.1 沉默GAPCs导致N基因介导的本生烟对TMV-GFP抗性增加82-83
  • 7.2.2 沉默GAPCs导致N基因介导的HR细胞死亡加速83-84
  • 7.2.3 沉默GAPCs导致对寄主病原细菌的抗性增加84
  • 7.2.4 沉默GAPCs导致对非寄主病原细菌的抗性增加84-85
  • 7.2.5 沉默GAPCs不影响非寄主抗性导致的细胞死亡85-86
  • 7.3 讨论86-88
  • 第8章 讨论与展望88-94
  • 8.1 讨论88-93
  • 8.1.1 ATG3-GAPCs互作在细胞自噬中的作用88-91
  • 8.1.2 GAPCs在植物抗病性中的作用91-93
  • 8.2 仍待解决的科学问题93-94
  • 第9章 其他研究工作94-104
  • 9.1 本章引言94
  • 9.2 结果与讨论94-104
  • 9.2.1 3IP2s主要定位在胞质94-96
  • 9.2.2 3IP2s能够与ATG3在本生烟草中互作96-98
  • 9.2.3 ATG3与 3IP2s互作位于胞质中98
  • 9.2.4 沉默 3IP2s导致依赖于ATG3的细胞自噬激活98-100
  • 9.2.5 沉默 3IP2s导致叶绿体形态受损100-101
  • 9.2.6 过表达 3IP2s导致叶绿体降解加速101-104
  • 参考文献104-114
  • 致谢114-115
  • 个人简历、在学期间发表的学术论文与研究成果115-116

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